Laser flare photometry in clinical practice

Cover Page

Abstract


Laser flare photometry (LFP) is the only quantitative and objective method for the evaluation of aqueous flare. There are numerous opportunities to use LFP in clinical practice, and they are discussed in the paper. It is especially helpful in management of uveitis patients, because it allows estimating the correct diagnosis, managing the patient during the treatment with noninvasive method and predicting relapses and complications.

По данным И.Е. Пановой и Е.А. Дроздовой (2014), частота встречаемости увеитов составляет 15-38 человек на 100 000 населения. В структуре глазной патологии увеиты занимают 5-18 % [9]. Несмотря на небольшую распространённость заболевания, высокая социальная и экономическая значимость обусловлена длительным хроническим течением и частым развитием осложнений. Например, по данным Е.А. Дроздовой и др., от 10 до 35 % случаев слепоты и слабовидения среди всех заболеваний глаз наблюдаются при увеите [4]. Осложнения развиваются у 40,8 % больных с увеитом при различных ревматических заболеваниях [5]. По нашим данным, хроническое течение неинфекционного увеита встречается в 59,5 % случаев (Международный офтальмологический конгресс «Белые ночи», 2015). Одной из главных задач при обследовании пациента с увеитом является определение активности и степени тяжести воспалительного процесса, которое основано на определении содержания белка в водянистой влаге, количества клеток во влаге передней камеры и в стекловидном теле, а также уровня его помутнения [4, 60]. Не менее важной задачей является динамическое наблюдение за течением воспалительного процесса в ответ на проводимую терапию. Для решения указанных задач большинство офтальмологов в ежедневной практике использует биомикроскопию. Содержание белка в водянистой влаге определяется по её прозрачности и видимости структур радужки и хрусталика. Количество клеток в водянистой влаге подсчитывается на участке размером 1 × 1 мм, образованном падающим под углом 45-60° в переднюю камеру лучом света при максимальной интенсивности освещения. С помощью биомикроскопии определяется и количество воспалительных клеток в стекловидном теле при максимальной интенсивности освещения, а степень его помутнения выявляется при офтальмоскопии. Для градации степени содержания белка в водянистой влаге наиболее широко применяется классификация M.J. Hogan, предложенная в 1959 году [4]. В 2005 году она была адаптирована для клинических исследований рабочей группой по стандартизации номенклатуры по увеитам (Standardization of Uveitis Nomenclature (SUN) Working Group). В соответствии с этой классификацией выделяют четыре степени содержания белка [34] (табл. 1). Более простая классификация была предложена Л.А. Кацнельсоном и В.Э. Танковским [6] (табл. 2), которые предложили выделять три степени содержания белка. Не менее важным остаётся оценка симптома Тиндаля (табл. 3), так как измерение с помощью небольшой щели 1 × 3 мм позволяет выявить минимальные изменения прозрачности водянистой влаги [12]. Впервые феномен был описан лордом John Tindall в 1869 году и заключается в рассеянии света частицами дисперсной фазы, что и является опалесценцией [30]. Методика сочетает определение количества клеток и степени содержания белка. Градация количества клеток в водянистой влаге осуществляется при помощи классификации рабочей группы по стандартизации номенклатуры по увеитам (SUN Working Group) [34], в которой выделяют чытере степени соответственно количеству видимых клеток (табл. 4). Все перечисленные выше методики и классификации позволяют выявить признаки воспалительного процесса в водянистой влаге и оценить степень его тяжести, однако являются субъективными и в значительной степени зависят от исполнителя. K. Konstantopoulou et al. сравнили результаты биомикроскопии у двух офтальмологов [36]. Всего в исследование было включено 110 глаз, и в 35,5 % случаев (39 глаз) выявлены несоответствия показателей степени опалесценции между двумя исполнителями. На данный момент единственным объективным и количественным методом определения активности и степени тяжести воспалительного процесса является лазерная фотометрия или тиндалеметрия [29, 31, 43, 54]. В Европе данная методика была внедрена в офтальмологическую практику в 1988 году [38]. В настоящее время фирма Kowa является единственным производителем лазерных фотометров. Существует два типа прибора: первый измеряет только количество белка в водянистой влаге, второй дополнительно определяет количество клеток (лимфоцитов, нейтрофилов и др.). К первым относятся такие модели, как FM-500, FM-600 и FM-700, ко вторым - FC-1000 и FC-2000. В приборах, которые определяют только количество белка, используется диодный лазер с постоянной мощностью (25 микроВт). Лазерный луч диаметром 20 мкм направляется во влагу передней камеры под углом 45° к переднезадней оси глаза. И под углом 90° к входящему лазерному пучку расположено окно фотоумножителя-фотодетектора, воспринимающее отражённый свет, размером 0,3 × 0,5 мм [30]. Принцип измерения опалесценции основан на соответствии количества света, отражённого от белков в передней камере, численности данных белков в водянистой влаге. Количество отражённого света пропорционально и размеру белков, что соответствует степени нарушения барьера кровь - водянистая влага [48]. Во многих исследованиях была показана статистически значимая линейная зависимость между числом отражённых фотонов и количеством общего белка в водянистой влаге, определяемой биохимическим анализом in vitro у пациентов с катарактой [37, 50]. Измерение опалесценции необходимо проводить несколько раз (6-10) [55], и прибор автоматически рассчитывает среднее цифровое значение, выраженное в количестве фотонов за миллисекунды (ф/мс). В приборах, сочетающих измерение количества белка и клеток в водянистой влаге, применяется гелий-неоновый лазер. В этом случае анализируется кривая количества фотонов и фиксируются только пики наибольшего рассеивания, которые соответствуют клеткам. В результате нескольких последовательных измерений получается среднее число, измеряемое в количестве клеток в 0,5 мм3 (в более ранней модели FC-1000 в 0,075 мм3). Во многих исследованиях была установлена высокая воспроизводимость результатов измерений количества белка и клеток с помощью лазерного фотометра [40, 49, 54]. При выполнении лазерной фотометрии необходимо учитывать следующие данные: степень прозрачности роговицы, размер зрачка, наличие катаракты или интраокулярной линзы, мелкую переднюю камеру [55], применение ингибиторов карбоангидразы, селективных α2-агонистов [45, 57]. Значительное снижение прозрачности роговицы не позволяет выполнить измерение. Инстилляция мидриатических капель у здоровых людей приводит к снижению уровня опалесценции на 11-20 % [30]. Зрелая и перезрелая катаракта, избыточное отражение от интраокулярной линзы, а также мелкая передняя камера создают некоторые сложности для выполнения точного измерения. Ингибиторы карбоангидразы уменьшают продукцию водянистой влаги, в связи с чем она становится более концентрированной, что приводит к завышению показателей опалесценции. Данный факт подтверждает и то, что применение препаратов класса простагландинов F2-альфа у пациентов с первичной открытоугольной глаукомой и без оперативных вмешательств и увеита в анамнезе не приводит к изменению опалесценции [59, 44]. Несмотря на то что уровень опалесценции статистически значимо варьирует под действием перечисленных факторов, при исследовании пациентов с увеитом клинически значимыми они не являются [30]. Повышение проницаемости гематоофтальмического барьера происходит и при целом ряде патологических состояний, например, при псевдоэксфолиативном синдроме [40, 56], пигментном ретините [46], диабетической ретинопатии [33], окклюзии вен сетчатки [47], меланоме хориоидеи [41], закрытоугольной и рефрактерной глаукоме [58, 35], хориодермии [22]. С помощью лазерной фотометрии были выявлены изменения барьера кровь - водянистая влага при различных офтальмологических манипуляциях, в частности, X.B. Goa et al. показали, что пик внутриглазного давления после лазерной или хирургической периферической иридэктомии был обусловлен в том числе и нарушением барьера кровь - водянистая влага [25]. M.W. Zhou et al. обследовали пациентов с рефрактерной глаукомой до и после имплантации клапана Ахмеда [58]. Среднее значение опалесценции до операции составило 15,17 ± 9,84 ф/мс, увеличение показателя происходило на первый день после операции с максимальным значением на третьи сутки. Возвращение к предоперационным данным наблюдалось через 2 недели, а через один месяц количество белка было ниже, чем до операции. Отечественными авторами также проведены исследования с применением лазерной фотометрии. В частности, в литературе имеются данные о состоянии барьера кровь - водянистая влага при лечении глаукомы. Е.Х. Тахчиди сравнила концентрацию белка в водянистой влаге (аппарат Kowa FC-2000) после микроинвазивной непроникающей глубокой склерэктомии (МНГСЭ) и после непроникающей глубокой склерэктомии (НГСЭ), разработанной С.Н. Фёдоровым и В.И. Козловым (1987), при первичной открытоугольной глаукоме [15]. Автор показала, что количество белка на следующий день после НГСЭ возросло на 11 % (8,7 ± 1,0 ф/мс) и клеток на 9 % (8,4 ± 1,8), а после МНГСЭ численность белка увеличилась на 7,5 % (6,9 ± 1,2 ф/мс) и клеток на 5 % (7,1 ± 1,6) [15]. Т.С. Любимова и др. выявили меньшую выраженность ранней воспалительной реакции глаза после разработанной селективной лазерной активации трабекулы (СЛАТ), чем после селективной лазерной трабекулопластики (СЛТ) [16]. Было установлено, что максимальное повышение концентрации белка в водянистой влаге наступает в первые сутки после операции, на седьмые сутки возвращается к исходному при СЛТ и на пятые при СЛАТ. Н.Ю. Горбунова и др. исследовали течение раннего послеоперационного периода после непроникающих и проникающих гипотензивных вмешательств на приборе Kowa FC-2000 [3]. Показатели лазерной тиндалеметрии повышались уже в первые сутки после операции и возвращались к дооперационному уровню на пятые сутки после непроникающих операций и к 14-му дню после проникающих. При исходно высоких значениях внутриглазного давления (ВГД) до операции (>32 мм рт. ст.) количество белка и клеток возрастало более чем в 2-3 раза после проникающих операций. Прогрессивное повышение концентрации белка в 3-4 и более раз ко 2-3-му дню после оперативного вмешательства сопровождалось развитием цилиохориоидальной отслойки на 3-5-й день. Лазерная фотометрия была включена в исследования по имплантации интраокулярных линз и иридохрусталиковых диафрагм, разработанных по оригинальной методике. В 2010 году Е.Н. Батьков оценивал степень воспалительной реакции после факоэмульсификации с имплантацией оригинальной эластичной заднекамерной интраокулярной линзы (ИОЛ) при различных формах несостоятельности капсульно-связочного аппарата [2]. После операции максимальное увеличение клеточной реакции в передней камере происходило на 2-3-и сутки, полная нормализация проницаемости барьера кровь - водянистая влага наступала через 1 месяц [2]. В случае с шовной фиксацией ИОЛ уровень клеточной реакции был статистически выше в первую неделю послеоперационного периода. Н.А. Поздеева и др. определяли активность воспалительной реакции на имплантацию различных моделей (A, B, С, D, F, S) иридохрусталиковых диафрагм (ИХД) у пациентов с посттравматической и врождённой аниридией [11]. Авторы установили, что количество клеток после операции увеличивается в 1,3-3,4 раза, а концентрация белка - в 1,3-2,3 раза. Статистически значимой разницы уровня опалесценции между разными моделями ИХД и способами фиксации в раннем послеоперационном периоде выявлено не было. Однако прослеживалась тенденция к минимальной воспалительной реакции при имплантации моделей А и С на капсулу хрусталика, по мнению авторов, ввиду самой простой и наименее травматичной хирургической техники. В результате анализа с помощью коэффициента Спирмена была обнаружена положительная корреляция высокой степени между послеоперационными данными толщины макулярной зоны по данным ОКТ и количеством клеток по данным лазерной фотометрии. Проницаемость барьера кровь - водянистая влага оставалась нарушенной в течение 6-12 месяцев после операции. В области лечения кератоконуса также проведён ряд исследований. В 2008 году С.В. Сусликов применял лазерную фотометрию для определения воспалительной реакции глаза после комбинированного лазерного лечения (ФРК + персонализированная ФРК) начальной стадии кератоконуса [13]. Уровень белка в водянистой влаге после ФРК + персонализированная ФРК составил 3,68 ± 1,76 ф/мс, количество клеток - 2,64 ± 1,5, в то время как после циркулярной лазерной термокератопластики - 4,34 ± 2,34 ф/мс и 3,12 ± 2,71 соответственно. В 2009 году авторы сравнили уровень опалесценции до и после лазерной термокератопластики у пациентов с кератоконусом и не получили статистически достоверной разницы между показаниями опалесценции и количеством клеток, что свидетельствует об отсутствии повреждения барьера кровь - водянистая влага при данной операции [14]. Л.В. Лебедев и Н.П. Паштаев показали, что максимальное увеличение опалесценции после фемтосекундной сквозной кератопластики с комбинированным профилем и традиционной сквозной кератопластики (СКП) приходится на 3-4-й день [7]. Через год концентрация белка снижалась до нормальных цифр, оставаясь более низкой при фемтосекундной СКП. Исследование уровня воспаления на аппарате Kowa FC-2000 было включено Н.П. Паштаевым и Д.Г. Арсютовым в исследование медицинских клеев при прогрессирующей миопии и отслойке сетчатки. Авторы показали, что у всех пациентов после операции склеропластики повышались показатели лазерной тиндалеметрии в период до 3 суток [10]. Средний показатель концентрации белка у здоровых людей, по данным авторов, составляет 3,2 ± 1,9 ф/мс, а количества клеток - 1,1 ± 0,78 в 0,5 мм3. При возрастной макулярной дегенерации (ВМД) Б.Э. Малюгин и др. выявили нарушение гематоцилиарного барьера: значения количества белка в водянистой влаге были выше у пациентов с ранней формой ВМД, чем у пациентов без сопутствующей макулярной патологии [8]. Авторы также установили, что максимальные значения количества белка приходились на первые сутки после факоэмульсификации (ФЭ), они постепенно снижались в течение 5 дней, но даже к концу второго месяца не достигали исходных. По данным исследователей, нестероидные противовоспалительные средства (НПВС) и стероидные противовоспалительные средства оказали приблизительно равный противовоспалительный эффект после ФЭ с имплантацией ИОЛ, но при использовании НПВС восстановление послеоперационных повреждений гематоофтальмического барьера происходило быстрее. В зарубежной практике лазерная фотометрия также применяется для диагностики воспалительных заболеваний и для динамического наблюдения за пациентами с передними увеитами, а при значении, равном 15 ф/мс и более, с промежуточными и задними увеитами [55]. По данным Y. Guex-Crosier et al., среднее значение опалесценции при увеитах различной этиологии составляет (табл. 5): при болезни Бехчета - 331,8 ± 47,7 ф/мс, остром переднем увеите - 170,2 ± 33,0 ф/мс, остром некрозе сетчатки - 177,4 ± 88,0 ф/мс, заднем увеите саркоидозной этиологии - 26,9 ± 4,6 ф/мс, остром увеите, вызванном Herpes zoster, - 25,8 ± 6,1 ф/мс и промежуточном увеите по типу парспланита - 15,6 ± 1,3 ф/мс [27, 28]. Минимальная опалесценция наблюдается при увеите Фукса (10,2 ± 3,5 ф/мс), токсоплазмозе (7,5 ± 1,0 ф/мс) и хориоретините «выстрел дробью» (5,8 ± 0,7 ф/мс). Авторы отмечают, что после терапии уровень опалесценции значительно снизился у пациентов с увеитом при болезни Бехчета (на 78 %), при саркоидозе (на 44,8 %) и промежуточном увеите по типу парспланита (на 51 %), однако данные изменения не наблюдались при токсоплазмозе и хориоретините «выстрел дробью». У 27 пациентов из 35 небольшое увеличение количества белка по данным лазерной фотометрии стало предиктором обострения воспалительного процесса. По данным B. Biziorek et al., содержание белка в водянистой влаге максимально при таких патологиях, как мультифокальный хориоидит с панувеитом (196,0 ф/мс), HLA-B27-ассоциированный увеит (145,4 ф/мс) и острый иридоциклит, вызванный Herpes zoster [20]; умеренно и слабо выражена при увеите Фукса (7,8 ф/мс), промежуточном увеите по типу парспланита (15,7 ф/мс), заднем токсоплазмозном (6,8 ф/мс) и токсокарозном (17,5 ф/мс) увеитах. У пациентов с различной этиологией увеитов C.A. Gonzales et al. установили взаимосвязь опалесценции, определённой лазерным фотометром, и наличия задних синехий, а также макулярного отёка, катаракты или экстракции катаракты в анамнезе, однако связи с развитием отёка диска зрительного нерва выявлено не было [26]. В зарубежной литературе широко представлены результаты исследований лазерной фотометрии при HLA-B27-ассоциированном увеите. Средний уровень опалесценции при обострении заболевания составляет 160,7 ± 22,0 ф/мс, по данным E. de Ancos [23], и 145,4 ф/мс, по данным B. Biziorek [20]. Снижение уровня воспаления при правильном лечении, по данным E. de Ancos [23], должно происходить на 2-й день на 50 % и на 8-й день на 90 %. О. Bernasconi et al. в процессе лечения пациентов выявили корреляцию высокой степени между снижением показателей лазерной фотометрии и снижением количества клеток в водянистой влаге, определённого при биомикроскопии [19]. Они также показали, что лазерная фотометрия более информативна по сравнению с биомикроскопией для наблюдения за уровнем воспаления. K. Balaskas с соавт. установили корреляцию высокой степени показателей лазерной фотометрии с толщиной сетчатки [18]. По данным I. Tugal-Tutkun, показатели лазерной фотометрии статистически значимо более высокие при сочетании болезни Бехчета с острым или хроническим увеитом, чем при болезни Бехчета без поражения глаз [53]. При обострении увеита на фоне болезни Бехчета авторы выявили взаимосвязь между показателями лазерной фотометрии и количеством клеток в водянистой влаге, определённым при биомикроскопии, уровнем помутнения стекловидного тела и показателем поражения заднего отрезка по данным офтальмоскопии. В случае хронического увеита корреляция была установлена только с уровнем поражения, определённым по флюоресцентной ангиографии, а риск обострения увеита был значительно выше при значении лазерной фотометрии более 6 ф/мс. G.N. Holland обследовал 114 пациентов с хроническим передним увеитом при ювенильном идиопатическом артрите и показал, что высокие цифры опалесценции ассоциированы с риском снижения остроты зрения, а также развитием новых осложнений [32]. C. Tappeiner подтвердил данные G.N. Holland и указал, что показатель лазерной фотометрии более 20 ф/мс ассоциирован с более низкой остротой зрения и более частым развитием таких осложнений, как катаракта, лентовидная дегенерация, эпиретинальная мембрана, отёк диска зрительного нерва и глаукома или офтальмогипертензия [52]. При увеите Фукса, по данным N. Bouchenaki, уровень опалесценции составляет 9,85 ± 6,28 ф/мс [21], а по данным M. Küchle - 12,1 ± 3,6 ф/мс [39]. При болезни Фогта-Коянаги-Харада опалесценция составляет при первичной атаке 8,1 (SD 4,1) ф/мс, а при рецидиве заболевания - 43,6 (SD 20,7) ф/мс [24]. По нашим данным, при рецидиве заболевания уровень опалесценции составил 98,9 ф/мс и 148,6 ф/мс на правом и левом глазу соответственно [1]. В случае симпатической офтальмии лазерная фотометрия оказалаcь эффективным методом оценки проводимой терапии, особенно при снижении дозы иммуносупрессивных препаратов [42]. В современной отечественной литературе информация по уровню воспаления при увеитах очень ограниченна. По данным И.А. Фролычева и Н.А. Поздеевой, у пациентов с послеоперационным эндофтальмитом через 1 месяц после двухэтапной витрэктомии концентрация белка в водянистой влаге составила 57-132 ф/мс, через 3 месяца - 34-91 ф/мс [17]. Лазерная фотометрия зарекомендовала себя точным и объективным методом определения состояния барьера кровь - водянистая влага, что позволило установить многие научные факты. Особенно незаменимой методика является при диагностике и лечении воспалительной патологии сосудистого тракта. Лазерная фотометрия даёт возможность выявить воспалительный процесс на субклиническом уровне, помогая своевременно установить диагноз. Динамическое наблюдение пациентов при помощи данной методики даёт возможность провести грамотное, адекватное лечение, наблюдать за его эффективностью с помощью неинвазивного метода, а также прогнозировать развитие осложнений и обострений увеита.

Yury S Astakhov

First Pavlov State Medical University of St Petersburg

Email: astakhov73@mail.ru
MD, PhD, Doc. Med. Sci., professor, Ophthalmology Department

Tatiana I Kuznetcova

First Pavlov State Medical University of St Petersburg

Email: brionika@gmail.com
MD, ophthalmologist

  1. Астахов Ю.С., Кузнецова Т.И., Хрипун К.В., и др. Перспективы диагностики и эффективность лечения болезни Фогта-Коянаги-Харада // Офтальмологические ведомости. - 2014. - Т. 7. - № 3. - С. 59-67. [Astakhov YS, Kuznetcova TI, Khripun KV, et al. The diagnostic challenges and effective treatment of the Vogt-Koyanagi-Harada disease. Ophthalmology Journal. 2014;7(3):59-67. (In Russ)]. doi: 10.17816/OV2014359-67.
  2. Батьков Е.Н. Имплантация эластичной заднекамерной интраокулярной линзы при несостоятельности капсульно-связачного аппарата хрусталика: автореф. дис. … канд. мед. наук. - М., 2010. - С. 19. [Batkov ЕN. Implantacia elastichnoj zadnekamernoj intraokularnoj linzi pri nesostoyatel’nosti kapsul’no-svyazachnogo apparata khrustalika [dissertation]. Мoscow; 2010:19. (In Russ).]
  3. Горбунова Н.Ю., Поздеева Н.А., Шленская О.В. Влияние степени инвазивности различных гипотензивных вмешательств на проницаемость гематоофтальмического барьера. VIII Всероссийская научно-практическая конференция с международным участием «Ф`доровские чтения - 2009». - М., 2009. - С. 207-208. [Gorbunova NY, Pozdeeva NA, Shlenskaya OV. The influence of penetration level of different antihypertensive operations to the permeability of blood-aqueous barrier. VIII Vserossiyskaya nauchno-prakticheskaya konferentsiya s mezhdunarodnym uchastiem Fedorovskie chteniya-2009 (Conference proceedings). Moscow; 2009:207-208. (In Russ).]
  4. Дроздова Е.А., Тарасова Л.Н., Теплова С.Н. Увеиты при ревматических заболеваниях. - М.: Т/Т, 2010. - С. 160. [Drozdova EA, Tarasova LN, Teplova SN. Uveitis in rheumatic diseases. Мoscow: Т/Т; 2010:160. (In Russ).]
  5. Дроздова Е.А., Ядыкина Е.В., Патласова Л.А. Анализ частоты развития осложнений при ревматических увеитах. Клиническая офтальмология. Заболевания заднего отдела глаза. - 2013. - № 1. - С. 2-4. [Drozdova EA, Yadykina EV, Patlasova LA. The analysis of sequela frequency in rheumatic uveitis. 2013;(1):2-4. (In Russ).]
  6. Кацнельсон Л.А., Танковский В.Э. Увеиты (Клиника. Лечение). - Изд. 2-е, перераб. и доп. - М.: 4-й филиал Воениздата, 2003. - С. 38. [Katsnel’son LA, Tankovskiy VE. Uveity. Uveitis (Clinical picture. Treatment). Izdanie 2nd, pererabotannoe i dopolnennoe. Moscow: 4-y filial Voenizdata; 2003:38. (In Russ).]
  7. Лебедев Л.В., Паштаев Н.П. Фемтосекундная сквозная кератопластика при кератоконусе // Офтальмохирургия. - 2012. - № 1. - С. 62-68. [Lebedev LV, Pashtaev NP. Femtosecond penetrating keratoplasty in keratoconus. Oftal’mokhirurgiya. 2012;(1):62-68. (In Russ).]
  8. Малюгин Б.Э., Паштаев Н.П., Поздеева Н.А., Фадеева Т.В. Оценка эффективности противовоспалительной терапии после факоэмульсификации у пациентов с возрастной макулярной дегенерацией // Офтальмохирургия. - 2010. - № 1. - С. 39-43. [Malyugin BE, Pashtaev NP, Pozdeeva NA, Fadeeva TV. The efficacy evaluation of postoperative treatment after phacoemulsification in patients with AMD. Oftal’mokhirurgiya. 2010;(1):39-43. (In Russ).]
  9. Панова И.Е., Дроздова Е.А. Увеиты: руководство для врачей. - М.: Медицинское информационное агентство, 2014. - 144 с. [Panova IE, Drozdova EA. Uveitis: Textbook for doctors. Moscow; 2014. 144 p. (In Russ).]
  10. Паштаев Н.П., Арсютов Д.Г. Использование медицинских клеев в хирургии прогрессирующей миопии и отслойки сетчатки // Офтальмохирургия. - 2009. - № 3. - С. 16-20. [Pashtaev NP, Arsyutov DG. The use of biological adhesive in progressive myopia and retinal detachment. Oftal’mokhirurgiya. 2009;(3):16-20. (In Russ).]
  11. Поздеева Н.А., Трунов А.Н., Горбенко О.М., и др. Оценка воспалительной реакции на имплантацию искусственной иридохрусталиковой диафрагмы по содержанию цитокинов в слёзной жидкости и по данным лазерной тиндалеметрии // Практическая медицина. - 2013. - № 7. - С. 144-150. [Pozdeeva NA, Trunov AN, Gorbenko OM, et al. The assessment of inflammation reaction to implantation of artificial iridolenticular diaphragm using the cytokine concentration and laser flare photometry. Prakticheskaya meditsina. 2013;(7):144-50. (In Russ).]
  12. Сенченко Н.Я., Щуко А.Г., Малышев В.В. Увеиты: руководство. - М.: ГЕОТАР-Медиа, 2010. - С. 45. [Senchenko NY, Shchuko AG, Malyshev VV. Uveitis: textbook. Moscow: GEOTAR-Media; 2010:45. (In Russ).]
  13. Сусликов С.В. Оптическая коррекция рефракционных нарушений у пациентов со стабилизированным кератоконусом. Современные технологии катарактальной и рефракционной хирургии - 2008: Сб. науч. - М., 2008. - С. 226-231. [Suslikov SV. Optical correction refractive errors in patients with stable keratoconus. Sovremennye tekhnologii kataraktal’noy i refraktsionnoy khirurgii; 2008: Sb. nauch. Moscow; 2008:226-231. (In Russ).]
  14. Сусликов С.В., Маслова Н.А., Паштаев Н.П. Динамика зрительных функций и биомеханических свойств роговицы после лазерной термокератопластики у пациентов с кератоконусом // Офтальмохирургия. - 2009. - № 4. - С. 4-9. [Suslikov SV, Maslova NA, Pashtaev NP. The evolution of visual functions and biochemical corneal characters after laser termoceratoplasticy in patients with keratoconus. Oftal’mokhirurgiya. 2009;(4):4-9. (In Russ).]
  15. Тахчиди Е.Х. Клинико-патогенетическое обоснование микроинвазивной непроникающей глубокой склерэктомии в хирургии первичной открытоугольной глаукомы: автореф. дис. … канд. мед. наук. - М., 2008. С. 25. [Takhchidi EK. Clinic-pathogenic feasibility of microinvasive nonpenetrating deep sclerectomy in primary open-angle glaucoma. [dissertation] Moscow; 2008: 25. (In Russ).]
  16. Туманян Э.Р., Иванова Е.С., Любимова Т.С., Субхангулова Э.А. Селективная лазерная активация трабекулы в коррекции офтальмотонуса у пациентов с первичной открытоугольной глаукомой // Офтальмохирургия. - 2010. - № 2. - С. 18-22. [Tumanyan ER, Ivanova ES, Lyubimova TS, Subkhangulova EA. Selective laser trabecula activation in correction of intraocular pressure in patients with primary open-angle glaucoma. Oftal’mokhirurgiya. 2010;(2):18-22. (In Russ).]
  17. Фролычев И.А., Поздеева Н.А. Витрэктомия с временной эндотомпонадой ПФОС с заменой на силиконовое масло в лечении послеоперационных эндофтальмитов // Вестник ОГУ. - 2013. - № 4. - С. 287-290. [Frolychev IA, Pozdeeva NA. Vitrectomy with temporary PFOS tamponade with the change to silicon oil in treatment of postsurgical endophtalmitis. Vestnik OGU. 2013;(4):287-90. (In Russ).]
  18. Balaskas K, Ballabeni P, Guex-Crosier Y. Retinal thickening in HLA-B27-associated acute anterior uveitis: evolution with time and association with severity of inflammatory activity. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2012;53(10):6171-7. doi: 10.1167/iovs.12-10026.
  19. Bernasconi O, Papadia M, Herbort CP. Sensitivity of laser flare photometry compared to slit-lamp cell evaluation in monitoring anterior chamber inflammation in uveitis. Int Ophthalmol. 2010;30(5):495-500. doi: 10.1007/s10792-010-9386-8.
  20. Biziorek B, Zarnowski T, Zagórski Z. Evaluation and monitoring of selected inflammation patterns in uveitis using laser tyndallometry. Klin Oczna. 2000;102(3):169-72.
  21. Bouchenaki N, Herbort CP. Fuchs’ Uveitis: Failure to Associate Vitritis and Disc Hyperfluorescence with the Disease is the Major Factor for Misdiagnosis and Diagnostic Delay. Middle East Afr J Ophthalmol. 2009;16(4):239-44.
  22. Chen MS, Chang CC, Ho TC, et al. Blood-aqueous barrier function in a patient with choroideremia. J Formos Med Assoc. 2010;109(2):167-71. doi: 10.1016/S0929-6646(10)60038-1.
  23. De Ancos E, Pittet N, Herbort CP. Quantitative measurement of inflammation in HLA-B27 acute anterior uveitis using the Kowa FC-100 laser flare-cell meter. Klin Monbl Augenheilkd. 1994;204(5):330-3. doi: 10.1055/s-2008-1035550.
  24. Fang W, Zhou H, Yang P, et al. Longitudinal quantification of aqueous flare and cells in Vogt-Koyanagi-Harada disease. Br J Ophthalmol. 2008;92(2):182-5. doi: 10.1136/bjo.2007.128967.
  25. Gao XB, Zhang XL, Chen G, et al. The blood-aqueous barrier changes after laser peripheral iridotomy or surgery peripheral iridectomy. Zhonghua Yan Ke Za Zhi. 2011;47(10):876-80.
  26. Gonzales CA, Ladas JG, Davis JL, Feuer WJ, Holland GN. Relationships between laser flare photometry values and complications of uveitis. Arch Ophthalmol. 2001; 119(12):1763-9. doi: 10.1001/archopht.119.12.1763.
  27. Guex-Crosier Y, Pittet N, Herbort CP. Evaluation of laser flare-cell photometry in the appraisal and management of intraocular inflammation in uveitis. Ophthalmology. 1994;101(4):728-35. doi: 10.1016/S0161-6420(13)31050-1.
  28. Guex-Crosier Y, Pittet N, Herbort CP. Sensitivity of laser flare photometry to monitor inflammation in uveitis of the posterior segment. Ophthalmology. 1995;102(4):613-21. doi: 10.1016/S0161-6420(95)30976-1.
  29. Guney E., Tugal-Tutkun I. Symptoms and signs of anterior uveitis. US Ophthalmic Review. 2013;6(1):33-37. doi: 10.17925/USOR.2013.06.01.33.
  30. Gupta A, Herbort CP, Khairallah M, Gupta V. Uveitis. Text and Imaging. New Delhi; 2009.
  31. Herbort CP, Guex-Crosier Y, de Ancos E, Pittet N. Use of laser flare photometry to assess and monitor inflammation in uveitis. Ophthalmology. 1997;104(1):64-71. doi: 10.1016/S0161-6420(97)30359-5.
  32. Holland GN. A reconsideration of anterior chamber flare and its clinical relevance for children with chronic anterior uveitis (an American Ophthalmological Society thesis). Trans Am Ophthalmol Soc. 2007; 105: 344-64.
  33. Ino-ue M, Azumi A, Shirabe H, Tsukahara Y, Yamamoto M. Laser flare intensity in diabetics: correlation with retinopathy and aqueous protein concentration. Br J Ophthalmol. 1994;78(9):694-7. doi: 10.1136/bjo.78.9.694.
  34. Jabs DA, Nussenblatt RB, Rosenbaum JT. Standardization of uveitis nomenclature for reporting clinical data. Results of the First International Workshop. Am J Ophthalmol. 2005;140(3):509-16. doi: 10.1016/j.ajo.2005.03.057.
  35. Kong X, Liu X, Huang X, et al. Damage to the blood-aqueous barrier in eyes with primary angle closure glaucoma. Mol Vis. 2010;16:2026-32.
  36. Konstantopoulou K, Del’Omo R, Morley AM, et al. A comparative study between clinical grading of anterior chamber flare and flare reading using the Kowa laser flare meter. Int Ophthalmol. 2015;35(5):629-33. doi: 10.1007/s10792-012-9616-3.
  37. Krüger H, Busch T. Correlation between laser tyndallometry and protein concentration in the anterior eye chamber. Ophthalmol. 1995;92(1):26-30.
  38. Küchle M. Laser tyndallometry in anterior segment diseases. Curr Opin Ophthalmol. 1994;5(4):110-6. doi: 10.1097/00055735-199408000-00016.
  39. Küchle M, Nguyen NX. Analysis of the blood aqueous barrier by measurement of aqueous flare in 31 eyes with Fuchs’ heterochromic uveitis with and without secondary open-angle glaucoma. Klin Monbl Augenheilkd. 2000;217(3):159-62. doi: 10.1055/s-2000-10339.
  40. Küchle M, Nguyen NX, Hannappel E, et al. Tyndallometry with the laser flare cell meter and biochemical protein determination in the aqueous humor of eyes with pseudoexfoliation syndrome. Ophthalmol. 1994;91:578-84.
  41. Küchle M, Nguyen NX, Naumann GO. Quantitative assessment of the blood-aqueous barrier in human eyes with malignant or benign uveal tumors. Am J Ophthalmol. 1994;117:521-8. doi: 10.1016/S0002-9394(14)70015-7.
  42. Nguyen NX, Küchle M, Naumann GO. Tyndallometry in monitoring therapy of sympathetic ophthalmia. Klin Monbl Augenheilkd. 1994;204(1):33-6. doi: 10.1055/s-2008-1035499.
  43. Ladas JG, Wheeler NC, Morhun PJ, Rimmer SO, Holland GN. Laser flare-cell photometry: methodology and clinical applications. Surv Ophthalmol. 2005;50:27-47. doi: 10.1016/j.survophthal.2004.10.004.
  44. Martin E, Martinez-de-la-Casa JM, Garcia-Feijoo J, et al. A 6-month assessment of bimatoprost 0.03 % vs timolol maleate 0.5 %: hypotensive efficacy, macular thickness and flare in ocular-hypertensive and glaucoma patients. Eye (Lond). 2007 Feb;21(2):164-8. doi: 10.1038/sj.eye.6702149.
  45. Mori M, Araie M. Effect of apraclonidine on blood-aqueous barrier permeability to plasma protein in man. Exp Eye Res. 1992;54(4):555-9. doi: 10.1016/0014-4835(92)90134-E.
  46. Murakami Y, Yoshida N, Ikeda Y, et al. Relationship between aqueous flare and visual function in retinitis pigmentosa. Am J Ophthalmol. 2015;159:958-63. doi: 10.1016/j.ajo.2015.02.001.
  47. Nguyen NX, Küchle M. Aqueous flare and cells in eyes with retinal vein occlusion - correlation with retinal fluorescein angiographic findings. Br J Ophthalmol. 1993;77: 280-3. doi: 10.1136/bjo.77.5.280.
  48. Oshika T, Araie M, Masuda K. Diurnal variation of aqueous flare in normal human eyes measured with laser flare-cell meter. Jpn J Ophthalmol. 1988;32:143-50.
  49. Rödinger ML, Hessemer V, Schmitt K, Schickel B. Reproducibility of in vivo determination of protein and particle concentration with the laser flare cell photometer. Ophthalmologe. 1993;90:742-5.
  50. Shah SM, Spalton DJ, Taylor JC. Correlations between laser flare measurements and anterior chamber protein concentrations. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1992;33:2878-84.
  51. Szepessy Z, Barsi А, Németh J. Macular Changes Correlate with the Degree of Acute Anterior Uveitis in Patients with Spondyloarthropathy. Ocul Immunol Inflamm. 2015; 24:1-6. doi: 10.3109/09273948.2015.1056810.
  52. Tappeiner C, Heinz C, Roesel M, Heiligenhaus A. Elevated laser flare values correlate with complicated course of anterior uveitis in patients with juvenile idiopathic arthritis. Acta Ophthalmol. 2011;89(6): e521-7. doi: 10.1111/j.1755-3768.2011.02162.x.
  53. Tugal-Tutkun I, Cingü K, Kir N, et al. Use of laser flare-cell photometry to quantify intraocular inflammation in patients with Behçet uveitis. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2008;246:1169-77. doi: 10.1007/s00417-008-0823-6.
  54. Tugal-Tutkun I, Herbort CP. Laser flare photometry: a noninvasive, objective, and quantitative method to measure intraocular inflammation. Int Ophthalmol. 2010;30:453-64. doi: 10.1007/s10792-009-9310-2.
  55. Wakefield D, Herbort CP, Tugal-Tutkun I, Zierhut M. Controversies in ocular inflammation and immunology laser flare photometry. Ocul Immunol Inflamm. 2010;18:334-40. doi: 10.3109/09273948.2010.512994.
  56. Wang L, Yamasita R, Hommura S. Corneal endothelial changes and aqueous flare intensity in pseudoexfoliation syndrome. Ophthalmologica. 1999;213(6):387-91. doi: 10.1159/000027460.
  57. Yamazaki Y, Miyamoto S, Sawa M. Effect of MK-507 on aqueous humor dynamics in normal human eyes. Jpn J Ophthalmol. 1994;38:92-6.
  58. Zhou MW, Wang W, Chen SD, Huang WB, Zhang XL. Disorder of blood-aqueous barrier following Ahmed Glaucoma Valve implantation. Chin Med J (Engl). 2013;126(6):1119-24.
  59. Ziai N, Dolan JW, Kacere RD, Brubaker RF. The effects on aqueous dynamics of PhXA41, a new prostaglandin F2 alpha analogue, after topical application in normal and ocular hypertensive human eyes. Arch Ophthalmol. 1993;111(10):1351-8. doi: 10.1001/archopht.1993.01090100059027.
  60. Zierhut M, Deuter C, Murray PI. Classification of Uveitis - Current Guidelines. European Ophthalmic Review. 2007:77-8.

Views

Abstract - 1314

PDF (Russian) - 561

PDF (English) - 112

PlumX


Copyright (c) 2016 Astakhov Y.S., Kuznetcova T.I.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.