Генотоксическое действие фипронила на соматические и половые клетки мышей

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

В результате исследований установлена генотоксичность фипронила, проявившаяся в однонитевых разрывах ДНК в клетках легких, селезенки и печени интоксицированных животных. Фипронил оказывал отрицательное воздействие на половые клетки мышей, вызывая нарушения структуры синаптонемных комплексов сперматоцитов.

Полный текст

ВВЕДЕНИЕ Известно, что многие пестициды действуют подобно мутагенам, обладая цитотоксическим и генотоксическим эффектом (Singh et al., 2011). В Казахстане широко используют инсектициды адонис и регент, действующим веществом которых является фипронил (Список пестицидов, 2012). Известно, что фипронил высокотоксичен для беспозвоночных и малотоксичен для млекопитающих. Однако в природных популяциях, которые обитают вокруг сельскохозяйственных полей, обработанных инсектицидом, наблюдается снижение численности позвоночных животных. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ Объектом исследования являлись клетки внутренних органов интактных и интоксицированных фипронилом лабораторных мышей-самцов линии BALB/cYwal. Водный раствор фипронила вводили подопытным животным внутрибрюшинно однократно в дозах 31,7 и 19,0 мг/кг. Животные были разделены на 5 групп по 5 мышей в каждой: I группа - интактные животные. II-III группы - животные, забиваемые через 6 часов после введения ксенобиотика; IV-V группы - животные, забиваемые через 24 часа после введения ксенобиотика. У животных забирали печень, селезенку, легкие для исследования разрывов ДНК с помощью метода ДНК-комет (Дурнев и др., 2006) и семенники для получения тотальных препаратов синаптонемных комплексов и их последующего иммуноцитохимического анализа (Kolomiets et al., 2010; Anderson et al., 1999). Учитывали содержание ДНК в хвосте комет (в %) с помощью программы Comet score. Показателем генотоксического действия явился индекс повреждения (ИП), превышающий 2,0, который определяется как соотношение «% ДНК в хвосте» в опытной группе к «% ДНК в хвосте» в контрольной группе. Во всех случаях определяли средние значения и ошибки среднего. Достоверность различий средних оценивали, используя непараметрический U-тест Манна-Уитни. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ В результате исследований установлено, что фипронил в используемых дозах индуцировал в клетках всех изучаемых органов лабораторных мышей однонитевые разрывы ДНК с частотой, достоверно превышающей контрольный уровень (Р < 0,001) (табл. 1). С увеличением дозы ксенобиотика возрастала частота разрывов ДНК в клетках всех изучаемых органов. В клетках легких и селезенки увеличение количества разрывов ДНК происходило в первые 6 часов после введения препарата, а через 24 часа после введения их уровень снижался. ИП через 6 и 24 час после введения мышам фипронила в дозе 31,7 мг/кг составил в клетках легких соответственно 3,3 и 2,1, а в дозе 19,0 мг/кг - 1,8 и 1,5. ИП через 6 и 24 часа после введения мышам фипронила в дозе 31,7 мг/кг составил в клетках селезенки соответственно 2,2 и 1,9. ИП при дозе 19,0 мг/кг через 6 и 24 часа после введения составил в селезенке 1,9 и 1,3. Необходимо отметить, что в клетках печени количество повреждений ДНК через 24 часа после введения фипронила во всех использованных дозах превышало не только контрольный уровень, но и количество повреждений ДНК, отмеченное через 6 часов после введения. Индекс повреждения через 6 и 24 часа после введения мышам фипронила в дозе 31,7 мг/кг составил в печени соответственно 2,2 и 3,3. ИП при дозе 19,0 мг/кг через 6 и 24 часа после введения составил в печени соответственно 1,6 и 2,2. Нами также были изучены синаптонемные комплексы (СК) в стадиях пахитены и диплотены мейоза. Количество ядер с нарушениями у животных IV и V групп достоверно превышало контрольный уровень (13,4 % ядер с нарушениями от общего количества ядер) в 4,3 и 4,6 раза соответственно. Были выявлены следующие нарушения: фрагментация, ассоциации аутосом с половым бивалентом, преждевременный десинапсис половых хромосом, нарушение формирования полового тельца, кольцевые СК, атипичная структура СК. Таким образом, в результате исследований установлена способность фипронила индуцировать однонитевые разрывы ДНК в клетках легких, селезенки и печени интоксицированных животных. Кроме того, фипронил оказывал отрицательное действие на половые клетки мышей, вызывая нарушения структуры СК.
×

Об авторах

Анна Владимировна Ловинская

Казахский национальный университет имени аль-Фараби

Email: ankalav@mail.ru
студент Phd-докторантуры, факультет биологии и биотехнологии

Список литературы

  1. Дурнев А. Д., Жанатаев А. К., Анисина Е. А. и др. (2006) Применение метода щелочного гель-электрофореза изолированных клеток для оценки генотоксических свойств природных и синтетических соединений. Методические рекомендации. Москва: 28 с.
  2. Список пестицидов, разрешенных к применению на территории Республики Казахстан на 2013-2022 годы. (2012) Астана: 146 c.
  3. Anderson L. K., Reeves A., Webb M. L., Ashley T. (1999) Distribution of Crossing Over on Mouse Synaptonemal Complexes Using Immunofluorescent Localization of MLH1 Protein. Genetics. V. 159: Р. 1569-1579.
  4. Kolomiets O. L., Matveevsky S. N., Bakloushinskaya I. Yu. (2010) Sexual dimorphism in prophase I of meiosis in mole vole (Ellobius talpinus Pallas) with isomorphic (XX) chromosomes in males and females. Comparative Cytogenetics. V. 4 (1): P. 55-66.
  5. Singh S., Kumar V., Thakur S. et al. (2011) DNA damage and cholinesterase activity in occupational workers exposed to pesticides. Environmental Toxicology and Pharmacology. V. 31 (2): P. 278-285.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Ловинская А.В., 2015

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 89324 от 21.04.2025.