Роль полиморфизма редокс-чувствительных генов в механизмах окислительного стресса при ожирении и метаболических заболеваниях

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

В обзоре обобщены представления о роли полиморфизма редокс-чувствительных генов, регулирующих развитие окислительного стресса, при ожирении и ассоциированных метаболических заболеваниях. Рассмотрена концепция окислительного стресса, активированных кислородных метаболитов (АКМ), к которым относятся активные формы кислорода, азота и хлора, дано представление об антиоксидантной системе и ее ферментативном звене. Показана важная роль полиморфизма генов АКМ-продуцирующих ферментов — CYBA, CYBB, MT-ND1/2/4L, MT-CO1/3, XOR, CYP, NOS2/3, MPO — в индукции окислительного стресса при ожирении. Подчеркивается дуализм АКМ при ожирении, с одной стороны, необходимых для нормального адипогенеза и сигналинга, а с другой — выполняющих триггерную роль в развитии окислительного стресса. Продемонстрировано, что дисбаланс в антиоксидантной системе при ожирении и метаболических расстройствах может быть связан с вариабельностью генов ключевых антиоксидантных ферментов и белков — SOD1/2/3, CAT, GPX1-8, GSR, GSTP1, GSTM1, GSTT1, PRDX3, TXNIP, HMOX1, NQO1, NFE2L2, KEAP1. Показана критическая роль полиморфизма гена фактора транскрипции Nrf2, главного регулятора редокс-гомеостаза в физиологических условиях и при ожирении. Продемонстрировано, что нарушение редокс-гомеостаза вследствие вариабельности генов системы оксиданты – антиоксиданты способствует развитию патологического фенотипа ожирения. Понимание генетических механизмов, лежащих в основе окислительного стресса при ожирении и метаболических заболеваниях, необходимо для расширения знаний о механизмах патогенеза данных заболеваний и разработки эффективных способов их коррекции.

Полный текст

ВВЕДЕНИЕ

Ожирение — мультифакторное хроническое гетерогенное заболевание, характеризующееся избыточным накоплением жировой массы в организме, представляющее риск для здоровья [1]. Ожирение — одно из самых распространенных заболеваний среди населения Земли, достигшее в последние годы уровня пандемии. Распространенность ожирения увеличилась втрое за последние четыре десятилетия [1, 2]. Согласно прогнозам Всемирной организации здравоохранения, при сохранении данной тенденции к 2025 г. почти 20 % населения земного шара будет страдать ожирением.

Этиология ожирения включает множество факторов, важнейшими из которых являются нарушение пищевого поведения (алиментарный гедонизм, изменение пищевого рациона), генетическая предрасположенность, гиподинамия, неблагоприятное влияние внешней среды, социальные факторы [1]. Согласно генетическим исследованиям, наследуемость ожирения составляет 40–70 % [3]. Наиболее распространена полигенная форма ожирения, обусловленная множеством вариантов генов, формирующих патологический фенотип ожирения. К настоящему времени благодаря широкомасштабному проведению полногеномного поиска ассоциаций (GWAS) уже идентифицировано более 1100 локусов, ассоциированных с ожирением, но исследования в данном направлении продолжаются [1].

Ожирение, как правило, возникает в результате энергетического дисбаланса, когда количество энергии, поступающее из потребляемой пищи, превосходит затраты энергии в процессе жизнедеятельности. Вследствие избытка энергии в клетках жировой ткани накапливаются липиды, приводя к увеличению ее массы [2]. Ожирение диагностируют по величине индекса массы тела (ИМТ), который рассчитывается как отношение массы тела в килограммах к квадрату роста в метрах. Нормальные показатели ИМТ находятся в пределах 18,5–24,9 кг/м2, ИМТ ≥25 кг/м2 классифицируется как повышенная масса тела, ИМТ ≥30 кг/м2 — как ожирение.

Ожирение часто сопровождается сопутствующими метаболическими расстройствами, наиболее распространенными из которых являются метаболический синдром (МС), инсулинорезистентность (ИР), сахарный диабет 2-го типа (СД2), сердечно-сосудистые заболевания, дислипидемия, репродуктивные расстройства, хронические заболевания печени, почек, артроз, некоторые виды рака [4]. В эпидемиологических, клинических и экспериментальных исследованиях показана критическая роль хронического окислительного стресса (ОС) в патогенезе ожирения и сопряженных метаболических нарушений [5, 6].

Окислительный стресс определяется как дисбаланс в системе оксиданты ↔ антиоксиданты, сопровождающийся усилением свободно-радикального окисления на фоне дисфункции антиоксидантной системы, что приводит к повреждению биомолекул и структур клетки [7, 8]. Важнейшими индукторами ОС являются высоко активные интермедиаты, которые образуются в процессе метаболизма в результате окислительно-восстановительных реакций или путем электронного возбуждения с участием молекулярного кислорода [8]. В зависимости от природы реактивного атома (кислорода, азота, галогенов) выделяют активные формы кислорода (АФК, О2–•, Н2О2, ОН, 1О2), азота (АФА, NO, NO2, ONOO), галогенов (АФГ, HOCl, HOBr, HOI) и др. [8]. В целом, все эти соединения являются прооксидантами и получили название «активированных кислородных метаболитов» (АКМ), то есть класс высоко реакционноспособных кислородных соединений радикальной и нерадикальной природы [9]. Поддержание редокс-гомеостаза обеспечивает антиоксидантная система, включающая ферментативные и неферментативные антиоксиданты [9, 10]. По определению [11], «антиоксидант — это любое вещество, которое присутствуя в низких, по сравнению с окисляемым субстратом, концентрациях, существенно задерживает или препятствует его окислению».

Регуляция ОС находится под жестким генетическим и эпигенетическим контролем, позволяющим поддерживать редокс-гомеостаз организма как необходимое условие нормального функционирования [12, 13]. Любой нескомпенсированный дисбаланс в редокс-системе будет способствовать развитию ОС и различных патологических состояний [7]. Согласно [8], ОС подразделяется на эустресс и дистресс. При окислительном эустрессе повышение уровня АКМ не превышает физиологических пределов, что обеспечивает передачу сигналов и защиту от патогенов. Напротив, окислительный дистресс сопровождается значительным повышением уровня АКМ, что приводит к необратимой окислительной модификации макромолекул, гибели клетки, запуску патологических процессов.

В работах многих авторов продемонстрировано, что к ведущим процессам, ассоциированным с ожирением, наряду с ОС относятся воспаление и гипоксия [14, 15]. Причем, с одной стороны, ожирение сопровождается ОС, а с другой стороны, ОС способен инициировать развитие ожирения, стимулируя отложение белой жировой ткани, повышение дифференцировки преадипоцитов, пролиферацию адипоцитов и увеличение размеров зрелых жировых клеток [5].

К важнейшим молекулярным механизмам, индуцирующим продукцию АКМ и системный ОС при ожирении, относят: гипергликемию и аутоокисление глюкозы, дислипидемию, повышенную активность оксидантов, приводящую к гиперпродукции АКМ, дефицит антиоксидантной системы, митохондриальную и эндотелиальную дисфункцию, хроническое воспаление, гиперлептинемию [16–18]. Установлено, что выраженность системного окислительного стресса позитивно коррелирует с величиной ИМТ и ожирением [6].

Следует подчеркнуть, что среди различных детерминант ожирения, ассоциированных с ОС, важнейшая роль отводится генетическим факторам: полиморфизму генов, регулирующих ОС, и эпигенетической регуляции. На рис. 1 показан состав редокс-чувствительных генов и их роль в развитии ОС при ожирении и метаболических патологиях. Известно, что редокс-чувствительные гены, контролирующие развитие ОС, представлены двумя группами с противоположно направленными функциями: генами АКМ-продуцирующих ферментов, способствующих развитию ОС (СYBA, CYBB, MT-ND1/2/4L, MT-CO1/3, XOR, CYP, NOS1/2/3, MPO) и генами антиоксидантных ферментов (SOD1/2/3, CAT, GPX1-8, GSR, GSTP1, GSTM1, GSTT1, PRDX3, ТRX, TXNIP, HMOX1, NQO1), а также белков Nrf2-зависимой сигнальной системы (NFE2L2, KEAP1), противодействующих окислительному дистрессу, то есть состоянию острого ОС.

 

Рис. 1. Состав редокс-чувствительных генов и их роль в развитии окислительного стресса при ожирении и метаболических заболеваниях

 

В соответствии с этим целью данного обзора стало исследование особенностей влияния полиморфизма генов АКМ-продуцирующих и антиоксидантных ферментов на изменение редокс-баланса, приводящее к ОС, при ожирении и сопутствующих метаболических заболеваниях.

ПОЛИМОРФИЗМ ГЕНОВ АКМ-ПРОДУЦИРУЮЩИХ ФЕРМЕНТОВ ПРИ ОЖИРЕНИИ И МЕТАБОЛИЧЕСКИХ ЗАБОЛЕВАНИЯХ

Важнейшие источники АКМ при ожирении — прооксидантные ферменты, которые продуцируют АФК, АФА, АФГ [14, 19, 20]. Причем дисфункция прооксидантных ферментов вследствие полиморфизма кодирующих генов может модулировать образование АКМ, усиливая или снижая уровень ОС [12, 13]. АКМ эффективно генерируются семейством NADPH-оксидаз, ферментными комплексами электрон-транспортной цепи (ЭТЦ) митохондрий, ксантиноксидазой (КО), семейством изоформ цитохрома Р-450 (CYP) и NO-синтаз, миелопероксидазой и др. [9, 10].

Согласно исследованиям [21, 22], доказана ведущая роль NADPH-оксидазы и ЭТЦ митохондрий в генерации АФК при ожирении и сопутствующих метаболических нарушениях. NADPH-оксидаза (NОХ) представляет собой мультисубъединичный белковый комплекс, который генерирует О2–•/H2O2 путем переноса электронов от цитозольного NADPH к молекулярному кислороду [23]. Структура NОХ представлена 6 гетерогенными субъединицами, из которых 2 мембраносвязанные (gp91phox, p22phox) и 4 цитозольные (p47phox, p40phox, p67phox, Racl/2). NADPH-оксидазы образуют семейство, к которому принадлежат 7 гомологичных изоформ: NОХ1–NОХ5, Duox1,2 [23, 24]. Мембранные субъединицы ферментного комплекс — p22phox (α-субъединица) и gp91phox (β-субъединица) образуют гетеродимерный флавогемопротеин цитохром b-245, который формирует каталитическую электрон-транспортную систему оксидазы [23]. После клеточной активации цитозольные компоненты переносятся на мембрану и ассоциируются с цитохромом b-245, в результате чего образуется функционально активная NADPH-оксидаза.

Экспрессия различных изоформ NОХ характеризуется тканеспецифичностью: в адипоцитах преимущественно локализована Nox4, тогда как в мышечной ткани — Nox2, Nox4 и Duox1,2 [25]. Причем обнаружено, что в зависимости от стадии ожирения механизм генерации О2–•/H2O2 имеет свои особенности [25]. На ранней стадии ожирения основной вклад в генерацию АФК в адипоцитах вносит Nox4, на промежуточной стадии — Nox2, вследствие инфильтрации жировой ткани макрофагами и лейкоцитами. На поздних стадиях ожирения ключевую роль в генерации АФК начинает играть ЭТЦ митохондрий, которая благодаря гипергликемии и дислипидемии испытывает перегрузку, приводящую к утечке электронов из ЭТЦ и восстановлению молекулярного кислорода с образованием О2–•/H2O2. Согласно исследованию [22], АФК, генерируемые NADPH-оксидазами, могут индуцировать образование мито-АФК митохондриями и наоборот, что формирует порочный круг и усиливает развитие ОС при ожирении.

При ожирении АФК отводится двойственная роль: с одной стороны, они необходимы для адипогенеза и являются важнейшими вторичными посредниками в сигнальных каскадах адипоцитов, но при избыточной продукции способствуют гипертрофии и гиперплазии жировой ткани, то есть ее дисфункции и разнообразным метаболическим нарушениям [26].

Ряд аллельных вариантов в генах субъединиц NADPH-оксидаз могут влиять на ферментативную активность и продукцию АФК [12]. p22phox выполняет функцию скэффолд-субъединицы, стабилизируя цитохром b-245, и способствует инициации продукции супероксида изоформами NOX1–NOX4 [23]. p22phox кодируется геном CYBA (альфа-цепь цитохрома b-245), локализованным на хромосоме 16q24.2.

Замена –930A>G (rs9932581) в гене CYBA происходит в потенциальном сайте связывания факторов транскрипции C/EBP (CCAAT/энхансер-связывающие белки). Установлено, что аллель –930G повышает сродство C/EBP к промотору [27] и на 30 % повышает экспрессию гена [28]. Соответственно, генотип GG CYBA способствует повышению уровня фермента и увеличению продукции АФК, что ассоциировано с развитием ОС, более высоким ИМТ, НОМА-IR и уровнем инсулина, риском инсулинорезистентности и гипертензией [21, 27, 28].

Замена в локусе 242C>T гена CYBA (rs4673 His72Tyr) также влияет на активность NOX [29, 30]. Было показано, что аллель 242T связана со снижением стабильности и активности ферментного комплекса и более низким уровнем продукции АФК [31]. Однако в исследовании [30] сообщалось, что генотип СС обеспечивал защиту от ожирения и сахарного диабета и был ассоциирован с более низкими уровнями глюкозы в плазме и содержанием висцерального жира у пациентов с гипертонией.

Исследование русской популяции Ю. Азаровой и соавт. [32] показало, что генотип АА гена CYBA (rs4673, G>A) в общей группе ассоциировался с повышенным риском развития СД2 и увеличенным ИМТ. При раздельном сравнении больных СД2 мужчин и женщин с контролем оказалось, что установленная ассоциация rs4673 была характерна только для женщин. В другом исследовании [33] было установлено, что замена 242C>T ассоциирована с развитием метаболического синдрома у иранских мужчин: аллель Т была связана со снижением риска развития МС у мужчин, но не у женщин. Помимо этого, обнаружено, что данная замена в гене CYBA существенно влияет на функцию эндотелия у больных СД2: показано протективное действие аллели Т [34]. В работе [35] продемонстрировано, что пациенты с СД2 и генотипом СТ или ТТ характеризовались значительно более низкими значениями ИМТ и концентрацией инсулина, чем пациенты с генотипом СС. Однако в контроле такой зависимости не наблюдалось.

Проведенное исcледование русской популяции Центральной России показало, что rs1049255 640A>G CYBA ассоциирован с развитием ИБС только у мужчин и не связан с предрасположенностью к заболеванию у женщин [36]. Данная однонуклеотидная замена, локализованная в 3'UTR-области гена CYBA, не приводит к аминокислотной замене, однако показано, что генотип AA ассоциирован с повышением продукции АФК на 30 % по сравнению с гомозиготами GG [37], то есть аллель G рассматривается как протективная. Биоинформатический анализ mQTL (methylation quantitative trait locus) выявил, что аллель риска А rs1049255 CYBA связана с cis-mQTL, ассоциированными со снижением метилирования ДНК в периферической крови. Исходя из этого, носительство аллели А может способствовать повышению экспрессии CYBA посредством механизмов mQTL-ассоциированного снижения метилирования.

При исследовании российскими учеными славянской популяции [38] впервые установлена ассоциация однонуклеотидных замен в интронах гена CYBB (бета-цепь цитохрома b-245, gp91phox) — rs5963327 G>Т и rs6610650 G>А c повышенным риском развития СД2. CYBB расположен на коротком плече Х-хромосомы в положении 21.1, содержит 13 экзонов. Механизм взаимосвязи данных аллельных вариантов с заболеванием объясняется более интенсивным синтезом CYBB у носителей исследованных минорных аллелей, что проявляется увеличением концентрации АФК и прооксидантным сдвигом редокс-гомеостаза в плазме крови. Важно отметить, что из всех субъединиц НАДФН-оксидазы только gp91phox содержит сайты связывания кофакторов НАДФН, ФАД и двух молекул гема, что обеспечивает каталитическую активность фермента и транспорт электронов с образованием супероксидного анион-радикала [23].

Все больше данных свидетельствует о роли митохондриальной дисфункции в патогенезе ожирения и сопряженных метаболических нарушений [14, 39]. Метаболическая перегрузка митохондрий при ожирении приводит к липо- и глюкозотоксичности, ОС и повреждению митохондрий. Недавние исследования показали снижение количества митохондрий, подавление активности митохондриальных ферментов, а также нарушение регуляции митофагии у пациентов с ожирением, СД2 или МС [16, 40].

Исследования многих авторов показали, что митохондриальная дисфункция при ожирении может быть обусловлена однонуклеотидными заменами в генах, кодирующих белки дыхательной цепи митохондрий [41–43]. При проведении поиска ассоциаций для выявления генетических маркеров, связанных с повышением ИМТ и ожирением, было протестировано 984 митохондриальных однонуклеотидных замены (mtSNP) в выборке из 6528 взрослых лиц в возрасте от 24 до 85 лет [42]. Авторы идентифицировали три mtSNP (mt3336T>G, mt4851C >T, mt10550A>G), локализованных в генах субъединиц I комплекса ЭТЦ — NADH-дегидрогеназы (MT-ND1, MT-ND2 и MT-ND4L) и два mtSNP (mt6663A>G, mt9698T>C), локализованных в генах, кодирующих субъединицы IV комплекса — цитохром-с-оксидазы (MT-CO1 и MT-CO3), которые были связаны с ожирением. Как известно, нарушение структуры комплексов ЭТЦ сопровождается ингибированием электрон-транспортной функции ЭТЦ, утечкой электронов и одноэлектронным восстановлением О2 с образованием АФК, которые инициируют развитие митохондриального ОС [44].

В работе [41] изучали митохондриальный геном 96 молодых людей с ожирением и выявили, что замена 3497C>T (A64V) в гене субъединицы 1 НАДН-дегидрогеназы (ND1) ассоциирована с ожирением и снижает функциональную активность комплекса I, повышая продукцию АФК. Следует отметить, что в митохондриях идентифицировано более 11 сайтов генерации АФК, которые в физиологических условиях могут продуцировать до 2–3 % O2–•/H2O2, тогда как в патологических условиях, в том числе при ожирении, интенсивность образования АФК может увеличиваться в десятки раз, создавая предпосылки для развития ОС [44].

К прооксидантным ферментам, участвующим в генерации АФК, относится ксантиноксидаза (КО), изоформа ксантиноксидоредуктазы (КОР). КОР кодируется геном ХOR (XDH, 2р23.1) и участвует в катаболизме пуринов до мочевой кислоты; представлена двумя изоформами — дегидрогеназной (КД) и оксидазной (КО) [45]. Конверсия КД в КО происходит посттрансляционно и может быть обратимой при окислении остатков цистеина (Cys535, Cys992) и необратимой путем ограниченного протеолиза фрагмента полипептидной цепи КД [45]. В недавнем исследовании показано, что трансформация КД в КО также может быть следствием полиморфизма гена ХOR [46]. Авторами установлено, что несинонимичные однонуклеотидные замены играют решающую роль в соотношении КД/КO. Показано, что при заменах His1221Arg и Ile703Val преобладает оксидазная изоформа фермента над дегидрогеназной, что вносит весомый вклад в развитие ОС при ожирении.

При обследовании 118 лиц с избыточным весом/ожирением было установлено, что повышенная активность КО тесно связана с ожирением [47].

Очевидно, что полиморфизм гена ХОR определяет различную роль фермента при ожирении, поскольку КОР обладает различными типами активности [45]. Причем при всех типах активности КОР образуется мочевая кислота, тогда как в результате оксидазной активности дополнительно продуцируется O2–•/H2O2, а при нитрит/нитрат-редуктазной активности — оксид азота.

Важным источником АФК в организме является суперсемейство цитохрома Р450 (CYP), представленное 57 функциональнo активными генами [48]. Суперсемейство CYP является разнообразной группой гем-содержащих монооксигеназ, участвующих в метаболизме или биотрансформации ксенобиотиков и лекарств, а также в биосинтезе эндогенных молекул (стеролов, жирных кислот, эйкозаноидов, витаминов и др.). CYP экспрессируются и локализуются на цитоплазматической стороне эндоплазматического ретикулума (50 CYP) и на люминальной стороне внутренней митохондриальной мембраны (7 CYP) клеток большинства тканей [48]. Однако при функционировании CYP могут образовываться АФК в процессе каталитического цикла и его разобщения [49]. В частности, замены Ile269Phe (CYP2C8*2) и Arg139Lys с Lys399Arg (CYP2C8*3) эпоксигеназы локализованы не в активном сайте, а в апоферменте, что влияет на взаимодействие с редокс-партнерами (цитохромом Р450-редуктазой) в каталитическом цикле. Это увеличивает скорость переноса электронов и оборот субстрата, что сопровождается избыточной продукцией перекиси водорода и других АФК [50]. Модуляция активности CYP при ожирении, связанная с полиморфизмом кодирующих генов, способствует нарушению каталитического цикла и повышенной генерации АФК [51].

В обширном исследовании российской популяции изучалась связь однонуклеотидных замен в генах, кодирующих подсемейство ферментов цитохрома P450 CYP2C, участвующих в метаболизме арахидоновой кислоты с образованием разнообразных вазоактивных продуктов, с риском развития ИБС [52]. Был обнаружен защитный эффект аллели CYP2C19*2 (rs4244285) против риска ИБС. Данная замена 681G>А в экзоне 5 создает аберрантный сайт сплайсинга, изменяющий рамку считывания мРНК и приводящий к образованию усеченного нефункционального белка. По мнению авторов, вариант CYP2C19*2 связан с частичной потерей функции, снижением активности фермента, приводящей к уменьшению продукции АФК цитохромом Р450, что, в определенной мере, защищает от ОС характерного для ИБС.

Источником АФГ является фермент миелопероксидаза (МПО), гемопротеин, который в изобилии экспрессируется в нейтрофилах, в меньшей степени в моноцитах и макрофагах, и участвует в инициации воспалительной реакции в жировой ткани [53]. Прооксидантный фермент МПО (МРО, 17q23.1) катализирует образование АФГ (HOCl, HOBr и др.), которые обладают бактерицидным действием, являясь ранними биомаркерами воспаления [54]. При чрезмерной продукции АФГ повреждают различные макромолекулы, вызывая галогенирующий стресс [54]. Наблюдения на людях показывают, что в плазме пациентов с ожирением существенно увеличивается количество нейтрофилов и уровень МПО в периферической крови, что свидетельствует о положительной корреляции между активацией МПО и метаболическими нарушениями, ассоциированными с ожирением [55].

В промоторе гена MPO была идентифицирована функционально значимая замена — 463G>A (rs2333227) [56]. Наличие гуанина в положении –463 создает сайт связывания фактора транскрипции SP1 в промоторе гена MPO, что увеличивает транскрипцию в 25 раз. Однако показано, что уровень экспрессии МРО зависит от типа клеток [57]. Генотип GA характеризуется в 1,6–2,5 раза более высокими уровнями мРНК МРО, чем генотип GG в мононуклеарных клетках периферической крови человека, тогда как в макрофагах генотип GG связан в 4,6–7 раз более высоким уровнем МПО, чем при генотипе GA.

В исследовании [58] обнаружено, что генотипы –463GA и AA MPO ассоциированы с повышенным риском артериальной гипертензии у лиц с ожирением и СД2. В работе [59] при обследовании 97 детей с ожирением и МС установлено, что генотип GG по rs2333227 гена MPO способствовал наибольшему риску развития ОС и ИР.

В исследовании О. Бушуевой установлена ассоциация rs2333227 –463G>A МРО с развитием ишемической болезни сердца в русской популяции Центральной России [36]. Аллель А является протективной, тогда как носительство функционально более активной аллели G может способствовать повышенному риску развития ИБС и ОС за счет повышенной генерации АФГ. Известно, что гипохлорит (HOCl), важнейший продукт МРО-реакции, в присутствии Fe2+ эффективно генерирует высоко токсичный гидроксильный радикал (OH), инициирующий перекисное окисление липидов (ПОЛ) и вызывающий окислительное повреждение биомембран и биомолекул [9, 10].

Еще один важный источник АКМ при ожирении — семейство NO-синтаз (NOS), которые в монооксигеназной реакции продуцируют оксид азота (NO), являющийся предшественником АФА (NO2, ONOO и др.) [60]. NO образуется в результате окисления кислородом гуанидиновой группы L-аргинина при участии NO-синтаз, в реакции образуется также L-цитруллин. NO-синтаза, димерный флавогемопротеин, представлена тремя изоформами: NOS1 (нейрональная), NOS2 (индуцибельная) и NOS3 (эндотелиальная), каждая из которых кодируется отдельным геном. Эти три изофермента NOS могут влиять на этиологию ожирения посредством образования NO, который играет важную роль в регуляции ожирения, расхода энергии и чувствительности к инсулину [60].

Многими исследованиями установлено, что оксид азота (NO) является одним из центральных факторов, регулирующих ожирение и системный метаболизм [60, 61]. В наибольшей степени изучена роль полиморфизма гена NOS3 (7q36.1) при ожирении и ассоциированных метаболических расстройствах [60, 62]. В клинических и экспериментальных исследованиях сообщалось о снижении биодоступности NO при ожирении вследствие дисбаланса между синтезом и элиминацией оксида азота, посттрансляционных модификаций фермента, а также наличием однонуклеотидных замен в NOS3 [62]. Проведение генетического исследования афроамериканской популяции показало, что носители аллели Asp при замене Glu298Asp NOS3 (rs1799983) показали больший индекс массы тела, окружность талии и количество подкожного жира, что может свидетельствовать о предрасположенности к ожирению [63]. Замена 894G>Т NOS3 приводит к изменению первичной структуры фермента, что ослабляет связывание NOS3 с кавеолином-1 в кавеолярных рафтах мембран эндотелиальных клеток и уменьшает доступность NOS3, снижая активность фермента и продукцию NO [64].

Вместе с тем генетический анализ условно здоровых лиц русской национальности Московской области выявил связь генотипа GG (894G>T) гена NOS3 с эндотелиальной дисфункцией и метаболическим статусом [65]. У лиц с генотипом GG отмечена положительная корреляция с более высокими уровнями артериального давления, общего холестерина и холестерина липопротеидов низкой плотности, большей частотой эндотелиальной дисфункции, альбуминурии и инсулинорезистентности.

Поскольку предрасположенность к ожирению проявляется уже в раннем возрасте, был проведен анализ маркеров гена NOS3 у детей и подростков [66, 67]. Авторы обнаружили, что генотип 4a4a по полиморфизму в интроне 4 NOS3 и гаплотип C-T-G-C (NOS3-tagSNPs rs3918226, rs3918188, rs743506 и rs7830) были ассоциированы с ожирением у детей и подростков. Следует отметить, что VNTR-последовательности длиной 27 п. н. в интроне 4 гена NOS3 регулируют ген посттранскрипционно, влияя на образование микроРНК, которые взаимодействуя с мРНК целевого гена, приводят к ее деградации. Наиболее распространенными являются аллели с пятью (4b) или четырьмя повторами (4a) [68].

Антиобезогенная роль NOS3 подтверждена во многих экспериментальных исследованиях [62]. В работе [69] показано, что мыши с тройным нокаутом генов eNOS, nNOS и iNOS демонстрируют повышенное висцеральное ожирение, гипертензию, гипертриглицеридемию и нарушение толерантности к глюкозе. Напротив, мыши со сверхэкспрессией eNOS в эндотелии сосудов обладают антиобезогенным фенотипом, связанным с большей скоростью метаболизма при высокожировой диете, устойчивостью к накоплению белой жировой ткани, гиперинсулинемией, низкими уровнями свободных жирных кислот и триглицеридов в плазме крови [70].

Очевидно, что генотип по гену NOS3 влияет на предрасположенность к метаболическим нарушениям, связанным с ожирением [66, 67]. Действительно, генотип СС –786T>C NOS3 ассоциирован с метаболическим синдромом у детей и подростков [71]. Гаплотип C-4b-Glu (–786T>C, 4b/4aVNTR, Glu298Asp) был связан с гипертонией у детей и подростков с ожирением и с более низким уровнем NO у взрослых с фенотипом ожирения в различных этнических группах [60, 71].

В Иранской популяции обнаружено, что однонуклеотидная замена в гене индуцибельной NO-синтазы — NOS2 1823C>T (rs2297518) — в значительной степени ассоциирована с предрасположенностью к метаболическому синдрому в общей группе и у женщин [72]. Аллель Т и генотипы СТ+ТТ показали высокую корреляцию с ожирением и риском МС. Замена аминокислоты в структуре фермента (Ser608Leu), локализованной в каталитическом домене, повышает активность NOS2, приводит к сверхпродукции оксида азота и создает предпосылки для развития нитрозильного стресса и образования цитотоксичных АФА.

Влияние однонуклеотидных замен в генах АКМ-продуцирующих ферментов на развитие ОС при ожирении и метаболических расстройствах отражено в табл. 1.

 

Таблица 1. Однонуклеотидные замены в генах АКМ-продуцирующих ферментов, регулирующих развитие окислительного стресса, при ожирении и метаболических заболеваниях

Table 1. Single-nucleotide substitutions in the genes of AОM-producing enzymes regulating the development of oxidative stress in obesity and metabolic diseases

Однонуклеотидная замена

Ген, хромосома

Экспрессия гена, активность фермента, продукция АКМ, уровень ОС

Эффекты однонуклеотидной замены

Популяция, пол, возраст (годы)

Ссылки

–930A>G

(rs9932581)

CYBA

16q.24.2

Аллель –930G: CYBA↑, NOX↑, АФК↑, ОС↑

Аллель –930G и генотип –930GG ассоциированы с высоким ИМТ, НОМА-IR, инсулинорезистентностью, гипертензией

Испанцы (м/ж, 20–60).

Кавказцы (м/ж, 48–56).

Испанцы (м/ж, 58–60)

[21]

[27]

[28]

242C>T

(rs4673)

640A>G

(rs1049255)

CYBA

16q.24.2

242C>T (72His>Tyr в p22phox): NOX↓, АФК↓, ОС↓

640 АА (3'UTR CYBA): NOX↑, АФК↑, ОС↑

Аллель Т снижает риск развития метаболического синдрома у иранских мужчин.

Протективная роль аллели Т: генотипы СТ или ТТ ассоциированы с более низким ИМТ и меньшим уровнем инсулина при СД2.

Генотип АА ассоциирован с повышенным риском развития СД2 и повышенным ИМТ в общей группе и у женщин.

Генотип АА ассоциирован с развитием ИБС у мужчин. Аллель G — протективная

Иранцы

(м, 48–60).

Поляки

(м, 56–60).

Японцы

(м/ж, 50–64)

Русские

(м/ж, женщины, 54–68).

Русские

(м, 61)

[33]

[34]

[35]

[32]

[36]

G>Т (rs5963327)

G>А

(rs6610650)

CYBВ

Хр21.1

rs5963327Т, rs6610650А

(интроны CYBВ):

CYBВ↑, АФК↑, ОС↑

Минорные аллели Т и А ассоциированы с высоким риском СД2

Русские

(м/ж, 54–68)

[38]

mt3336T>G mt4851C>T mt10550A>G

MT-ND1

MT-ND2

MT-ND4L

NADH-дегидрогеназа↓, АФК↑, ОС↑

Ассоциированы с ожирением

Японцы

(м/ж, 58 ± 5).

Немцы

(м/ж, 24–85).

Испанцы

(м/ж, 51 ± 15)

[41]

[42]

[43]

mt6663A>G

mt9698T>C

MT-CO1

MT-CO3

Цитохром-с-оксидаза↓, АФК↑, ОС↑

Ассоциированы с ожирением

Японцы

(м/ж, 58 ± 5).

Немцы

(м/ж, 24–85).

Испанцы

(м/ж, 51 ± 15)

[41]

[42]

[43]

Ile703Val

(rs17011368)

3662A>G

His1221Arg

ХOR (XDH), 2р23.1

Аминокислотные замены в КОР: КО↑ О2–•↑, NO↑, ОС↑

Ассоциированы с ожирением, сердечно-сосудистыми заболеваниями в различных популяциях

Японцы

(м/ж, 50–60).

Черногорцы

(м/ж, 55 ± 15)

[46]

[47]

CYP2C8*2

(Ile269Phe)

CYP2C8*3

(Arg139Lys)

CYP2C8

10q24

Аминокислотные замены повышают оборот субстратов: АФК↑, ОС↑

Ассоциированы с повышенным ИМТ и метаболическими нарушениями

Норвежцы

(м/ж, 20–62)

[51]

CYP2C19*2

681G>А

(rs4244285)

CYP2C19

10q23.33

Синонимичная замена в экзоне 5: возникновение аберрантного сайта сплайсинга, потеря функции, CYP2C19*2↓, АФК↓, ОС↓

Защитный эффект против риска развития ИБС

Русские

(м, 62 ± 9)

[52]

–463G>A

(rs2333227)

МРО, 17q23.1

Аллель –463G: активность МПО↑, НОCl↑, ОС↑

Аллель –463А: активность МПО↓, АФГ↓, ОС↓

Генотип –463GG MPO связан с риском развития ОС и инсулинорезистентности у детей с ожирением и метаболическим синдромом.

Генотипы –463GA и AA MPO ассоциированы с повышенным риском артериальной гипертензии у лиц с ожирением и СД2.

Аллель –463G ассоциирована с повышенным риском ИБС и развитием ОС, аллель А — протективная

Турки

(м/д, дети, 12 ± 2)

Китайцы

(м/ж, 69 ± 0,7)

Русские

(м/ж, 55–69)

[59]

[58]

[36]

1823C>T

(rs2297518)

NOS2

17q11.2

Замена Ser608Leu в каталитическом домене NOS2: NOS2↑, NO↑, нитрозильный стресс↑

Аллель 1823Т ассоциирована с СД2 и ожирением

Иранцы

(м/ж, 50–60)

[72]

894G>T

(rs1799983)

NOS3 7q36.1

Замена Glu298Asp в NOS3 нарушает связывание энзима с кавеолами, активность NOS3↓, NO

Аллель Asp298 ассоциирована с предрасположенностью к ожирению (более высокий ИМТ, большая окружность талии и количество подкожного жира)

Афроамериканцы

(м/д, 11–29)

[63]

–786T>C

(rs2070744)

Аллель –786C приводит к снижению активности промотора и транскрипции гена: NOS3↓, NO

Генотип –786СС ассоциирован с метаболическим синдромом у детей и подростков.

Гаплотип C-Glu (–786T>C, Glu298Asp) связан с гипертонией у детей и подростков, с ожирением и с более низким уровнем NO

Бразильцы

(м/д, 12 ± 3)

[66, 67, 71]

Примечание. ↑ — повышение экспрессии гена, активности фермента, уровня активированных кислородных метаболитов (АКМ) и окислительного стресса (ОС) относительно нормы; ↓ — снижение обсуждаемых показателей по сравнению с контролем; м/ж — мужчины/женщины, м/д — мальчики/девочки; ИМТ — индекс массы тела; ИБС — ишемическая болезнь сердца; СД2 — сахарный диабет 2-го типа; КОР — ксантиноксидоредуктаза; МПО — миелопероксидаза; АФГ — активные формы галогенов

 

Таким образом, полиморфизм генов ферментов, продуцирующих АФК, АФА и АФГ, вносит существенный вклад в развитие ОС, ассоциированного с ожирением и метаболическими расстройствами. АКМ проявляют при этом двойственную роль, с одной стороны, при низких концентрациях они участвуют в регуляторных сигнальных каскадах в адипоцитах и клетках других тканей, а с другой — вызывают цитотоксические эффекты при сверхпродукции и инициируют развитие ОС.

ПОЛИМОРФИЗМ ГЕНОВ АНТИОКСИДАНТНОЙ СИСТЕМЫ ПРИ ОЖИРЕНИИ И МЕТАБОЛИЧЕСКИХ ЗАБОЛЕВАНИЯХ

Антиоксидантная система (АОС), обеспечивая баланс между продукцией и элиминацией АКМ, играет важнейшую роль в поддержании редокс-гомеостаза при ожирении. В исследованиях многих авторов продемонстрирован дисбаланс в функционировании АОС при ожирении и ассоциированных метаболических расстройствах, связанный с вариабельностью генов ключевых антиоксидантных ферментов [5, 7, 73].

В функционировании АОС ведущая роль отводится ферментативным антиоксидантам (супероксиддисмутазе, каталазе, глутатионпероксидазе, глутатион-S-трансферазе, глутатион-дисульфидредуктазе, гемоксигеназе-1, NAD(P)H: хиноноксидо-редуктазе-1, пероксиредоксинам, параокcоназе-1), активность которых может регулироваться на транскрипционном, посттранскрипционном и посттрансляционном уровнях. Нарушения антиоксидантных механизмов при ожирении было показано как у людей, так и в экспериментальных моделях на животных [74].

Супероксиддисмутаза (SOD), нейтрализующая супероксидный анион-радикал (О2–•) с образованием Н2О2 и О2, представлена у человека тремя изоформами: цитозольной SOD1 (SOD1, 21q22.11), митохондриальной SOD2 (SOD2, 6q25.3) и внеклеточной SOD3 (SOD3, 4p15.2) [75]. В активном центре SOD1 и SOD3 присутствуют ионы Cu2+ и Zn2+, у SOD2 — Mn3+.

Обнаружено, что замена –251A>G (rs2070424) SOD1, происходящая в третьем интроне, может быть связана с ожирением у мексиканских женщин, поскольку распространенность генотипов GA+GG была значительно выше в группе с ожирением по сравнению с группой здоровых лиц и сопровождалась снижением активности фермента [76]. Кроме того, установлено, что лица с однонуклеотидными заменами –251A>G SOD1, 47A>G SOD2 и –262C>T CAT характеризовались более высоким накоплением висцерального жира.

В ряде работ исследовали связь замены Ala16Val (47C>T) SOD2 человека с ожирением [77, 78]. Данная замена модифицирует последовательность, кодирующую сигнальный N-концевой пептид MTS (Matrix Targeting Signal), который направляет фермент в матрикс митохондрий. Установлено, что предшественник SOD2, содержащий Ala в сигнальном пептиде, на 30–40 % эффективнее транспортируется в митохондрии, что способствует большей активности фермента. Val-вариант SOD2 обладает меньшей активностью, что обусловливает повышенную продукцию супероксида и других АФК [79]. В исследовании [78] установлено, что у лиц с генотипом ТТ SOD2 вероятность развития ожирения была в два раза выше, чем у лиц с генотипами СС или СТ. В другом исследовании [77] авторы обнаружили, что генотип СТ наблюдался у 90 % лиц с ожирением, а генотип ТТ ассоциировался со сниженной общей активностью SOD.

В работе [73] сообщалось о роли однонуклеотидной замены в гене SOD3 172A>G (rs2536512) при ожирении и сопутствующих расстройствах в популяции Ближнего Востока. Причем протективный эффект был связан с аллелью А, у носителей которой отмечалась меньшая вероятность развития ожирения. Данная однонуклеотидная замена обусловливает замену аминокислот Ala58Thr, что способствует повышению активности внеклеточной изоформы SOD3. Активация SOD3 во внеклеточном компартменте эндотелиальных клеток усиливает нейтрализацию супероксида и блокирует образование пероксинитрита, вовлеченного в нарушение эндотелий-зависимой вазодилатации и развитие гипертонии, индуцированной ожирением [73].

Каталаза (CAT, 11p13) — пероксисомальный гем-содержащий фермент, играет ключевую роль при ОС путем расщепления гидропероксида до Н2О и О2, что предотвращает образование высокотоксичного гидроксильного радикала из Н2О2 в присутствии ионов Fe2+/Cu+. Продемонстрировано, что полиморфизм гена каталазы ассоциирован с ожирением и метаболическими расстройствами [80]. В частности, было показано, что у больных СД2 наблюдалось четырехкратное увеличение концентрации Н2О2 по сравнению со здоровыми людьми на фоне снижения активности каталазы в клетках крови. Сообщалось, что варианты CAT, а именно –262C>T (rs1001179) и –844A>G (rs769214), тесно связаны с СД2. Эти замены в промоторной области гена имеют существенную функциональную значимость, влияя на экспрессию САТ и концентрацию каталазы в клетках крови [80]. Исследования показали, что наличие редких вариантов САТ rs769214 (–844A>G), rs7943316 (–89T>A) и rs1049982 (–20C>T) значимо коррелировало с препубертатным ожирением у детей [12, 81, 82]. Кроме того, было обнаружено, что rs769214 связан с более высоким весом, ИМТ и уровнем белка, связывающим жирные кислоты адипоцитов (Adipocyte fatty acid-binding protein, A-FABP) без достоверного влияния на активность каталазы в эритроцитах. Вместе с тем другие авторы обнаружили, что в шведской популяции уровни каталазы были значительно выше у носителей аллели Т rs1001179 по сравнению с лицами, гомозиготными по аллели С [82].

Согласно исследованиям [83], проведенным в популяциях подростков двух этнических групп — русских и бурят, — обнаружен различный вклад замены –262С>T гена САТ (rs1001179) в формирование артериальной гипертензии. Для подростков бурятской национальности показано, что аллель С ассоциирована с предрасположенностью к гипертензии. Вместе с тем для подростков русской национальности подобной ассоциации не выявлено.

Таким образом, экспрессия гена СAT и активность каталазы участвуют в механизмах защиты от ОС, индуцированного ожирением и метаболическими нарушениями, тогда как полиморфизм САТ может снижать эффективность антиоксидантной защиты при ожирении.

Важным компонентом АОС, вовлеченным в защиту клетки от перекиси водорода и различных органических гидроперекисей путем восстановления с участием глутатиона, является семейство глутатионпероксидаз (GPх). Семейство включает восемь изоферментов, которые кодируются различными генами и отличаются по тканевой локализации и субстратной специфичности; изоформы GPx1–4 и 6 являются селенопротеинами, то есть содержат в активном центре селеноцистеин (Sec) [84, 85].

Данные об активности изоформ GPх в крови и жировой ткани весьма противоречивы. Большинство авторов сообщают о снижении активности фермента при ожирении и сопутствующих патологиях, но имеются наблюдения об активации GPх, что рассматривается как адаптивная реакция [86]. Большой вклад в изменение активности ферментов вносит полиморфизм GPX. Ген GPX1 (3p21.31) экспрессируется практически во всех тканях. Для него известна миссенс-мутация 594C>Т (Pro198Leu; rs1050450). Во многих исследованиях показано, что аллель Leu (Т) связана с более тяжелым ОС, ожирением и инсулинорезистентностью с некоторыми гендерными различиями [12]. Скрининг гена GPХ1 у 184 японских пациентов с СД2 выявил четыре варианта изменений (–602A>G, +2C>T, Ala(5)/Ala(6) и Pro198Leu) [12]. Анализ in vitro показал, что комбинация Ala6/198Leu приводила к снижению активности фермента на 40 %, а комбинация замен — 602G/+2T — к снижению транскрипционной активности на 25 %. Кроме того, авторы предположили, что функционально значимые варианты гена GPХ1 связаны с повышенным риском атеросклероза у пациентов с CД2.

При обследовании русской популяции установлена ассоциация rs4902346 (A>G) гена GPX2 c повышенным риском развития СД2 у мужчин [87]. Было установлено, что минорная аллель G rs4902346 связана со снижением экспрессии гена GPX2 в подкожной и висцеральной жировой ткани, печени и других тканях, что сопровождалось накоплением субстратов фермента — перекиси водорода, пероксинитрита и гидроперекисей липидов — и, как следствие, нарушением редокс-гомеостаза. В группе женщин rs4902346 был связан с пониженным содержанием восстановленного глутатиона, важнейшего низкомолекулярного антиоксиданта, в плазме крови и нарушением редокс-гомеостаза. По мнению авторов, найденные ассоциации свидетельствуют о наличии полового диморфизма во взаимосвязях гена GPX2 с исследованными фенотипами.

В обширном исследовании [88] при анализе однонуклеотидных замен в генах GPХ у мексиканских детей и подростков обнаружено два гаплотипа, ассоциированных с ожирением по критерию ИМТ в GPX3, GPX5 и GPX6, и гаплотип по критерию процентного содержания жировой массы тела (ПЖМТ) в GPX3. Вместе с тем авторы обнаружили защитный эффект rs922429 GPX3 и rs2074451 GPX4 у мексиканских детей и подростков по критерию ПМЖТ.

В исследовании [12] изучали 59 однонуклеотидных замен в генах GPX 1–7. Было установлено, что rs757228 и rs8103188 (GPX4) отрицательно коррелируют, а rs445870 (GPX5) и rs406113 (GPX6) положительно коррелируют с ожирением у испанских детей.

Наряду с глутатионпероксидазой существенная роль в клеточных редокс-зависимых процессах принадлежит глутатион-S-трансферазе (GST). GST относится к суперсемейству ферментов детоксикации фазы II. Это мультифункциональные белки, использующие восстановленный глутатион для конъюгации и элиминации гидрофобных ксенобиотиков, нейтрализации свободно-радикальных интермедиатов и продуктов перекисного окисления липидов типа 4-гидроксиноненаля [9, 10]. GST подразделяются на три семейства: цитозольные, митохондриальные и микросомальные. Цитозольные GST представляют самое большое семейство и делятся на семь различных классов: альфа (А), мю (М), омега (O), пи (P), сигма (S), тета (T) и дзета (Z).

Эпидемиологические исследования продемонстрировали, что генетическая вариабельность GST (16 генов) играет ключевую роль в нарушении защиты клеток от поллютантов, канцерогенов, продуктов ОС, широкого спектра ксенобиотиков и связана с риском предрасположенности к ожирению и метаболическим расстройствам [89].

К достаточно частым вариантам изменения генов GSTM1 и GSTТ1 относятся протяженные делеции: GSTM1 del/del и GSTТ1 del/del, которые сопряжены с отсутствием синтеза ферментов, в результате чего становится невозможным конъюгация метаболитов ксенобиотиков с глутатионом (GSH).

При замене 313A>G (rs1695, Ile105Val) гена GSTP1 активный сайт фермента, взаимодействующий с реактивными электрофилами, частично утрачивает свою субстрат-связывающую способность и термостабильность, что приводит к снижению его активности.

При исследовании русской популяции Центрального Черноземья [90] установлено, что генотипы GSTP1 105Ile/Val и 105Val/Val ассоциированы с СД2 и ожирением у женщин, тогда как у мужчин с патологией был связан генотип GSTТ 1 del/del.

При исследовании бразильской популяции обнаружена ассоциация rs1695 GSTP1 с избыточной массой тела и ожирением в пожилом возрасте (≥60 лет) [91]. Независимо от пола, пожилые пациенты, имеющие хотя бы одну аллель G, в 2,4 раза чаще страдали ожирением по сравнению с лицами, имеющими генотип АА. Вместе с тем в другой работе не наблюдалось значимой связи rs1056806 и rs3815029 GSTM1 с развитием ожирения в корейской популяции [92]. При исследовании польской популяции генотип GSTP1 Val/Val, приводящий к снижению уровня активного фермента, в 2 раза чаще встречался у больных СД2 в возрасте до 40 лет по сравнению со здоровыми людьми [93]. Авторы обнаружили более высокую частоту генотипа GSTP1 Val/Val, гомозиготной делеции GSTT1 del/del и GSTM1 del/del у пациентов с диагнозом СД2 до 40 лет, чем у пациентов, заболевших позже, и у здоровых лиц из контрольной группы. Очевидно, что снижение или потеря функциональной активности глутатион-S-трансфераз, важнейшего семейства антиоксидантных ферментов, вследствие генетической вариабельности может вносить существенный вклад в развитие ОС при ожирении и сопутствующих патологиях.

Редокс-баланс организма в значительной степени зависит от способности клеток поддерживать пул универсального водорастворимого антиоксиданта — восстановленного глутатиона (L-γ-глутамил-L-цистеинилглицин, GSH), регенерацию которого из окисленной формы (GSSG) осуществляет глутатион-дисульфидредуктаза (GSR). Трипептид GSH связан не только с контролем и поддержанием редокс-гомеостаза клетки путем восстановления АФК и является косубстратом глутатион-зависимых ферментов, но также участвует в процессах детоксикации, сигнальной трансдукции, пролиферации, дифференцировки и клеточной гибели [9, 10]. Изменение соотношения GSH/GSSG наблюдается при многих патологических состояниях, ассоциированных с ОС, в том числе при ожирении и метаболических расстройствах.

Исследование, проведенное в русской популяции, выявило взаимосвязь трех однонуклеотидных замен rs2551715 (C>T), rs2911678 (T>A), rs3757918 (T>C) в интронах гена глутатион-дисульфидредуктазы GSR с пониженным риском развития СД2, свидетельствуя о вовлеченности гена в патогенез этого заболевания [94]. Генотипы СТ-ТТ варианта rs2551715 были значимо ассоциированы с пониженным риском развития СД2. При этом не было установлено статистически значимых различий по генотипам локусов rs2911678 и rs3757918.

Проведенный авторами биоинформатический анализ показал, что минорные аллели по трем исследуемым однонуклеотидным заменам увеличивают экспрессию GSR в поджелудочной железе, нервной системе, подкожной и висцеральной жировой ткани. Причем, протективный эффект минорных аллелей отмечен только у пациентов с нормальной массой тела (ИМТ <25 кг/м2), диета которых включала достаточное количество свежих овощей и фруктов. Генотип Т/Т rs2551715 в 2,5 раза реже отмечался у больных СД2 относительно контроля; генотип А/А rs2911678 — в 6 раз; генотип С/С rs3757918 — в 2,7 раза. Протективный эффект GSR в отношении риска СД2 не наблюдался у пациентов, не потреблявших растительную пищу, и у лиц с ИМТ >25. Авторы полагают, что полиоксифенолы растительной пищи активируют экспрессию редокс-чувствительного фактора транскрипции Nrf2, активирующего экспрессию ключевых антиоксидантных ферментов в ответ на ОС и подавляющего провоспалительные эффекты фактора NF-κB [9].

Весьма значимая роль в поддержании редокс-гомеостаза в клетке принадлежит семейству редоксинов, которые содержат высокореакционные цистеины и участвуют в удалении перекиси водорода, органических пероксидов и в тиол-дисульфидном обмене белков-мишеней [95]. К редоксинам относятся пероксиредоксины (PRX), тиоредоксины (TRX) и глутаредоксины (GRX).

PRX представляют собой семейство полифункциональных антиоксидантных тиоредоксин-зависимых пероксидаз, которые регулируют внутриклеточные уровни пероксидов, играют важную роль в редокс-сигналинге, участвуя в пролиферации и дифференцировке клеток, иммунном ответе и апоптозе [95]. Особая роль в защите от ОС отводится PRX3, который локализуется в митохондриях и восстанавливает до 90 % Н2О2, образующейся при функционировании электрон-транспортной цепи. В работе [96] продемонстрировано снижение уровня PRX3 в жировой ткани экспериментальных животных и людей при ожирении. Кроме того, авторы показали, что у мышей с нокаутом PRX3 отмечена повышенная жировая масса и развитие фенотипа ожирения, а также возрастание маркеров ОС и нарушение биогенеза митохондрий.

В нутригеномном исследовании было установлено, что четыре аллельных варианта гена PRDX3 — rs3740562 (A/G), rs2271362 (C/T), rs7768 (G/C) и rs3377 (A/C) — ассоциированы с более высоким ИМТ и ожирением в японской популяции в сочетании с высокожировой диетой [97]. При этом гаплотип T-G-C–C-C показал значительную связь с увеличением ИМТ, тогда как гаплотип A-A-T-G-A — со снижением ИМТ. В целом, эти результаты свидетельствуют о важнейшей роли генетических вариантов PRDX3 и потребления жиров в модулировании ИМТ и риске ожирения.

Один из важнейших компонентов АОС — система тиоредоксина (Trx), состоящая из НАДФН, тиоредоксинредуктазы (TrxR) и тиредоксина 1/2 (Trx 1/2), которая защищает клетки от ОС благодаря своей дисульфидредуктазной активности [98]. Негативным регулятором Trx 1/2 является Trx-взаимодействующий белок (thioredoxin-interacting protein, TXNIP), который ингибирует редуктазную активность Trx посредством дисульфидного обмена. Редокс-комплекс Trx/Txnip, названный «редоксисомой», рассматривается в качестве критического регулятора внутри- и внеклеточного редокс-сигналинга, участвующего в патогенезе различных заболеваний, в том числе метаболических расстройств [98].

Генетическое картирование выявило нонсенс-мутацию в гене TXNIP как причину фенотипа, подобного семейной комбинированной гиперлипидемии у мутантных мышей Hcb-19 [99]. Мутация вызывает укорочение Txnip в критической области, которая опосредует связывание Txnip с Trx1, что нарушает редокс-статус и метаболизм липидов.

В бразильской популяции носители генетических вариантов TXNIP демонстрируют более высокую экспрессию Тrx-взаимодействующего белка, ранние признаки нарушения гомеостаза глюкозы и повышенную предрасположенность к хроническим метаболическим патологиям, таким как диабет и гипертония [100]. Авторы показали, что rs7211 (С/T) и rs7212 (C/G) TXNIP были в значительной степени ассоциированы с фенотипами, связанными с гипергликемией и повышенным артериальным давлением. Гаплотип Trs7211/Grs7212 TXNIP был ассоциирован с диабетом. Носители аллели G rs7212 TXNIP демонстрировали более высокие уровни экспрессии Txnip по сравнению с лицами, имеющими генотип CC rs7212.

Установлено, что варианты rs7212 и rs7211 TXNIP ассоциированы с повышенным риском ишемической болезни сердца в китайской популяции, причем их кумулятивный эффект коррелировал с тяжестью коронарного атеросклероза [101].

Вместе с тем показано, что в мексиканской популяции маркер rs7211 (С>T) гена TXNIP ассоциирован с ожирением [102]. Причем наличие хотя бы одной аллели Т снижает риск ожирения у женщин, то есть данная аллель рассматривается как протективная, и авторы полагают, что изменения экспрессии или функции Txnip обеспечат проявление тиоредоксином антиоксидантного действия. К аналогичному выводу пришли S. Das и соавт. [103], обнаружившие, что у евроамериканских и афроамериканских субъектов, проживающих в США, аллель Т была также связана с более низкими значениями ИМТ и концентрацией ХС-ЛПВП у лиц с ожирением и не страдающих диабетом [103].

К ферментам, играющим ведущую роль в модуляции метаболических нарушений и редокс-состояния, относится гемоксигеназа (HO), представленная в виде индуцибельной (НО-1) и конститутивной (НО-2) изоформ, которые кодируются генами HMOX1, HMOX2 [104]. НО осуществляет деградацию гема, мощного прооксиданта, с образованием оксида углерода (СО), железа и биливердина, превращающегося затем в билирубин. Установлено, что индукция НО-1 уменьшает ожирение, снижает повышенные уровни гема, подавляет ОС, а посредством регуляции функций адипоцитов и жировой ткани участвует в локальном и системном поддержании гомеостаза [104, 105]. НО-1 проявляет плейотропное действие при ожирении, уменьшая воспаление, вазоконстрикцию и уровень ОС.

В 5'-фланкирующей области генa HMOX1 (22q12) обнаружено два полиморфных сайта: полиморфизм числа динуклеотидных повторов (GT)n (rs3074372) и однонуклеотидная замена –413T>A (rs2071746). Количество повторов (GT)n колеблется от 12 до 45 [106]. Аллели с количеством повторов менее 25 обозначаются как короткие (S), при количестве (GT)n более 25 классифицируются как длинные (L). Было найдено, что S-аллели соответствуют более высокой транскрипционной активности гена в отличие от L-аллелей. В азиатской популяции пациенты с СД2 и повышенным ИМТ, несущие более длинные (≥32) повторы (GT)n, имели повышенный уровень ОС и высокий риск развития ишемической болезни сердца и атеросклероза [106]. Вместе с тем пациенты при действии факторов риска ИБС, связанных с ожирением (гиперлипидемия, диабет), но с более короткими (<27) повторами (GT)n имели сниженный риск заболевания.

Описана функционально значимая однонуклеотидная замена в промоторе HMOX1 — 413T>A (rs2071746), влияющая на активность гена [107]. Эксперименты in vitro показали, что активность промотора гена HMOX1 при наличии А в положении –413 повышается. Обнаружено, что генотип AA rs2071746 может значительно снизить частоту ИБС, инфаркта миокарда и стенокардии, что обусловлено высоким уровнем экспрессии НО-1 [106].

Немаловажную роль в развитии ожирения и связанных с ним метаболических осложнений играет NAD(P)H: хиноноксидоредуктаза (NQO1), которая представляет собой флавопротеин, катализирующий двухэлектронное восстановление высоко-реактивных эндогенных и экзогенных хинонов и их производных. NQO1 (NQO1, 16q22.16) выполняет различные функции в клетке, включая роль в детоксикации хиноновых соединений, поддержании восстановленной формы эндогенных антиоксидантов и супероксидредуктазной активности, стабилизации белков и защите от протеасомной деградации, генерации NAD+, контроле трансляции мРНК [108]. Известно, что активация NQO1 посредством окисления NADH/NADPH защищает от ожирения, дислипидемии, нарушения толерантности к глюкозе, гипертонии и метаболического синдрома.

NQO1 широко экспрессируется в различных тканях человека, в том числе в адипоцитах. Причем экспрессия NQO1 в жировой ткани снижается во время потери веса, вызванной диетой, и уровни экспрессии положительно коррелируют с ожирением, дислипидемией, толерантностью к глюкозе и маркерами дисфункции печени. Все это свидетельствует о роли NQO1 в ожирении и ассоциированных метаболических нарушениях [109].

В NQO1 обнаружено более 20 однонуклеотидных замен, из которых наиболее распространенной является 609C>T NQO1 (rs1800566), обозначаемая как аллель NQO1*2 [109]. При этом в первичной структуре NQO1 происходит замена пролина на серин (Р187S), что сопровождается снижением активности фермента вследствие нестабильности и протеасомной деградации. В результате активность фермента у гомозигот NQO1*2/*2 практически не определяема, тогда как у гетерозигот NQO1*1/*2 активность фермента занимает промежуточную позицию между гомозиготным генотипом по замене и диким типом (NQO1*1/*1) [108]. Другой распространенной однонуклеотидной заменой NQO1 является 465C>Т (rs4986998) — NQO1*3 (Arg139Trp), что может привести к делеции экзона 4 и образованию белка с недостатком сайтов связывания субстрата хинона и снижению ферментативной активности [108]. Все эти варианты NQO1 приводят к нарушению редокс-гомеостаза, развитию ОС и наблюдаются при ожирении и связанных метаболических расстройствах [110].

Многими исследованиями доказано, что ключевым регулятором клеточного ответа на ОС служит транскрипционный фактор Nrf2 (Nuclear factor erythroid 2-related factor 2), кодируемый геном NFE2L2 (2q31.2), и редокс-чувствительная сигнальная система Keap1/Nrf2/ARE [111]. Nrf2 принадлежит к семейству Cap’n’Collar (CNC), подсемейству факторов транскрипции лейциновой молнии (bZIP), который контролирует экспрессию различных генов, кодирующих антиоксидантные ферменты и цитопротекторные белки [111].

Nrf2 находится в центре сложной регуляторной сети, включая экспрессию более 1000 генов (от 1 до 10 % генома), содержащих в своих промоторах элементы антиоксидантного ответа (ARE, antioxidant response element, 5'-A/GTGAC/TnnnGCA/G-3') [111].

В гомеостатических условиях Nrf2 локализован в цитоплазме, где связан с репрессорным белком Keap1 — Kelch-like ECH-associated protein 1 (KEAP1, 19p13.2), который обеспечивает убиквитинилирование Nrf2 и его протеасомную деградацию. При развитии окислительного/электрофильного стресса комплекс Keap1–Nrf2 диссоциирует, в результате чего Nrf2 мигрирует в ядро, где взаимодействует с ARE-последовательностями в промоторах Nrf2-зависимых генов, стимулируя их транскрипцию [102, 112–114]. Доказано, что при активации Nrf2 повышается экспрессия генов антиоксидантных и детоксикационных ферментов, содержащих в промоторах ARE-последовательности, среди которых SOD1, CAT, GPX1, GST, PRX, TRX, TRXR, HMOX1, NQO1 и др.

К особенностям регуляции сигнальной системы Keap1/Nrf2/ARE следует отнести присутствие ARE-последовательностей в промоторе гена NFE2L2, что обеспечивает собственную транскрипцию и ауторегуляцию гена [115].

Все большее число исследований свидетельствует, что Nrf2 является основной мишенью ожирения и связанных с ним метаболических нарушений [105]. Контролируемая активация Nrf2 облегчает ожирение и связанные с ним метаболические расстройства, демонстрируя снижение продукции АФК и уровень ОС, умеренное накопление липидов во время адипогенеза, снижение синтеза провоспалительных цитокинов и улучшение гомеостаза глюкозы [116, 117]. С другой стороны, непрерывная и чрезмерная активация Nrf2 в условиях ожирения может резко увеличить накопление липидов и инициировать перекисное окисление липидов, что, в свою очередь, вызывает повреждение тканей [117]. Несомненно, что важнейшая роль в регуляции ОС при ожирении и сопряженных патологиях принадлежит полиморфизму генов Nrf2 и других компонентов сигнальной системы Keap1/Nrf2/ARE. Вместе с тем дефицит активности Nrf2 в различных органах продемонстрирован в экспериментальных моделях и клинических исследованиях; снижение экспрессии Nrf2-контролируемых генов-мишеней приводит к развитию патологических состояний, ассоциированных с ОС [112].

Согласно базе данных NCBI SNP в гене NFE2L2 человека идентифицировано 2107 однонуклеотидных замен, среди которых 85 локализованы в белок-кодирующей области, а остальные — в области промотора, интронах и 5'- или 3'-некодирующих регионах. Сообщалось о подавлении Nrf2-зависимого сигнального пути при состояниях с повышенным риском сердечно-сосудистых заболеваний, диабете, гипертонии, хроническом воспалении, старении и других метаболических расстройствах, что было обусловлено генетическим полиморфизмом [116]. При различных патологических состояниях, в том числе сопряженных с ожирением, в наибольшей степени изучена замена –617C>A (rs6721961) в ARE-последовательности промотора гена NFE2L2, что приводит к менее эффективному связыванию Nrf2 с ARE и снижению экспрессии гена NFE2L2 и Nrf2-контролируемых генов [117]. В различных популяциях обнаружено, что rs6721961 NRF2 был в значительной степени связан с ОС, антиоксидантным статусом, ожирением и риском сопряженных метаболических патологий [112, 113].

В недавних исследованиях установлена важная роль замены С>А (rs11085735) в гене KEAP1, кодирующим белок Keap1, который является критическим негативным регулятором фактора транскрипции Nrf2 и чувствительным сенсором ОС [119, 120]. Расположение данной замены в интроне 2 может иметь функциональные последствия, влияя на сплайсинг мРНК, структуру белка и взаимодействие Keap1 с Nrf2. Так, в иракской популяции курдов наблюдалась более высокая частота минорной аллели А и генотипа АА у лиц с ожирением, что коррелировало с более высокими ИМТ, окружностью талии и бедер по сравнению с носителями генотипов АС и СС [119]. При исследовании иранской популяции было обнаружено, что генотип АА с большей частотой встречался у пациентов с СД2 и при СД2, осложненным нейропатией [120].

В табл. 2 показано влияние однонуклеотидных замен в важнейших генах антиоксидантной системы на развитие ОС при ожирении и метаболических нарушениях.

 

Таблица 2. Однонуклеотидные замены в генах антиоксидантных ферментов и белков, регулирующих развитие окислительного стресса, при ожирении и метаболических заболеваниях

Table 2. Single-nucleotide substitutions in the genes of antioxidant enzymes and proteins regulating the development of oxidative stress in obesity and metabolic diseases

Однонуклеотидная замена

Ген, хромосома

Экспрессия гена, активность фермента, продукция АКМ, уровень ОС

Эффекты однонуклеотидной замены

Популяция, пол, возраст (годы)

Ссылки

–251A>G (rs2070424)

SOD1 21q22.11

Замена нуклеотида в интроне 3 SOD1, модулирует активность фермента и уровень ОС

SNP ассоциирован с ожирением у женщин: частота генотипов GA+GG выше при ожирении, чем в норме; более высокий уровень висцерального жира

Мексиканцы

(м/ж, 56 ± 5)

[76]

47C>T

(rs4880)

SOD2 6q25.3

Замена Ala16Val изменяет структуру сигнального MTS-пептида: SOD2↓, АФК↑, ОС↑

Генотип ТТ SOD2 увеличивал вдвое вероятность развития ожирения, относительно генотипов СС или СТ.

Генотип СТ наблюдался у 90 % лиц с ожирением, а генотип ТТ ассоциировался со сниженной общей активностью SOD

Мексиканцы (м/ж, 56 ± 5).

Мексиканцы (м/ж, 66 ± 8).

Поляки

(м/ж, 37–57)

[76]

[78]

[77]

172A>G

(rs2536512)

SOD3

4p15.3

Замена Ala58Thr в структуре фермента:

SOD3↑, АФК↓, ОС↓

Аллель G ассоциирована с развитием ожирения, аллель А проявляет протективный эффект

Саудовская Аравия

(м/ж, 42 ± 16)

[73]

–262C>T

(rs1001179)

CAT 11p13

Однонуклеотидные замены в регуляторных областях гена: САТ↓, Кат↓, Н2О2↑, ОС↑

Замена aссоциирована с ожирением и СД2; уровни каталазы были значительно выше у носителей аллели –269Т по сравнению с гомозиготами по аллели С

Испанцы

(м/д, 8,7 ± 0,1).

Шведы

(м/ж, 50 ± 10)

[80]

[81]

–844A>G (rs769214)

Замена ассоциирована с препубертатным ожирением у детей, с более высоким весом, ИМТ и уровнем белка, связывающего жирные кислоты адипоцитов

Испанцы

(м/д, 8,7 ± 0,1)

[12]

89T>A

(rs7943316)

Замена ассоциирована с препубертатным ожирением у детей

Испанцы

(м/д, 8,7 ± 0,1)

[12]

594C>Т

(rs1050450)

GPX1

3p21.31

Замена Pro198Leu, аллель Leu (Т): GPX1↓, Gpx↓, Н2О2↑, гидроперекиси липидов↑, ОС↑

Аллель Т ассоциирована с ожирением и инсулинорезистентностью у детей;

данная аллель связана с повышенным риском атеросклероза у пациентов с CД2

Испанцы

(м/д, 8,7 ± 0,1).

Японцы

(м/ж, 40–60)

[12]

[12]

14362A>G

(rs4902346)

GPX2

14q23.3

Минорная аллель G: GPX2↓, Gpx↓, Н2О2↑, гидроперекиси липидов↑, пероксинитрит↑, ОС↑

Аллель G ассоциирована с риском СД2 у мужчин

Русские

(м/ж, 61 ± 10)

[87]

1578A>G

(rs1695)

GSTP1

11q13.2

Замена Ile105Val:

GSTP1↓, ксенобиотики↑, продукты ПОЛ↑, ОС↑

Генотипы 105Ile/Val и 105Val/Val ассоциированы с СД2 и ожирением у женщин; SNP ассоциирован с избыточной массой тела и ожирением в пожилом возрасте; генотип 105Val/Val ассоциирован с CД2

Русские

(м/ж, 61 ± 10).

Бразильцы

(м/ж, 60–98).

Поляки

(м/ж, 54 ± 11)

[90]

[91]

[93]

C>T

(rs2551715),

T>A

(rs2911678),

T>C (rs3757918)

GSR 8p12

Замены в интронах гена GSR. Минорные аллели увеличивают экспрессию GSR в поджелудочной железе, нервной системе, подкожной и висцеральной жировой ткани.

GSH↑, АОС↑, ОС↓

Ассоциация с пониженным риском развития СД2 в группе пациентов с нормальной массой тела, ежедневно потребляющих достаточное количество овощей и фруктов. Генотип Т/Т rs2551715 в 2,5 раза реже отмечался у больных СД2 относительно контроля; генотип А/А rs2911678 — в 6 раз; генотип С/С rs3757918 — в 2,7 раза. Протективный эффект GSR в отношении риска СД2 не наблюдался у пациентов, не потреблявших растительную пищу, и у лиц с ИМТ >25

Русские

(м/ж, 61 ± 11)

[94]

С >T

(rs7211),

C >G

(rs7212)

TXNIP

1q21.1

Минорные аллели в гене TXNIP:

TXNIP ↑, TXNIP↑, ингибирование редоксисомы, ОС↑

Ассоциация с гипергликемией, предрасположенностью к СД2, гипертонии;

коррелируют с риском ИБС и атеросклероза; аллель Т (rs7211) связана с более низким уровнем ИМТ и риском ожирения

Бразильцы (м/ж, 25–64).

Китайцы

(м, 63 ± 10).

Мексиканцы (м, 53 ± 9).

Американцы

(м/ж, 19–60)

[100]

[101]

[102]

[103]

(GT)n

(rs3074372)

HMOX1

22q12

Аллели с (GT)n < 25: HMOX1↑; OC↓.

Аллели с (GT)n > 25:

HMOX1↓, OC↑

Сниженный риск ИБС.

Пациенты с СД2 имели повышенный ИМТ, риск ИБС и атеросклероза

Кавказцы

(м/ж, 57–72)

[106]

–413T >A

(rs2071746)

Аллель –413А (протективная):

HMOX1↑, ОС↓.

Аллель –413Т:

HMOX1↓, ОС↑

Снижает частоту ИБС, инфаркта миокарда, стенокардии

Кавказцы

(м/ж, 57–72).

Восточная Азия

(м/ж, 62 ± 6)

[106]

[107]

–617C >A (rs6721961)

NFE2L2 2q31.2

Замена локализована в промоторе гена, в ARE-последовательности. Минорная аллель –617А: NFE2L2↓, экспрессия генов АОС↓, ОС↑

Ассоциирован с ожирением и риском сопряженных метаболических патологий

Китайцы

(м, 50 ± 11)

[118]

С>А

(rs11085735)

KEAP1

19p13.2

Замена локализована в интроне 2, влияет на взаимодействие Keap1 с Nrf2. Минорная аллель А: нарушение структуры KEAP1, взаимодействия с фактором транскрипции

Частота генотипа АА выше при ожирении, у носителей АА более высокие ИМТ, окружность талии и бедер.

Более высокая частота генотипа АА у больных СД2 и при СД2, осложненном нейропатией

Курды

(м/ж, 41 ± 10).

Иранцы

(м/ж, 56 ± 6)

[119]

[120]

Примечание. ↑ — повышение экспрессии гена, активности фермента, уровня активированных кислородных метаболитов (АКМ) и окислительного стресса (ОС) относительно нормы; ↓ — снижение обсуждаемых показателей по сравнению с контролем; м/ж — мужчины/женщины, м/д — мальчики/девочки; ИМТ — индекс массы тела; ИБС — ишемическая болезнь сердца; СД2 — сахарный диабет 2-го типа; КОР — ксантиноксидоредуктаза; МПО — миелопероксидаза; АФГ — активные формы галогенов; SOD — супероксиддисмутаза; АОС — антиоксидантная система.

 

Таким образом, работы последних десятилетий убедительно свидетельствуют о важнейшей роли ОС в механизмах ожирения и сопряженных патологий и ведущем вкладе полиморфизма генов ферментов, продуцирующих АКМ, антиоксидантных ферментов и белков редокс-чувствительного сигнального пути Keap1/Nrf2/ARE, контролирующего редокс-гомеостаз. Следует подчеркнуть, что нарушение редокс-гомеостаза вследствие генетической вариабельности системы прооксиданты – антиоксиданты способствует развитию фенотипа ожирения.

Влияние полиморфизма редокс-чувствительных генов на редокс-гомеостаз и риск ожирения и сопряженных метаболических патологий может значительно варьировать в разных популяциях, и эти различия связаны с межпопуляционными различиями в частотах минорных аллелей и неравновесием сцепления между полиморфными локусами. Для большинства рассмотренных в обзоре однонуклеотидных замен характерна вариабельность популяционных частот (табл. 3). Частота минорной аллели в разных популяциях мира может отличаться на два порядка. Например, частота аллели Т по rs1001179 гена CAT в среднем среди африканцев в 11 раз ниже по сравнению с популяциями европеоидов. В то же время частота аллели С по rs7212 гена TXNIP среди африканцев более чем в 2 раза превосходит таковую среди жителей стран Восточной Азии и в 10 раз выше по сравнению с популяционной частотой для европейских стран (табл. 3). В популяциях стран Восточной Азии частоты аллелей G (rs769214), T (rs1049982) гена CAT и аллели G (rs3815029) гена GSTM2 являются преобладающими.

 

Таблица 3. Популяционные особенности частоты минорной аллели по исследуемым однонуклеотидным заменам (по данным проекта «1000 Genomes»)

Table 3. Population features of the frequency of the minor allele according to the studied single-nucleotide substitutions (according to the “1000 Genomes” project)

Ген

Однонуклеотидная замена (аллель)

Популяционная частота минорной аллели (среднее значение и диапазон изменчивости)

африканцы

Восточная Азия

европеоиды

CYBA

rs9932581 (Т)

0,24 (0,11–0,32)

0,6 (0,46–0,68)

0,4 (0,34–0,47)

rs4673 (А)

0,51 (0,45–0,59)

0,08 (0,05–0,13)

0,34 (0,21–0,47)

XDH

rs17011368(C)

0,12 (0,08–0,17)

0 (0–0,02)

0,05 (0,01–0,07)

CYP2C8

rs11572103 (A)

0,19 (0,14–0,23)

0

0 (0–0,01)

rs11572080 (T)

0,01 (0–0,03)

0

0,12 (0,08–0,15)

rs10509681 (C)

0,01 (0–0,03)

0

0,12 (0,08–0,15)

MPO

rs2333227 (Т)

0,37 (0,56–0,69)

0,14 (0,12–0,17)

0,24 (0,19–0,29)

NOS3

rs1799983 (T)

0,07 (0,035–0,11)

0,13 (0,082–0,16)

0,34 (0,23–0,39)

rs3918226 (T)

0 (0,0–0,025)

0

0,1 (0,07–0,12)

rs3918188 (A)

0,37 (0,29–0,41)

0,29 (0,24–0,34)

0,31 (0,28–0,33)

rs743506 (G)

0,47 (0,39–0,545)

0,2 (0,15–0,24)

0,29 (0,17–0,39)

rs7830 (T)

0,19 (0,13–0,26)

0,41 (0,33–0,48)

0,35 (0,24–0,44)

rs2070744 (C)

0,14 (0,08–0,18)

0,12 (0,1–0,15)

0,44 (0,31–0,5)

SOD1

rs2070424 (G)

0,2 (0,16–0,24)

0,51 (0,47–0,56)

0,07 (0,04–0,12)

SOD2

rs4880 (G)

0,42 (0,36–0,46)

0,12 (0,1–0,15)

0,47 (0,43–0,52)

CAT

rs1001179 (T)

0,02 (0–0,06)

0,03 (0,02–0,04)

0,23 (0,21–0,26)

rs769214 (G)

0,44 (0,37–0,52)

0,73 (0,63–0,79)

0,33 (0,28–0,4)

rs7943316 (T)

0,42 (0,34–0,52)

0,26 (0,19–0,34)

0,67 (0,59–0,71)

rs1049982 (T)

0,44 (0,37–0,52)

0,73 (0,63–0,79)

0,33 (0,285–0,4)

GPX1

rs1050450 (A)

0,27 (0,22–0,34)

0,07 (0,05–0,12)

0,34 (0,28–0,4)

GPX2

rs4902346 (G)

0,41 (0,34–0,47)

0,13 (0,1–0,15)

0,19 (0,15–0,24)

GPX5

rs445870 (G)

0,59 (0,5–0,7)

0,51 (0,42–0,57)

0,31 (0,27–0,35)

GPX6

rs406113 (C)

0,75 (0,64–0,88)

0,51 (0,43–0,57)

0,33 (0,3–0,37)

GSTP1

rs1695 (G)

0,48 (0,4–0,54)

0,18 (0,1–0,22)

0,33 (0,28–0,39)

GSTM1

rs1056806 (T)

0,24 (0,21–0,31)

0,2 (0,17–0,25)

0,16 (0,09–0,22)

GSTM2

rs3815029 (G)

0,09 (0,06–0,12)

0,65 (0,64–0,67)

0,37 (0,34–0,38)

PRDX3

rs3740562 (A)

0,52 (0,46–0,55)

0,55 (0,52–0,58)

0,3 (0,26–0,32)

rs2271362 (T)

0,37 (0,34–0,42)

0,49 (0,45–0,53)

0,27 (0,23–0,28)

rs7768 (C)

0,48 (0,44–0,52)

0,57 (0,53–0,61)

0,31 (0,25–0,34)

rs3377 (G)

0,11 (0,08–0,16)

0,31 (0,25–0,38)

0,56 (0,48–0,61)

TXNIP

rs7211 (G)

0,41 (0,36–0,46)

0,81 (0,69–0,87)

0,95 (0,94–0,97)

rs7212 (C)

0,42 (0,34–0,46)

0,18 (0,11–0,31)

0,04 (0,03–0,05)

HMOX1

rs2071746 (A)

0,31 (0,23–0,37)

0,48 (0,45–0,5)

0,56 (0,53–0,59)

NQO1

rs1800566 (A)

0,18 (0,12–0,21)

0,42 (0,35–0,5)

0,21 (0,18–0,25)

rs1131341 (A)

0 (0–0,02)

0,02 (0,02–0,03)

0,02 (0,01–0,03)

NFE2L2

rs6721961 (T)

0,06 (0,02–0,11)

0,24 (0,19–0,3)

0,13 (0,11–0,14)

 

Таким образом, интенсивность разных звеньев метаболизма, приводящих к развитию ОС при ожирении, может иметь генетически обусловленные этнические и популяционные особенности.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Анализ исследований многих авторов, представленный в обзоре, показал, что при ожирении и сопутствующих метаболических заболеваниях наблюдаются нарушения редокс-гомеостаза и ОС, обусловленный, с одной стороны, недостаточностью антиоксидантной системы, и с другой — избыточной продукцией АФК, АФА и хлора. Зависимость ожирения от многих экзо- и эндогенных факторов, подчеркивает критическую роль дисбаланса в системе прооксиданты ↔ антиоксиданты, связанную с вариабельностью генов АКМ-продуцирующих ферментов, вызывающих развитие ОС, и генов ферментов АОС, препятствующих нарушению редокс-баланса. Исследованиями многих авторов доказано, что полиморфизм генов, связанных с ОС, приводящий к нарушению их функциональности, в значительной степени ассоциирован с риском ожирения и метаболических расстройств. Вследствие этого аллельные варианты этих генов могут представлять интерес для тестирования генетической предрасположенности к ожирению. Продемонстрировано, что нарушение редокс-гомеостаза вследствие полиморфизма генов системы прооксиданты ↔ антиоксиданты способствует развитию патологического фенотипа ожирения. Механизмы развития окислительного стресса при ожирении и метаболических заболеваниях представлены на рис. 2.

 

Рис. 2. Механизмы развития окислительного стресса при ожирении и метаболических заболеваниях. АКМ — активированные кислородные метаболиты, АФК — активные формы кислорода, АФА — активные формы азота, АФГ — активные формы галогенов

 

Более глубокое понимание тонких механизмов генетической регуляции ОС, ассоциированного с ожирением, будет способствовать разработке эффективных способов коррекции ожирения и сопутствующих метаболических заболеваний.

ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ

Вклад авторов. Все авторы внесли существенный вклад в разработку концепции, проведение исследования и подготовку статьи, прочли и одобрили финальную версию перед публикацией. Вклад каждого автора: Н.П. Милютина, Т.П. Шкурат — разработка концепции и дизайна статьи, доработка, исправление и контроль научного содержания; М.А. Шкурат, Е.В. Машкина, Н.П. Милютина — поиск и анализ литературы, подготовка первоначальной версии статьи.

Источник финансирования. Работа была выполнена при финансовой поддержке Министерства науки и высшего образования РФ в рамках государственного задания в сфере научной деятельности № FENW-2023-0018.

Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии потенциального конфликта интересов, требующего раскрытия в данной статье.

×

Об авторах

Михаил Алексеевич Шкурат

Южный федеральный университет

Email: mikhail@shkurat.com
ORCID iD: 0000-0002-9383-4607
SPIN-код: 4921-2480

научн. сотр.

Россия, Ростов-на-Дону

Елена Владимировна Машкина

Южный федеральный университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: lenmash@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-4424-9508
SPIN-код: 3010-1500

д-р биол. наук; профессор кафедры генетики

Россия, Ростов-на-Дону

Наталья Петровна Милютина

Южный федеральный университет

Email: natmilut@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0002-7522-3183
SPIN-код: 7228-8860

канд. биол. наук, ст. научн. сотр.

Россия, Ростов-на-Дону

Татьяна Павловна Шкурат

Южный федеральный университет

Email: tshkurat@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-6197-7374
SPIN-код: 5620-2091

д-р биол. наук, профессор, заведующая кафедрой генетики

Россия, Ростов-на-Дону

Список литературы

  1. Loos R.J.F., Yeo G.S.H. The genetics of obesity: from discovery to biology // Nat Rev Genet. 2022. Vol. 23, No 2. P. 120–133. doi: 10.1038/s41576-021-00414-z
  2. Lin X., Li H. Obesity: epidemiology, pathophysiology, and therapeutics // Front Endocrinol. 2021. Vol. 12. ID 706978. doi: 10.3389/fendo.2021.706978
  3. Elks C.E., den Hoed M., Zhao J.H., et al. Variability in the heritability of body mass index: A systematic review and meta-regression // Front Endocrinol. 2012. Vol. 3. ID 29. doi: 10.3389/fendo.2012.00029
  4. Hecker J., Freijer K., Hiligsmann M., Evers S.M.A.A. Burden of disease study of overweight and obesity; the societal impact in terms of cost-of-illness and health-related quality of life // BMC Public Health. 2022. Vol. 22. ID 46. doi: 10.1186/s12889-021-12449-2
  5. Taherkhani S., Suzuki K., Ruhee R.T. A brief overview of oxidative stress in adipose tissue with a therapeutic approach to taking antioxidant supplements // Antioxidants. 2021. Vol. 10, No. 4. ID 594. doi: 10.3390/antiox10040594
  6. Lechuga-Sancho A.M., Gallego-Andujar D., Ruiz-Ocaña P., et al. Obesity induced alterations in redox homeostasis and oxidative stress are present from an early age // PLoS ONE. 2018. Vol. 13. ID e0191547. doi: 10.1371/journal.pone.0191547
  7. Forman H.J., Zhang H. Targeting oxidative stress in disease: promise and limitations of antioxidant therapy // Nat Rev Drug Discov. 2021. Vol. 20, No 9. P. 689–709. doi: 10.1038/s41573-021-00267-5
  8. Sies H., Jones D.P. Reactive oxygen species (ROS) as pleiotropic physiological signalling agents // Nat Rev Mol Cell Biol. 2020. Vol. 21, No 3. P. 363–383. doi: 10.1038/s41580-020-0230-3
  9. Меньщикова Е.Б., Ланкин В.З., Зенков Н.К., и др. Окислительный стресс. Прооксиданты и антиоксиданты. Москва: Слово, 2006. 556 с.
  10. Молдогазиева Н.Т., Мохосоев И.М., Мельникова Т.И., и др. Двойственная природа активных форм кислорода, азота и галогенов: их эндогенные источники, взаимопревращения и способы нейтрализации // Успехи биологической химии. 2020. Т. 60, № 1. С. 123–172.
  11. Halliwell B., Gutteridge J.M.C. Free radicals in biology and medicine. 4th edition. New York: Oxford University Press, 2007. 704 p.
  12. Rupérez A.I., Gil A., Aguilera C.M. Genetics of oxidative stress in obesity // Int J Mol Sci. 2014. Vol. 15, No. 2. P. 3118–3144. doi: 10.3390/ijms15023118
  13. Калинина Е.В., Иванова-Радкевич В.И., Чернов Н.Н. Роль микроРНК в регуляции редокс-зависимых процессов // Биохимия. 2019. Т. 84, № 11. С. 1538–1552. doi: 10.1134/S0320972519110022
  14. McMurray F., Patte D.A., Harper M.E. Reactive oxygen species and oxidative stress in obesity — recent findings and empirical approaches // Obesity. 2016. Vol. 24, No. 11. P. 2301–2310. doi: 10.1002/oby.21654
  15. Marseglia L., Manti S., D’Angelo G., et al. Oxidative stress in obesity: A critical component in human diseases // Int J Mol Sci. 2015. Vol. 16, No. 1. P. 379–400. doi: 10.3390/ijms16010378
  16. Manna P., Jain S.K. Obesity, oxidative stress, adipose tissue dysfunction, and the associated health risks: causes and therapeutic strategies // Menfbol Syndr Rel Disord. 2015. Vol. 13, No. 10. P. 423–444. doi: 10.1089/met.2015.0095
  17. Rohde K., Maria Keller M., la Cour Poulsenc L., et al. Genetics and epigenetics in obesity // Metabol Clin Experim. 2019. Vol. 92. P. 37–50. doi: 10.1016/j.metabol.2018.10.007
  18. Кузьменко Д.И., Удинцев С.Н., Климентьева Т.К., Серебров В.Ю. Окислительный стресс жировой ткани как первичное звено патогенеза резистентности к инсулину // Биомедицинская химия. 2016. Т. 62, № 1. С. 14–21. doi: 10.18097/PBMC20166201014
  19. Furukawa S., Fujita T., Shimabukuro M., et al. Increased oxidative stress in obesity and its impact on metabolic syndrome // J Clin Invest. 2004. Vol. 114, No. 12. P. 1752–1761. doi: 10.1172/JCI21625
  20. Masschelin P.M., Cox A.R., Chernis N., Hartig S.M. The impact of oxidative stress on adipose tissue energy balance // Front Physiol. 2020. Vol. 10. ID 1638. doi: 10.3389/fphys.2019.01638
  21. Ochoa M.C., Razquin C., Zalba G., et al. G allele of the –930A>G polymorphism of the CYBA gene is associated with insulin resistance in obese subjects // J Physiol Biochem. 2008. Vol. 64, No. 2. P. 127–134. doi: 10.1007/BF03168240
  22. Lee H., Jose P.A. Coordinated contribution of NADPH oxidase- and mitochondria-derived reactive oxygen species in metabolic syndrome and its implication in renal dysfunction // Front Pharmacol. 2021. Vol. 12. ID 670076. doi: 10.3389/fphar.2021.670076
  23. Begum R., Thota S., Abdulkadir A., et al. NADPH oxidase family proteins: signaling dynamics to disease management // Cell Mol Immunol. 2022. Vol. 19, No. 5. P. 660–686. doi: 10.1038/s41423-022-00858-1
  24. Touyz R.M., Briones A.M., Sedeek M., et al. NOX isoforms and reactive oxygen species in vascular health // Mol Interv. 2011. Vol. 11, No. 1. P. 27–35. doi: 10.1124/mi.11.1.5
  25. DeVallance E., Li Y., Jurczak M.J., et al. The role of NADPH oxidases in the etiology of obesity and metabolic syndrome: contribution of individual isoforms and cell biology // Antioxid Redox Signal. 2019. Vol. 31, No. 10. P. 687–709. doi: 10.1089/ars.2018.7674
  26. De Fano M., Bartolini D., Tortoioli C., et al. Adipose tissue plasticity in response to pathophysiological cues: A connecting link between obesity and its associated comorbidities // Int J Mol Sci. 2022. Vol. 23, No. 10. ID 5511. doi: 10.3390/ijms23105511
  27. Moreno M.U., San Jose G., Orbe J., et al. Preliminary characterisation of the promoter of the human p22(phox) gene: identification of a new polymorphism associated with hypertension // FEBS Lett. 2003. Vol. 542, No. 1–3. P. 27–31. doi: 10.1016/S0014-5793(03)00331-4
  28. San Jose G., Moreno M.U., Olivan S., et al. Functional effect of the p22phox –930A/G polymorphism on p22phox expression and NADPH oxidase activity in hypertension // Hypertension. 2004. Vol. 44, No. 2. P. 163–169. doi: 10.1161/01.HYP.0000134790.02026.e4
  29. Guzik T.J., West N.E., Black E., et al. Functional effect of the C242T polymorphism in the NAD(P)H oxidase p22phox gene on vascular superoxide production in atherosclerosis // Circulation. 2000. Vol. 102, No. 15. P. 1744–1747. doi: 10.1161/01.CIR.102.15.1744
  30. Schreiber R., Ferreira-Sae M.C., Tucunduva A.C., et al. CYBA C242T polymorphism is associated with obesity and diabetes mellitus in Brazilian hypertensive patients // Diabet Med. 2012. Vol. 29, No. 7. P. e55–e61. doi: 10.1111/j.1464-5491.2012.03594.x
  31. Wyche K.E., Wang S.S., Griendling K.K., et al. C242T CYBA polymorphism of the NADPH oxidase is associated with reduced respiratory burst in human neutrophils // Hypertension. 2004. Vol. 43, No. 6. P. 1246–1251. doi: 10.1161/01.HYP.0000126579.50711.62
  32. Азарова Ю.Э., Клёсова Е.Ю., Самгина Т.А., и др. Роль полиморфных вариантов гена CYBA в патогенезе сахарного диабета 2 типа // Медицинская генетика. 2019. Т. 18, № 8. С. 37–48. doi: 10.25557/2073-7998.2019.08.37-48
  33. Pourgholi L., Pourgholi F., Ziaee S., et al. The association between CYBA gene C242T variant and risk of metabolic syndrome // Eur J Clin Invest. 2020. Vol. 50, No. 9. ID e13275. doi: 10.1111/eci.13275
  34. Osmenda G., Matusik P.T., Sliwa T., et al. Nicotinamide adenine dinucleotide phosphate (NADPH) oxidase p22phox subunit polymorphisms, systemic oxidative stress, endothelial dysfunction, and atherosclerosis in type 2 diabetes mellitus // Pol Arch Intern Med. 2021. Vol. 131, No. 5. P. 447–454. doi: 10.20452/pamw.15937
  35. Hayaishi-Okano R., Yamasaki Y., Kajimoto Y., et al. Association of NAD(P)H oxidase p22phox gene variation with advanced carotid atherosclerosis in Japanese type 2 diabetes // Diabetes Care. 2003. Vol. 26, No. 2. P. 458–463. doi: 10.2337/diacare.26.2.458
  36. Бушуева О.Ю. Генетические варианты rs1049255 CYBA и rs2333227 MPO ассоциированы с предрасположенностью к ишемической болезни сердца русских жителей Центральной России // Кардиология. 2020. Т. 60, № 10. С. 47–54. doi: 10.18087/cardio.2020.10.n1229
  37. Schirmer M., Hoffmann M., Kaya E., et al. Genetic polymorphisms of NAD(P)H oxidase: variation in subunit expression and enzyme activity // Pharmacogenomics J. 2008. Vol. 8, No. 4. P. 297–304. doi: 10.1038/sj.tpj.6500467
  38. Азарова Ю.Э., Клёсова Е.Ю., Коломоец И.И., и др. Полиморфные варианты гена бета-цепи цитохрома b-245 НАДФН-оксидазы: связь с показателями редокс-гомеостаза и риском развития сахарного диабета 2-го типа // Генетика. 2020. Т. 56, № 7. С. 834–841. doi: 10.31857/S0016675820070012
  39. Das M., Sauceda C., Webster N.J.G. Mitochondrial dysfunction in obesity and reproduction // Endocrinology. 2021. Vol. 162, No. 1. ID bqaa158. doi: 10.1210/endocr/bqaa158
  40. Ritov V.B., Menshikova E.V., Azuma K., et al. Deficiency of electron transport chain in human skeletal muscle mitochondria in type 2 diabetes mellitus and obesity // Am J Physiol Endocrinol Metab. 2010. Vol. 298, No. 1. P. E49–E58. doi: 10.1152/ajpendo.00317.2009
  41. Guo L.-J., Oshida Y., Fuku N., et al. Mitochondrial genome polymorphisms associated with type-2 diabetes or obesity // Mitochondrion. 2005. Vol. 5, No. 1. P. 15–33. doi: 10.1016/j.mito.2004.09.001
  42. Flaquer A., Baumbach C., Kriebel J., et al. Mitochondrial genetic variants identified to be associated with bmi in adults // PLoS ONE. 2014. Vol. 9, No. 8. ID e105116. doi: 10.1371/journal.pone.0105116
  43. de Marco G., Garcia-Garcia A.B., Real J.T., et al. Respiratory chain polymorphisms and obesity in the Spanish population, a cross-sectional study // BMJ Open. 2019. Vol. 9, No. 2. ID e027004. doi: 10.1136/bmjopen-2018-027004
  44. Андреев А.Ю., Кушнарева Ю.Е., Мерфи А.Н., Старков А.А. Митохондриальный метаболизм активных форм кислорода: десять лет спустя // Биохимия. 2015. Т. 80, № 5. С. 612–630. doi: 10.1134/S0006297915050028
  45. Bortolotti M., Polito L., Battelli M.G., Bolognesi A. Xanthine oxidoreductase: One enzyme for multiple physiological tasks // Redox Biology. 2021. Vol. 41, No. 5. ID 101882. doi: 10.1016/j.redox.2021.101882
  46. Kudo M., Moteki T., Sasaki T., et al. Functional characterization of human xanthine oxidase allelic variants // Pharmacogen Genom. 2008. Vol. 18, No. 3. P. 243–251. doi: 10.1097/FPC.0b013e3282f55e2e
  47. Klisic А., Kocic G., Kavaric N., et al. Body mass index is independently associated with xanthine oxidase activity in overweight/obese population // Eat Weight Disord. 2020. Vol. 25, No. 1. P. 9–15. doi: 10.1007/s40519-018-0490-5
  48. Furge L.L., Guengerich F.P. Cytochrome p450 enzymes in drug metabolism and chemical toxicology: An introduction // Biochem Mol Biol Educ. 2006. Vol. 34, No. 2. P. 66–74. doi: 10.1002/bmb.2006.49403402066
  49. Veith A., Moorthy B. Role cytochrome P450s in the generation and metabolism of reactive oxygen species // Curr Opin Toxicol. 2018. Vol. 7, No. 2. P. 44–51. doi: 10.1016/j.cotox.2017.10.003
  50. Arnold W.R., Zelasko S., Meling D.D., et al. Polymorphisms of CYP2C8 alter first-electron transfer kinetics and increase catalytic uncoupling // Int J Mol Sci. 2019. Vol. 20, No. 18. ID 4626. doi: 10.3390/ijms20184626
  51. Krogstad V., Peric A., Robertsen I., et al. Correlation of body weight and composition with hepatic activities of cytochrome P450. Enzymes // J Pharm Sci. 2021. Vol. 110, No. 1. P. 432–437.doi: 10.1016/j.xphs.2020.10.027
  52. Polonikov A., Kharchenko A., Bykanova M., et al. Polymorphisms of CYP2C8, CYP2C9 and CYP2C19 and risk of coronary heart disease in Russian population // Gene. 2017. Vol. 627. P. 451–459. doi: 10.1016/j.gene.2017.07.004
  53. Wang Q., Xie Z., Zhang W., et al. Myeloperoxidase deletion prevents high-fat diet-induced obesity and insulin resistance // Diabetes. 2014. Vol. 63, No. 12. P. 4172–4185. doi: 10.2337/db14-0026
  54. Панасенко О.М., Сергиенко В.И. Галогенирующий стресс и его биомаркеры // Вестник Российской академии медицинских наук. 2010. № 1. С. 27–39.
  55. Herishanu Y., Rogowski O., Polliack A., Marilus R. Leukocytosis in obese individuals: possible link in patients with unexplained persistent neutrophilia // Eur J Haematol. 2006. Vol. 76, No. 6. P. 516–520. doi: 10.1111/j.1600-0609.2006.00658.x
  56. Piedrafita F.J., Molander R.B., Vansant G., et al. An Alu element in the myeloperoxidase promoter contains a composite SP1-thyroid hormone-retinoic acid response element // J Biol Chem. 1996. Vol. 271, No. 24. P. 14412–14420. doi: 10.1074/jbc.271.24.14412
  57. Kumar A.P., Piedrafita F.J., Reynolds W.F. Peroxisome proliferator-activated receptor gamma ligands regulate myeloperoxidase expression in macrophages by an estrogen-dependent mechanism involving the –463GA promoter polymorphism // J Biol Chem. 2004. Vol. 279, No. 9. P. 8300–8315. doi: 10.1074/jbc.M311625200
  58. Liu Y.-C., Chung C.-J., Shiue H.-S., et al. Genetic polymorphisms of myeloperoxidase and their effect on hypertension // Blood Pressure. 2013. Vol. 22, No. 5. P. 282–289. doi: 10.3109/08037051.2012.759331
  59. Özgen I.T., Torun E., Ergen A., et al. Myeloperoxidase 463 G>A and superoxide dismutase Ala16Val gene polymorphisms in obese children // Turk J Pediatr. 2014. Vol. 56, No. 5. P. 511–517.
  60. Oliveira-Paula G.H., Lacchini R., Tanus-Santos J.E. Endothelial nitric oxide synthase: From biochemistry and gene structure to clinical implications of NOS3 polymorphisms // Gene. 2016. Vol. 575, No. 2 Pt3. P. 584–599. doi: 10.1016/j.gene.2015.09.061
  61. Park H.K., Kim S.K., Kwon O.Y., et al. Analysis between nitric oxide synthase 1 (NOS1) and risk of obesity // Mol Cell Toxicol. 2016. Vol. 12, No. 6. P. 217–222. doi: 10.1007/s13273-016-0026-x
  62. Sansbury B.E., Hill B.G. Anti-obesogenic role of endothelial nitric oxide synthase // Vitam Horm. 2014. Vol. 96, No. 4. P. 323–346. doi: 10.1016/B978-0-12-800254-4.00013-1
  63. Podolsky R.H., Barbeau P., Kang H.-S., et al. Candidate genes and growth curves for adiposity in African- and European-American youth // Int J Obes (Lond.). 2007. Vol. 31, No. 10. P. 1491–1499. doi: 10.1038/sj.ijo.0803673
  64. Joshi M.S., Mineo C., Shaul P.W., et al. Biochemical consequences of the NOS3 Glu298Asp variation in human endothelium: altered caveolar localization and impaired response to shear // Faseb J. 2007. Vol. 21, No. 11. P. 2655–2663. doi: 10.1096/fj.06-7088com
  65. Акопян А.А., Кириллова К.И., Стражеско И.Д., и др. Связь полиморфизма генов AGT, ACE, NOS3 с субклиническими изменениями артериальной стенки и факторами риска сердечно-cосудистых заболеваний // Клиническая практика. 2020. Т. 11, № 1. С. 30–41. doi: 10.17816/clinpract18572
  66. Souza-Costa D.C., Belo V.A., Silva P.S., et al. eNOS haplotype associated with hypertension in obese children and adolescents // Int J Obes (Lond.). 2011. Vol. 35, No. 7. P. 387–392. doi: 10.1038/ijo.2010.146
  67. De Miranda J.A., Lacchini R., Belo V.A., et al. The effects of endothelial nitric oxide synthase tagSNPs on nitrite levels and risk of hypertension and obesity in children and adolescents // J Hum Hypertens. 2015. Vol. 29, No. 2. P. 109–114. doi: 10.1038/jhh.2014.48
  68. Cooke G.E., Doshi A., Binkley P.F. Endothelial nitric oxide synthase gene: prospects for treatment of heart disease // Pharmacogenomics. 2007. Vol. 8, No. 12. P. 1723–1734. doi: 10.2217/14622416.8.12.1723
  69. Nakata S., Tsutsui M., Shimokawa H., et al. Spontaneous myocardial infarction in mice lacking all nitric oxide synthase isoforms // Circulation. 2008. Vol. 117, No. 17. P. 2211–2223. doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.107.742692
  70. Sansbury B.E., Cummins T.D., Tang Y., et al. Overexpression of endothelial nitric oxide synthase prevents diet-induced obesity and regulates adipocyte phenotype // Circ Res. 2012. Vol. 111, No. 9. P. 1176–1189. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.112.266395
  71. Miranda J.A., Belo V.A., Souza-Costa D.C., et al. eNOS polymorphism associated with metabolic syndrome in children and adolescents // Mol Cell Biochem. 2013. Vol. 372, No. 1–2. P. 155–160. doi: 10.1007/s11010-012-1456-y
  72. Aftabi Y., Gilani N., Ansarin A., et al. Female-biased association of NOS2-c.1823C>T (rs2297518) with co-susceptibility to metabolic syndrome and asthma // Can J Physiol Pharmacol. 2023. Vol. 101, No. 4. P. 200–213. doi: 10.1139/cjpp-2022-0334
  73. Gusti A.M.T., Qusti S.Y., Alshammari E.M., et al. Antioxidants-related superoxide dismutase (SOD), catalase (CAT), glutathione peroxidase (GPX), glutathione-S-transferase (GST), and nitric oxide synthase (NOS) gene variants analysis in an obese population: a preliminary case-control study // Antioxidants (Basel). 2021. Vol. 10, No. 4. ID 595. doi: 10.3390/antiox10040595
  74. Tinahones F.J., Murri-Pierri M., Garrido-Sánchez L., et al. Oxidative stress in severely obese persons is greater in those with insulin resistance // Obesity. 2012. Vol. 17, No. 2. P. 240–246. doi: 10.1038/oby.2008.536
  75. Perry J.J.P., Shin D.S., Getzoff E.D., Tainer J.A. The structural biochemistry of the superoxide dismutases // Biochim Biophys Acta Proteins Proteom. 2010. Vol. 1804, No. 2. P. 245–262. doi: 10.1016/j.bbapap.2009.11.004
  76. Hernandez-Guerrero C., Hernandez-Chavez P., Romo-Palafox I., et al. Genetic polymorphisms in SOD (rs2070424, rs7880) and CAT (rs7943316, rs1001179) enzymes are associated with increased body fat percentage and visceral fat in an obese population from Central Mexico // Arch Med Res. 2016. Vol. 47, No. 5. P. 331–339. doi: 10.1016/j.arcmed.2016.08.007
  77. Lewandowski Ł., Kepinska M., Milnerowicz H. Alterations in concentration/activity of superoxide dismutases in context of obesity and selected single nucleotide polymorphisms in genes: SOD1, SOD2, SOD3 // Int J Mol Sci. 2020. Vol. 21, No. 14. ID 5069. doi: 10.3390/ijms21145069
  78. Echart Montano M.A., Barrio Lera J.P., Valle Gottlieb M.G., et al. Association between manganese superoxide dismutase (MnSOD) gene polymorphism and elderly obesity // Mol Cell Biochem. 2009. Vol. 328, No. 3. P. 33–40. doi: 10.1007/s11010-009-0071-z
  79. Sutton A., Imbert A., Igoudjil A., et al. The manganese superoxide dismutase Ala16Val dimorphism modulates both mitochondrial import and mRNA stability // Pharmacogenet Genomics. 2005. Vol. 15, No. 5. P. 311–319. doi: 10.1097/01213011-200505000-00006
  80. Nandi A., Yan L.J., Jana C.K., Das N. Role of catalase in oxidative stress- and age-associated degenerative diseases // Oxid Med Cell Longev. 2019. Vol. 2019, No. 11. ID 9613090. doi: 10.1155/2019/9613090
  81. Forsberg L., Lyrenás L., Morgenstern R., De Faire U. A common functional C-T substitution polymorphism in the promoter region of the human catalase gene influences transcription factor binding, reporter gene transcription and is correlated to blood catalase levels // Free Radic Biol Med. 2001. Vol. 30, No. 5. P. 500–505. doi: 10.1016/s0891-5849(00)00487-1
  82. Ruperez A.I., Olza J., Gil-Campos M., et al. Are catalase –844A/G polymorphism and activity associated with childhood obesity? // Antioxid Redox Signal. 2013. Vol. 19, No. 16. P. 1970–1975. doi: 10.1089/ars.2013.5386
  83. Ершова О.А., Баирова Т.А. Распространенность полиморфизма –262С/Т гена каталазы (rs1001179) у русских и бурят Восточной Сибири с эссенциальной артериальной гипертензией // Acta Biomedica Scientifica. 2015. № 3. С. 70–73.
  84. Brigelius-Flohе R., Flohe L. Regulatory phenomena in the glutathione peroxidase superfamily // Antiox Redox Signal. 2020. Vol. 33, No. 7. P. 498–516. doi: 10.1089/ars.2019.7905
  85. Кулинский В.И., Колесниченко Л.С. Система глутатиона. 1. Синтез, транспорт, глутатионтрансферазы, глутатионпероксидазы // Биомедицинская химия. 2009. Т. 55, № 3. С. 255–277.
  86. Hernandez Guerrero C., Hernandez Chávez P., Castro N.M., et al. Glutathione peroxidase-1 Pro200Leu polymorphism (rs1050450) is associated with morbid obesity independently of the presence of prediabetes or diabetes in women from Central Mexico // Nutr Hosp. 2015. Vol. 32, No. 4. P. 1516–1525. doi: 10.3305/nh.2015.32.4.9500
  87. Азарова Ю.Э., Клёсова Е.Ю., Бушуева О.Ю., и др. Полиморфный вариант гена GPx2 (rs4902346) и предрасположенность к сахарному диабету 2-го типа // Медицинская генетика. 2020. Т. 19, № 2. С. 17–27. doi: 10.25557/2073-7998.2020.02.17-27
  88. Costa-Urrutia P., Flores-Buendía A.M., Ascencio-Montiel I., et al. antioxidant enzymes haplotypes and polymorphisms associated with obesity in Mexican children // Antioxidants. 2020. Vol. 9, No. 8. ID 684. doi: 10.3390/antiox9080684
  89. Johansson A.-S., Stenberg G., Widersten M., Mannervik B. Structureactivity relationships and thermal stability of human glutathione transferase P1-1 governed by the H-site residue 105 // J Mol Biol. 1998. Vol. 278, No. 3. P. 687–698. doi: 10.1006/jmbi.1998.1708
  90. Азарова Ю.Э., Конопля А.И., Полоников А.В. Полиморфизм генов глутатион-S-трансфераз и предрасположенность к сахарному дибету 2 типа у жителей Центрального Черноземья // Медицинская генетика. 2017. Т. 16, № 4. С. 29–34.
  91. Chielle E.O., Fortuna P.C., Maziero J.S. Association between the glutathione S-transferase P1 (GSTP1) Ile105Val gene polymorphism in obese and overweight patients over 60 years // J Bras Patol Med Lab. 2016. Vol. 52, No. 4. P. 211–216. doi: 10.5935/1676-2444.20160035
  92. Yang S.-A. Lack of association between glutathione s-transferase mu 1 (GSTM1) gene polymorphisms and obesity // J Exerc Rehabil. 2017. Vol. 13, No. 5. P. 608–612. doi: 10.12965/jer.1735128.564
  93. Klusek J., Błońska-Sikora E., Witczak B., Orlewska K. Glutathione S-transferases gene polymorphism influence on the age of diabetes type 2 onset // BMJ Open Diabetes Res Care. 2020. Vol. 8, No. 2. ID e001773. doi: 10.1136/bmjdrc-2020-001773
  94. Азарова Ю.Э., Клесова Е.Ю., Полоников А.В. Полиморфные варианты гена глутатионредуктазы — новые генетические маркеры предрасположенности к сахарному диабету 2-го типа // Терапевтический архив. 2021. Т. 93, № 10. С. 1164–1170. doi: 10.26442/00403660.2021.10.201101
  95. Hopkins B.L., Neumann C.A. Redoxins as gatekeepers of the transcriptional oxidative stress response // Redox Biol. 2019. Vol. 21, No. 2. ID 101104. doi: 10.1016/j.redox.2019.101104
  96. Huh J.Y., Kim Y., Jeong J., et al. Peroxiredoxin 3 is a key molecule regulating adipocyte oxidative stress, mitochondrial biogenesis, and adipokine expression // Antioxid Redox Signal. 2012. Vol. 16, No. 3. P. 229–243.doi: 10.1089/ars.2010.3766
  97. Hiroi M., Nagahara Y., Miyauchi R., et al. The combination of genetic variations in the PRDX3 gene and dietary fat intake contribute to obesity risk // Obesity. 2011. Vol. 19, No. 4. P. 882–887. doi: 10.1038/oby.2010.275
  98. Yoshihara E., Masaki S., Matsuo Y., et al. Thioredoxin/Txnip: redoxisome, as a redox switch for the pathogenesis of diseases // Front Immunol. 2014. Vol. 4, No. 1. ID 514. doi: 10.3389/fimmu.2013.00514
  99. Bodnar J.S., Chatterjee A., Castellani L.W., et al. Positional cloning of the combined hyperlipidemia gene Hyplip1 // Nat Genet. 2002. Vol. 30, No. 1. P. 110–116. doi: 10.1038/ng811
  100. Ferreira N.E., Omae S., Pereira A., et al. Thioredoxin interacting protein genetic variation is associated with diabetes and hypertension in the Brazilian general population // Atherosclerosis. 2012. Vol. 221, No. 1. P. 131–136. doi: 10.1016/j.atherosclerosis.2011.12.009
  101. Wang X.-B., Han Y.-D., Zhang S., et al. Associations of polymorphisms in TXNIP and gene-environment interactions with the risk of coronary artery disease in a Chinese Han population // J Cell Mol Med. 2016. Vol. 20, No. 12. P. 2362–2373. doi: 10.1111/jcmm.12929
  102. Jimenez-Osorio A.S., Gonzalez-Reyes S., Garcia-Nino W.R., et al. association of nuclear factor-erythroid 2-related factor 2, thioredoxin interacting protein, and heme oxygenase-1 gene polymorphisms with diabetes and obesity in Mexican patients // Oxid Med Cell Longev. 2016. Vol. 2016. ID 7367641. doi: 10.1155/2016/7367641
  103. Das S.K., Sharma N.K., Hasstedt S.J., et al. An integrative genomics approach identifies activation of thioredoxin/thioredoxin reductase-1-mediated oxidative stress defense pathway and inhibition of angiogenesis in obese nondiabetic human subjects // J Clin Endocrin Metabol. 2011. Vol. 96, No. 8. P. E1308–E1313. doi: 10.1210/jc.2011-0101
  104. Abraham N.G., Junge J.M., Drummond G.S. Translational significance of heme oxygenase in obesity and metabolic syndrome // Trends Pharmacol Sci. 2016. Vol. 37, No. 1. P. 17–36. doi: 10.1016/j.tips.2015.09.003
  105. Gozzelino R., Jeney V., Soares M.P. Mechanisms of cell protection by heme oxygenase-1 // Annu Rev Pharmacol Toxicol. 2010. Vol. 50. P. 323–354. doi: 10.1146/annurev.pharmtox.010909.105600
  106. Ma L.-L., Sun L., Wang Y.-X., et al. Association between HO1 gene promoter polymorphisms and diseases (review) // Mol Med Rep. 2022. Vol. 25, No. 1. ID 29. doi: 10.3892/mmr.2021.12545
  107. Zhang M.-M., Zheng Y.-Y., Gao Y., et al. Heme oxygenase-1 gene promoter polymorphisms are associated with coronary heart disease and restenosis after percutaneous coronary intervention: A meta-analysis // Oncotarget. 2016. Vol. 50, No. 7. P. 83437–83450. doi: 10.18632/oncotarget.13118
  108. Lee W.S., Ham W., Kim J. Roles of NAD(P)H: quinone oxidoreductase 1 in diverse diseases // Life (Basel). 2021. Vol. 11, No. 12. ID 1301. doi: 10.3390/life11121301
  109. Palming J., Sjöholm K., Jernås M., et al. The expression of NAD(P)H: quinone oxidoreductase 1 is high in human adipose tissue, reduced by weight loss, and correlates with adiposity, insulin sensitivity, and markers of liver dysfunction // J Clin Endocrinol Metab. 2007. Vol. 92, No. 6. P. 2346–2352. doi: 10.1210/jc.2006-2476
  110. Ross D., Siegel D. The diverse functionality of NQO1 and its roles in redox control // Redox Biol. 2021. Vol. 41. ID 101950. doi: 10.1016/j.redox.2021.101950
  111. Gutiérrez-Cuevas J., Galicia-Moreno M., Monroy-Ramírez H.C., et al. The role of NRF2 in obesity-associated cardiovascular risk factors // Antioxidants (Basel). 2022. Vol. 11, No. 2. ID 235. doi: 10.3390/antiox11020235
  112. Cho H.-Y., Marzec J., Kleeberger S.R. Functional polymorphisms in Nrf2: implications for human disease // Free Radic Biol Med. 2015. Vol. 88, No. B. P. 362–372. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2015.06.012
  113. Пороховник Л.Н., Писарев В.М. Связь аллельных вариантов гена NFE2L2 транскрипционного фактора NRF2 с патогенезом многофакторных заболеваний // Генетика. 2017. Т. 53, № 8. С. 895–910. doi: 10.6878/S0016675817080057
  114. Chen Q.M., Maltagliati A.J. Nrf2 at the heart of oxidative stress and cardiac protection // Physiol Genomics. 2018. Vol. 50, No. 2. P. 77–97. doi: 10.1152/physiolgenomics.00041.2017.
  115. Kwak M.-K., Itoh K., Yamamoto M., Kensler T.W. Enhanced expression of the transcription factor Nrf2 by cancer chemopreventive agents: role of antioxidant response element-like sequences in the nrf2 promoter // Mol Cell Biol. 2002. Vol. 22, No. 9. P. 2883–2892. doi: 10.1128/MCB.22.9.2883-2892.2002
  116. Xia Y., Zhai X., Qiu Y., et al. The Nrf2 in obesity: A friend or foe? // Antioxidants. 2022. Vol. 11, No. 10. ID 2067. doi: 10.3390/antiox11102067
  117. Vasileva L.V., Savova M.S., Amirova K.M., et al. Obesity and NRF2-mediated cytoprotection: Where is the missing link? // Pharmacol Res. 2020. Vol. 156, No. 6. ID 104760. doi: 10.1016/j.phrs.2020.104760
  118. Wang X., Chen H., Liu J., et al. Association between the NF-E2 related factor 2 gene polymorphism and oxidative stress, anti-oxidative status, and newly-diagnosed type 2 diabetes mellitus in a chinese population // Int J Mol Sci. 2015. Vol. 16, No. 7. P. 16483–16496. doi: 10.3390/ijms160716483
  119. Ahmad A.A., Rahimi Z., Vaisi-Raygani A. Keap1 gene variants (rs11085735) and lipid profile in obese individuals from Kurdistan, Iraq // Avicenna J Med Biochem. 2022. Vol. 10, No. 2. P. 95–100. doi: 10.34172/ajmb.2022.2389
  120. Khalili F., Vaisi-Raygani A., Shakiba E., et al. Oxidative stress parameters and keap 1 variants in T2DM: Association with T2DM, diabetic neuropathy, diabetic retinopathy, and obesity // J Clin Lab Anal. 2022. Vol. 36, No. 1. ID e24163. doi: 10.1002/jcla.24163

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Состав редокс-чувствительных генов и их роль в развитии окислительного стресса при ожирении и метаболических заболеваниях

Скачать (179KB)
3. Рис. 2. Механизмы развития окислительного стресса при ожирении и метаболических заболеваниях. АКМ — активированные кислородные метаболиты, АФК — активные формы кислорода, АФА — активные формы азота, АФГ — активные формы галогенов

Скачать (227KB)

© Эко-Вектор, 2023

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 65617 от 04.05.2016.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах