Pro-inflammatory and anti-inflammatory cytokines in the pathogenesis of osteoarthritis

Cover Page


Cite item

Full Text

Abstract

The review summarizes the current understanding of the role of cytokines in the pathogenesis of osteoarthritis. The imbalance of pro-inflammatory and anti-inflammatory cytokines in the joint tissues leads to the development of inflammation and cartilage damage, which leads to progressive degeneration of the joints.

Full Text

Остеоартрит (ОА) — хроническое гетерогенное прогрессирующее заболевание суставов, характеризующееся деградацией экстрацеллюлярного матрикса хряща, которое сопровождается ремоделированием тканей сустава и проявляется болевым синдромом, развитием краевых остеофитов с нарушением функциональной активности и снижением качества жизни больных [1]. В России ОА поражено до 12 % населения, причем в последние годы вызванная им нетрудоспособность возросла в 3–5 раз [2]. По данным ВОЗ, в развитых странах количество пациентов с ОА, особенно в старших возрастных группах, постоянно растет. Среди причин инвалидности больных старше 50 лет данное заболевание входит в лидирующую группу [2].

Согласно последним данным участие иммун ной системы в развитии и прогрессировании ОА является одним из ключевых элементов патогенеза болезни [3]. Анализ постоянно растущего числа исследований указывает на особую роль сети цитокинов в патогенезе ОА. Во время прогрессирования ОА синтез и действие различных цитокинов могут изменяться в зависимости от продолжительности и тяжести заболевания [4]. Этот обзор представляет собой анализ современных знаний об иммунорегуляторной роли целого ряда цитокинов в патогенезе ОА.

Провоспалительные цитокины в патогенезе остеоартрита

Ключевую роль в процессе деградации хряща играют провоспалительные цитокины, которые синтезируются и воздействуют на большинство клеток-мишеней, находящихся в суставе, уже на самой ранней стадии воспаления. Среди многих представителей этой группы наибольшее значение в патогенезе ОА играют TNF-α, IL-1β, IL-2, IL-6, IL-15, IL-17 и IL-18.

Интерлейкин-1 бета (IL-1β) считается одним из ключевых цитокинов, участвующих в патогенезе ОА. Он индуцирует воспалительные реакции и катаболический эффект в суставном хряще, субхондральной кости, синовиальной оболочке, связках и других суставных тканях. Это один из 11 представителей семейства IL-1 (IL-1F) [5]. Его синтез мононуклеарами, присутствующими в суставе или проникшими туда в течение воспалительной реакции, оказывает значительное влияние на метаболизм хондроцитов, остеобластов, остеокластов и клеток синовиальной оболочки [6]. Во многих исследованиях показано, что пациенты с ОА имеют повышенный уровень IL-1β в сыворотке крови, синовиальной жидкости, синовиальной оболочке, хряще и в субхондральной кости [7]. Биологическая активация клеток с помощью IL-1β опосредована взаимодействием с мембранным рецептором 1-го типа (IL-1R1), который также может связываться другим агонистом IL-1α и, кроме того, рецепторным антагонистом IL-1ra. При этом передача активирующего сигнала внутрь клетки происходит только при сборке комплекса — IL-1β или IL1-α, IL-1R1 и акцессорный белок рецептора IL-1AcP. Затем происходит взаимодействие с адаптерным белком MyD88 с последующей активацией связанных с IL-1RI киназ IRAK4 и IRAK1. Это приводит к инициации МАР-киназных каскадов [10] и к активации транскрипционного фактора NF-κB, которая сопровождается экспрессией сотен генов, ответственных за продукцию других цитокинов, хемокинов, молекул адгезии, других медиаторов воспаления и ферментов [11].

При ОА у пациентов усиливается экспрессия рецептора IL-1R1 на поверхности хондроцитов и фибробластоподобных синовиоцитов, а также значительно повышается локальная концентрация IL-1β [9]. Повышение локального уровня ИЛ-1β смещает в тканях регулирующий баланс в пользу агониста, стимулируя развитие воспаления по механизму, схожему с другими воспалительными заболеваниями суставов.

Эффект IL-1β проявляется в его значительном влиянии на метаболизм клеток и внеклеточного матрикса (ECM) [12]. В ходе болезни первостепенное значение имеет постепенная потеря суставного хряща. Многие исследования подтверждают, что IL-1β блокирует синтез хондроцитами ECM-компонентов, препятствуя синтезу ключевых структурных белков, таких как коллаген типа II и протеогликаны [13]. IL-1β также стимулирует синтез металлопротеи наз (ММР), преимущественно MMP-1, MMP-3 и MMP-13, способствующих повреждению суставного хряща [14]. Кроме индукции ферментов семейства MMP, IL-1β влияет на продукцию хондроцитами металлопротеиназ ADAMTS, которые ответственны за протеолиз молекул аггрекана [15]. IL-1β вместе с TNF-α также стимулирует апоптоз хондроцитов [16]. Кроме того, в период обострения болезни IL-1β стимулирует образование активных форм кислорода (ROS), которые непосредственно повреждают суставной хрящ, что происходит на фоне подав ления экспрессии и продукции окислительных ферментов [17]. Помимо этих прямых эффектов IL-1β индуцирует продукцию других цитокинов, включая IL-6, IL-8 и фактор, вызывающий лейкемию (LIF), которые обусловливают аддитивные или синергические эффекты в катаболическом каскаде. Также IL-1β активирует ноцицепторы посредством усиления активности внутриклеточной киназы и индуцирует косвенную сенсибилизацию путем увеличения продукции кининов и простаноидов. Эта взаимосвязь указывает на возможность корреляции уровней цитокинов с интенсивностью болевого синдрома и рентгенографическими признаками прогрессирования заболевания у пациентов с ОА.

Фактор некроза опухолей альфа (TNF-α) вместе с IL-1β считается ключевым воспалительным цитокином, участвующим в патофизиологических процессах, происходящих в тканях суставов при ОА. Это один из 19 лигандов в суперсемействе факторов некроза опухоли (TNF) [18]. TNF-α секретируется теми же клетками в суставе, которые синтезируют IL-1β, и его повышенная концентрация наблюдается при обострении ОА в сыворотке крови, синовиальной жидкости, синовиальной оболочке, хряще и субхондральной кости [7]. Цитокин обладает способностью связываться с двумя изотипами мембранных рецепторов, расположенных на поверхности почти каждой клетки, TNF-R1 и TNF-R2 [19]. Рецептор TNF-R1 связывает растворимую и мембранную форму TNF-α, тогда как TNF-R2 — в основном мембранную форму [19]. TNF-R1 способен активировать два различных сигнальных комплекса: первый участвует в активации путей, конечные продукты которых стимулируют воспалительный ответ, секрецию цитокинов и продуцирование белков, предотвращающих апоптоз, тогда как второй включает сигнальную трансдукцию, приводящую к гибели клеток [20]. Связь TNF-α с TNF-R1 приводит к активации одного из наиболее важных путей транскрипции — NF-κB [21]. Другой важный сигнальный путь активируется киназой JNK, а также ERK и p38MAPK [20]. Образование комплекса II  сопровождается эндоцитозом активированного рецептора, изменением его конформации и акти вации FADD и прокаспазы 8, что приводит к гибели клеток [22]. В свою очередь, связывание mTNF-α с рецептором TNF-R2 приводит к включению TRAF2, имеющего решающее значение в трансдукции сигнала, а также TRAF3, c-IAP1 и c- IAP2, приводящему к активации JNK-киназы и транскрипционного фактора NF-κB [23]. Было доказано, что полиморфизм в гене TNF-R2 (M196R) может предопределять развитие OA путем увеличения количества рецепторных белков на поверхности хондроцитов, что обусловливает нарушение их функций из-за чрезмерной активации mTNF-α [24]. В ряде исследований обнаружен дополнительный лиганд, способный связываться как с TNF-R1, так и с TNF-R2, — програнулин (PGRN) [25]. PGRN — это фактор роста, обладающий противовоспалительными и иммуномодулирующими свойствами [26]. Было показано, что уровень PGRN значительно повышен у пациентов с ОА. Возможность конкурентного связывания PGRN с TNF-α-рецепторами, а также повышение его концентрации в течение болезни делает его естественным антагонистом TNF, блокирующим сигнальные пути TNF-α/TNF-R1 и TNFα/TNF-R2. Эффект TNF-α в большинстве случаев совпадает с действием IL-1β. Он является результатом активации одной и той же группы внутриклеточных реакций, которые увеличивают воспаление и катаболизм в суставных тканях [11]. TNF-α блокирует синтез хондроцитами протеогликановых компонентов и коллагена типа II [27]. Активированные хондроциты продуцируют MMP-1, MMP-3, MMP-13 и ADAMTS-4 [15]. TNF-α также индуцирует апоптоз хондроцитов и вызывает расстройство миграции хондрогенных клеток-предшественников, в результате чего снижается регенерационный потенциал хряща [28]. TNF-α стимулирует синтез других цитокинов, например IL-6, IL-8, RANTES и VEGF. [29]. Биологическое действие TNF как воспалительного цитокина зависит от его концентрации в тканях. При высоких концентрациях TNF выступает в роли медиатора повреждения хрящевой и костной ткани и развития системной воспалительной реакции. TNF-α, помимо мощных катаболических эффектов в патофизиологии ОА, активирует сенсорные нейроны непосредственно через рецепторы TNFR1 и TNFR2 и инициирует каскад воспалительных реакций, стимулируя продукцию IL-1, IL-6 и IL-8. При повышении продукции TNF-α развивается ноцицептивная и невропатическая боль. Анти-TNF-α-лечение антителом TNF позволяет уменьшить симптомы боли и воспаления при ОА на длительное время.

Интерлейкин-6 (IL-6) представляет собой полипотентный цитокин, активирующий иммунную систему и усиливающий воспалительный ответ. Синтез IL-6 в тканях пораженного сустава обычно происходит в ответ на IL-1β и TNF-α и в основном осуществляется хондроцитами, остеобластами, макрофагами и адипоцитами [30]. Повышение концентрации IL-6 наблюдается как в синовиальной жидкости, так и в сыворотке крови и положительно коррелирует с интенсивностью повреждений при рентгенологических исследованиях [31].

Существует два подтипа рецептора IL-6R, а именно мембранная форма mIL-6R и растворимая sIL-6R [31]. Активность IL-6 реализуется посредством его высокоаффинного связывания с мембранным рецептором, который экспрессируется на поверхности В-лимфоцитов и других клеток, последующего формирования комплекса субъединицы gp80 IL-6R с гомодимером трансмембранной молекулы gp130 и передачи сигнала внутрь клетки. В результате происходит активация STAT3, фосфорилирование MAPK и активация пути PI3 K/AKT [33]. Необходимо отметить, что полиморфизм гена (-174G/C), кодирующий IL-6, может предопределять скорость развития патологических изменений при ОА [34]. Воздействие IL-6 на суставной хрящ приводит к уменьшению продукции коллагена типа II и увеличению синтеза ферментов из группы ММРА [35]. Остеобласты, стимулированные IL-6, в свою очередь, становятся дополнительными источниками IL-1β, TNF-α и могут также продуцировать ММР, оказывая деструктивное влияние на расположенный вблизи субхондральной кости хрящ [37], что замыкает круг взаимосвязей между этими тремя провоспалительными цитокинами. В ряде работ отмечается активация афферентных нейронов при повышении уровня IL-6, что указывает на важную роль IL-6 в распространении боли при ОА [50].

Таким образом, IL-6 считается ключевым цитокином, вызывающим изменения в субхондральной кости [36]. Его влияние в значительной степени основано на повышении активности остеокластов и, следовательно, резорбции субхондральной кости. Это обстоятельство делает IL-6 наряду с IL-1β и TNF-α важной терапевтической мишенью при ревматоидном  артрите и остеоартрите.

Интерлейкин-15 (IL-15) регулирует дифференцировку и пролиферацию Т-клеток и NK-клеток [39]. Его повышенная концентрация была обнаружена в синовиальной жидкости больных ОА на ранних стадиях заболевания [40]. Было также показано, что повышенный уровень IL-15 в сыворотке коррелирует как с уровнем болевого синдрома, так и со степенью повреждений при рентгенографии [41]. Также было отмечено, что повышение его выработки может стимулировать секрецию определенных типов металлопротеиназ [40].

Семейство интерлейкинов-17 (IL-17) представляет собой группу провоспалительных цитокинов (IL-17A-F), которые могут взаимо действовать через пять типов рецепторов (IL-17RA-E) [42]. Источником IL-17 служат стимулированные CD4+-Т-клетки и тучные клетки, которые проникают в синовиальную мембрану через кровеносные сосуды [43]. Уровень IL-17 в сыворотке и синовиальной жидкости пациентов повышен и коррелирует с рентгенографическими признаками повреждений при ОА [44]. Было показано, что IL-17 ингибирует синтез протеогликанов хондроцитами и способствует продуцированию ферментов группы ММР [45]. Кроме того, IL-17 усиливает секрецию других цитокинов и соединений, влияющих на деструкцию хряща, таких как IL-1β, TNF-α, IL-6, NO и PGE2 [46]. В ряде работ было продемонстрировано, что полиморфизм гена IL-17A G-197A может быть ответственным за быстроту развития и выраженность проявлений ОА [47].

Интерлейкин-18 (IL-18) является еще одним  представителем семейства IL-1. Синтез IL-18 в суставе осуществляется хондроцитами, остео бластами и макрофагами [48]. Его повышенная концентрация наблюдается в синовиальной жидкости, синовиальной оболочке, хряще и сыворотке крови и показывает положительную корреляцию со степенью суставных повреждений при рентгенографических исследованиях [49]. Полиморфизм генов, кодирующих IL-18R и интерлейкин-18, может предопределять скорость развития дегенеративных изменений при ОА [50]. IL-18 действует на хондроциты, индуцируя усиление экспрессии IL-18R на их поверхности и избыточный синтез металлопротеиназ MMP-1, MMP-3 и MMP-13 [51]. В дополнение к увеличению концентрации ферментов, разрушающих хрящи, происходит ингибирование продуцирования протеогликанов, аггрекана и коллагена типа II; кроме того, хондроциты обнаруживают морфологические изменения, характерные для клеток, входящих в апоптоз [52].

Из описанного выше следует, что в патогенезе ОА участвует множество провоспалительных цитокинов, каждый из которых вносит свой вклад в эскалацию воспаления и за счет взаимной стимуляции усиливает его. В связи с этим в ближайшем будущем важным фактором при выборе оптимального курса терапии будет явля ется предварительный мониторинг цитокинового статуса у пациентов с ОА с целью определения актуальной терапевтической мишени.

Противовоспалительные цитокины в патогенезе остеоартрита

Основным представителем группы противовоспалительных цитокинов, участвующих в патогенезе ОА, является рецепторный антагонист интерлейкина 1 (IL-1) — IL-1ra, IL-10 и TGFβ.

Рецепторный антагонист интерлейкина 1 — IL-1ra

Процесс активации IL-1β в норме регулируется посредством различных механизмов, которые реализуются с участием других белков суперсемейства IL-1. Одним из важнейших белков этого семейства является IL-1ra, синтезирующийся практически теми же клетками, которые отвечают за синтез агонистов IL-1, но в отличие от них постоянно циркулирующий в крови на довольно высоком уровне. IL-1ra имеет более высокую константу ассоциации с IL-1R1, чем IL-1, и эффективно конкурирует с ними за связывание с этим рецептором. Взаимодействие IL-1ra с рецептором препятствует образованию рецепторного комплекса с IL-1AcP и не сопро вождается передачей активирующего сигнала. На тех же клетках присутствует рецептор IL-1R2, который является рецептором-ловушкой, так как не проявляет способности активировать внутриклеточный сигнал и, следовательно, также относится к факторам, регулирующим активность IL-1 [8].

Интерлейкин-10 (IL-10) считается основным противовоспалительным цитокином. После связывания его с рецептором IL-10R запускается каскад внутриклеточной передачи сигнала. Это приводит к активации тирозинкиназ JAK1 и TYK2, что, в свою очередь, акти вирует STAT3-путь, который стимулирует синтез продуктов генов, зависящих от IL-10 [59]. IL-10 представляет собой еще один цитокин, который проявляет хондропротекторный эффект в патогенезе ОА. Было доказано, что IL-10 участвует в стимулировании синтеза коллагена II типа и аггрекана и ответственен за ингибирование продукции металлопротеиназ семейства ММР [60]. Также IL-10 (аналогично IL-4) ингибирует апоптоз хондроцитов [61]. Эти свойства IL-10, вероятно, являются результатом стимуляции синтеза антагониста IL-1β (IL-1Ra) и тканевого ингибитора металлопротеиназ-1 (TIMP-1), а также факторов роста [62]. Было показано, что IL-10 активирует киназный путь SMAD1/SMAD5/SMAD8 и ERK1/2MAP и индуцирует экспрессию костных морфогенетических белков 2 и 6 (BMP-2, BMP-6), что приводит к стимуляции хондрогенеза [63].

Трансформирующий ростовой фактор бета (TGFβ) представляет собой индуктор анаболического ответа хондроцитов и в наибольшей концентрации секретируется в костном матриксе [65]. Это плейотропный цитокин с иммуносупрессивной активностью, стимулятор пролиферации фибробластов, инициатор синтеза матриксных белков. Он также усиливает пролиферацию и дифференцировку остеобластов и усиливает апоптоз остеокластов [65]. При ОА повышенная концентрация TGFβ обна руживается в синовиальной жидкости и хряще, что способствует продукции протеогликана и аггрекана [4].

Иммунорегуляторные цитокины в патогенезе остеоартрита

Интерлейкин-2 (IL-2) является важным иммунорегуляторным цитокином, стимулирующим пролиферацию и дифференцировку активированных Т-лимфоцитов в эффекторные Th-лимфоциты или цитотоксические Т-клетки. IL-2 может стимулировать крупные гранулярные лимфоциты, макрофаги и В-клетки. IL-2 секретируется Т-лимфоцитами CD4+, а также Т-клетками некоторых других субпопуляций лимфоцитов. IL-2 представляет собой мономерный гликопротеин с молекулярным весом 14,6 кД, включающий 133 аминокислотных остатка. По данным изоэлектрофокусирования данный белок представлен несколькими биологически активными формами, отличающимися друг от друга зарядом в связи с разной степенью гликозилирования молекул в посттрансляционный период. Было показано, что уровень IL-2 значительно повышен у пациентов с ОА в синовиальной жидкости и коррелирует с воспалительной активностью. При этом в сыворотке больных ОА на высоте обострения отмечается парадоксальное снижение уровня этого цитокина [7]. На синтез IL-2 при остеоартрите влияют определенные цитокины (IL-1β, IL-6, TNF-α). Продуцируемые другими классами клеток, они стимулируют продукцию IL-2 у преактивированных антигеном Т-клеток. Мишенями ответ ного регуляторного действия IL-2 являются различные субпопуляции Т-клеток, В-клетки, натуральные киллерные клетки, макрофаги, ответственные за воспаление и разрушение в суставных тканях. Все эти клетки имеют соответствующий рецептор для восприятия сигнала от IL-2, который усиливает В-клеточный рост и синтез иммуноглобулинов, интерферона, модулирует экспрессию рецептора IL-2. Дефекты IL-2 и его рецептора были найдены при выраженном костном ремоделировании у пациентов с ОА [11].

Основная функция интерлейкина-4 (IL-4) заключается в регуляции пролиферации и дифференцировки В-лимфоцитов. IL-4 представляет собой лиганд, биологическая активность которого опосредуется через рецепторную систему, предназначенную как для IL-4, так и для IL-13 [53]. После образования комплекса рецепторного типа внутриклеточная сигнальная трансдукция происходит путем постепенного фосфорилирования каскада IL-4Rα/JAK1/STAT3/STAT6, что приводит к экспрессии нескольких провоспалительных генов [54]. Полиморфизм генов, кодирующих как IL-4, так и IL-4Rα, может предопределять развитие ОА в суставах кистей рук, коленном и тазобедренном суставах [55]. Продукция IL-4 осуществляется Т-клетками (Th2), проникающими в сустав по кровеносным сосудам. Повышенная концентрация IL-4 наблюдается также в синовиальной жидкости и синовиальных клетках [56]. IL-4 ассоциируется с сильным хондрозащитным эффек том. Было обнаружено, что IL-4 оказывает ингибирующее действие на деградацию протеогликанов в суставном хряще путем ингибирования секреции металлопротеиназ MMP [57]. Кроме того, только IL-4 или в комбинации с IL-10 ингибирует апоптоз хондроцитов [57]. В дополнение к прямому снижению секреции воспалительных цитокинов происходит также снижение секреции других воспалительных медиаторов, таких как PGE2, COX-2, PLA2 и iNOS [57, 58].

Иммунорегуляторный эффект интерлейкина-13 (IL-13) в патогенезе ОА представляется наиболее важным в отношении фибробластов. Было показано, что IL-13 оказывает ингибирующее действие на синтез провоспалительных IL-1β, TNF-α и MMP-3 с одновременным увеличением уровня IL-1Ra. В ряде работ продемонстрировано, что IL-13 обладает способностью ингибировать провоспалительный эффект TNF-α относительно фибробластов у пациентов с ОА [64].

Заключение

Таким образом, остеоартрит представляет собой комплекс сложных процессов, ведущих к прогрессирующей дегенерации суставов и проявляющихся в виде деградации и деструкции хряща, разрушении структуры субхондральной кости и склерозировании, патологическом разрастании отдельных костных образований (остеофитоз), дистрофии связочного и сухожильного аппарата суставов и мышечной атрофии. В конечном счете вышеперечисленные процессы делают невозможным осуществлять важнейшую функцию опорно-двигательной системы — движение! Большое значение в развитие ОА имеют гормональный дисбаланс, активизация адипокинов при ожирении, нарушения углеводного и пуринового обмена при метаболическом синдроме. Однако на данный момент приоритетным в развитии ОА является воспаление, возникающее из-за очевидной дерегуляции в сети цитокинов и приводящее к нарушению баланса между воспалительными и противовоспалительными цитокинами. При этом отмечается существенный сдвиг в сторону воспалительных цитокинов. В суставах воспалительные цитокины оказывают в первую очередь разрушительное воздействие на суставной хрящ и субхондральную кость. Это многоуровневое воздействие, которое связано не только с индукцией апоптоза хондроцитов, но и с уменьшением синтеза ключевых компонентов хрящевой ткани, таких как протео гликаны, аггрекан и коллаген типа II. Кроме того, воспалительные цитокины способствуют усиленному синтезу и высвобождению многих протеолитических ферментов, в том числе металлопротеиназ семейства MMP и ADAMTS, которые разрушают суставной хрящ. Стоит отметить, что многие провоспалительные цитокины стимулируют в клетке синтез других цитокинов, тем самым каскадно усиливая воспаление. Действие противовоспалительных цитокинов оказывается недостаточным для ингибирования синтеза воспалительных цитокинов и их эффектов и зачастую только усиливает патологическое ремоделирование в суставных тканях.

×

About the authors

Kirill V. Raymuev

North-Western State Medical University named after I.I. Mechnikov

Author for correspondence.
Email: r-kn@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-0559-2899
SPIN-code: 1907-1669

кандидат медицинских наук доцент кафедры терапии и эндокринологии

Russian Federation, 41, Kirochnaya street, Saint-Petersburg, 191015

References

  1. Мазуров В.И., Трофимова А.С., Трофимов Е.А. Факторы риска и некоторые аспекты патогенеза остео артрита // Вестник СЗГМУ им. И.И. Мечникова. – 2016. – № 2. – С. 116–125. [Mazurov VI, Trofimova AS, Trofimov EA. Faktory riska I nekotorye aspekty patogeneza osteoartrita. Herald of North-Western State Medical University named after I.I. Mechnikov. 2016;(2):116-125. (In Russ.)]
  2. Лила А.М. Остеоартрит // Ревматология. Фармакотерапия без ошибок: руководство для врачей / Под ред. В.И. Мазурова, О.М. Лесняк. – М.: Е-ното, 2017. – 528 с. [Lila AM. Osteoartrit. In: Revmatologiya. Farmakoterapiya bez oshibok: rukovodstvo dlya vrachei. Ed by V.I. Mazurova, O.M. Lesnyak. Moscow: E-noto; 2017. 528 p. (In Russ.)]
  3. Haseeb А, Haggi T. Immunopathogenesis of osteoarthritis. Clin Immunol. 2013;146(3):185-196. doi: 10.1016/j.clim.2012.12.011.
  4. Goldring MB, Otero M. Inflammation in osteoarthritis. Current Opinion in Rheumatology. 2011;23(5):471-478. doi: 10.1097/BOR.0b013e328349c2b1.
  5. Dinarello CA. Overview of the interleukin-1 family of ligands and receptors. Semin Immunol. 2013;25(6):389-393. doi: 10.1016/j.smim.2013.10.001.
  6. de Lange-Brokaar BJ, Ioan-Facsinay A, van Osch GJ, et al. Synovial inflammation, immune cells and their cytokines in osteoarthritis: a review. Osteoarthritis Cartilage. 2012;20(12):1484-1499. doi: 10.1016/j.joca.2012.08.027.
  7. Sohn DH, Sokolove J, Sharpe O, et al. Plasma proteins present in osteoarthritic synovial fluid can stimulate cytokine production via Toll-like receptor 4. Arthritis Research and Therapy. 2012;14(1):R7. doi: 10.1186/ar3555.
  8. Boraschi D, Tagliabue A. The interleukin-1 receptor family. Seminars in Immunology. 2013;25(6):394-407. doi: 10.1016/j.smim.2013.10.023.
  9. Sadouk MB, Pelletier JP, Tardif G, et al. Human synovial fibroblasts coexpress IL-1 receptor type I and type II mRNA: the increased level of the IL-1 receptor in osteoarthritic cells is related to an increased level of the type I receptor. Laboratory Investigation. 1995;73(3):347-355.
  10. Kawai T, Akira S. TLR signaling. Seminars in Immunology. 2007;19(1):24-32.
  11. Roman-Blas JA, Jimenez SA. NF-κB as a potential therapeutic target in osteoarthritis and rheumatoid arthritis. Osteoarthritis and Cartilage. 2006;14(9):839-848. doi: 10.1016/j.joca.2006.04.008.
  12. Marcu KB, Otero M, Olivotto E, et al. NF-κB signaling: multiple angles to target OA. Current Drug Targets. 2010;11(5):599-613.
  13. Shakibaei M, Shulze-Tanzil G, John T, et al. Curcumin protects human chondrocytes from IL-1β-induced inhibition of collagen type II and β1-integrin expression and activition of caspase-3: an immunomorphological study. Annals of Anatomy. 2005;187(5-6):487-497.
  14. Самойлов В.В., Мироманов А.М., Самойлова С.И. Значение цитокинов в патогенезе остеоартроза // Забайкальский медицинский вестник. – 2014. – № 2. – С. 119–125. [Samoilov VV, Miromanov AM, Samoi lova SI. Znachenie tsitokinov v patogeneze osteo artroza. Zabaikal’skii meditsinskii vestnik. 2014;(2):199-125. (In Russ.)]
  15. Verma P, Dalal K. ADAMTS-4 and ADAMTS-5: key enzymes in osteoarthritis. Journal of Cellular Biochemistry. 2011;112(12):3507-3514. doi: 10.1002/jcb.23298.
  16. López-Armada MJ, Carames B, Lires Dean M, et al. Cytokines, tumor necrosis factor-α and interleukin-1β, differentially regulate apoptosis in osteoarthritis cultured human chondrocytes. Osteoarthritis and Cartilage. 2006;14(7):660-669. doi: 10.1016/j.joca.2006.01.005.
  17. Afonso V, Champy R, Mitrovic D, et al. Reactive oxygen species and superoxide dismutases: role in joint diseases. Joint Bone Spine. 2007;74(4):324-329. doi: 10.1016/j.jbspin.2007.02.002.
  18. Bodmer JL, Schneider P, Tshopp J. The molecular architecture of the TNF superfamily. Trends in Biochemical Sciences. 2002;27(1):19-26.
  19. MacEwan DJ. TNF receptor subtype signalling: differences and cellular consequences. Cellular Signalling. 2002;14(6):477-492.
  20. Haas TL, Emmerich CH, Gerlach B, et al. Recruitment of the linear ubiquitin chain assembly complex stabilizes the TNF-R1 signaling complex and Is required for TNF-mediated gene induction. Molecular Cell. 2009;36(5):-844. doi: 10.1016/j.molcel.2009.10.013.
  21. Varfolomeev E, Goncharov T, Fedorova AV, et al. c-IAP1 and c-IAP2 are critical mediators of tumor necrosis factor α (TNFα)-induced NF-κB activation. Journal of Biological Chemistry. 2008;283(36):24295-24299. doi: 10.1074/jbc.C800128200.
  22. Micheau O, Tshopp J. Induction of TNF receptor I-mediated apoptosis via two sequential signaling complexes. Cell. 2003;114(2):181-190.
  23. Rodríguez M, Cabal-Hierro L, Carcedo MT, et al. NF-κB signal triggering and termination by tumor necrosis factor receptor 2. Journal of Biological Che mistry. 2011;286(26):22814-22824. doi: 10.1074/jbc.M111.225631.
  24. Oregón-Romero E, Vázquez-Del Mercado M, Navarro-Hernández RE, et al. Tumor necrosis factor receptor 2 M196R polymorphism in rheumatoid arthritis and osteoarthritis: relationship with sTNFR2 levels and clinical features. Rheumatology International. 2006;27(1):53-59. doi: 10.1007/s00296-006-0159-7.
  25. Liu CJ, Bosch X. Progranulin: a growth factor, a novel TNFR ligand and a drug target. Pharmacology & Therapeutics. 2012;133(1):124-132. doi: 10.1016/j.pharmthera.2011.10.003.
  26. Jian J, Konopka J, Liu C. Insights into the role of progranulin in immunity, infection, and inflammation. Journal of Leukocyte Biology. 2013;93(2):199-208. doi: 10.1189/jlb.0812429.
  27. Séguin CA, Bernier SM. TNF-alpha suppresses link protein and type II collagen expression in chondrocytes: role of MEK1/2 and NF-kappaB signaling pathways. Journal of Cellular Physiology. 2003;197(3):356-369. doi: 10.1002/jcp.10371.
  28. Ye Z, Chen Y, Zhang R, et al. c-Jun N-terminal kinase — c-Jun pathway transactivates Bim to promote osteoarthritis. Canadian Journal of Physiology and Pharmacology. 2014;92(2):132-139. doi: 10.1139/cjpp-2013-0228.
  29. Honorati MC, Cattini L, Facchini A. VEGF production by osteoarthritic chondrocytes cultured in micromass and mulated by IL-17 and TNF-α. Connective Tissue Research. 2007;48(5):239-245. doi: 10.1080/ 03008200701541767.
  30. Distel E, Cadoudal T, Durant S, et al. The infrapatellar fat pad in knee osteoarthritis: an important source of interleukin-6 and its soluble receptor. Arthritis and Rheumatism. 2009;60(11):3374-3377. doi: 10.1002/art.24881.
  31. Stannus O, Jones G, Cicuttini F, et al. Circulating levels of IL-6 and TNF-α are associated with knee radiographic osteoarthritis and knee cartilage loss in older adults. Osteoarthritis and Cartilage. 2010;18(11):1441-1447. doi: 10.1016/j.joca.2010.08.016.
  32. Rose-John S, Neurath MF. IL-6 trans-signaling: the heat is on. Immunity. 2004;20(1):2-4.
  33. Kamimura D, Isihara K, Hirano T. IL-6 signal transduction and its physiological roles: the signal orchestration model. Reviews of Physiology, Biochemistry and Pharmacology. 2003;149:1-38. doi: 10.1007/s10254-003-0012-2.
  34. Honsawek S, Deepaisarnsakul B, Tanavalee A, et al. Association of the IL-6 -174G/C gene polymorphism with knee osteoarthritis in a Thai population. Genetics and Molecular Research. 2011;10(3):1674-1680.
  35. Porée B, Kypriotou M, Chadjichristos C, et al. Interleukin-6 (IL-6) and/or soluble IL-6 receptor down-regulation of human type II collagen gene expression in articular chondrocytes requires a decrease of Sp1·Sp3 ratio and of the binding activity of both factors to the COL2A1 promoter. Journal of Biological Chemistry. 2008;283(8):4850-4865. doi: 10.1074/jbc.M706387200.
  36. Steeve KT, Marc P, Sandrine T, et al. RANKL, TNF-alpha/IL-1: interrelations in bone resorption pathophysiology. Cytokine and Growth Factor Reviews. 2004;15(1):49-60.
  37. Sakao K, Takahashi KA, Arai Y, et al. Osteoblasts derived from osteophytes produce interleukin-6, interleukin-8, and matrix metalloproteinase-13 in osteoarthritis. Journal of Bone and Mineral Metabolism. 2009;27(4):412-423. doi: 10.1007/s00774-009-0058-6.
  38. de Hooge ASK, van de Loo FAJ, Bennink MB. Male IL-6 gene knock out mice developed more advanced osteoarthritis upon aging. Osteoarthritis and Cartilage. 2005;13(1):66-73. doi: 10.1016/j.joca.2004.09.011.
  39. Baslund B,Tvede N, Danneskiold-Samsoe B, et al Targeting interleukin-15 in patients with rheumatoid arthritis: a proof-of-concept study. Arthritis and Rheumatism. 2005;52(9):2686-2692. doi: 10.1002/art.21249.
  40. Scanzello CR, Umoh E, Pessler F, et al. Local cytokine profiles in knee osteoarthritis: elevated synovial fluid interleukin-15 differentiates early from end-stage disease. Osteoarthritis and Cartilage. 2009;17(8):1040-1048. doi: 10.1016/j.joca.2009.02.011.
  41. Sun JM, Sun LZ, Liu J. Serum interleukin-15 levels are associated with severity of pain in patients with knee osteoarthritis. Disease Markers. 2013;35(3):203-206. doi: 10.1155/2013/176278.
  42. Chang SH, Dong C. Signaling of interleukin-17 fa mily cytokines in immunity and inflammation. Cell Signaling. 2011;23(7):1069-1075. doi: 10.1016/j.cellsig.2010.11.022.
  43. Korn T, Bettelli E, Oukka M, et al. IL-17 and Th17 cells. Annual Review of Immunology. 2009;27:485-517. doi: 10.1146/annurev.immunol.021908.132710.
  44. Chen B, Deng Y, Tan Y. Association between severity of knee osteoarthritis and serum and synovial fluid interleukin 17 concentrations. Journal of International Medical Research. 2014;42(1):138-144. doi: 10.1177/0300060513501751.
  45. Benderdour M, Tardif G, Pelletier JP, et al. Interleukin 17 (IL-17) induces collagenase-3 production in human osteoarthritic chondrocytes via AP-1 dependent activation: differential activation of AP-1 members by IL-17 and IL-1β. Journal of Rheumatology. 2002;29(6):1262-1272.
  46. Honorati MC, Bovara M, Cattini L, et al. Contribution of interleukin 17 to human cartilage degradation and synovial inflammation in osteoarthritis. Osteoarthritis and Cartilage. 2002;10(10):799-807.
  47. Han L, Lee HS, Yoon JH, et al. Association of IL-17A and IL-17F single nucleotide polymorphisms with susceptibility to osteoarthritis in a Korean population. Gene. 2014;533(1):119-122. doi: 10.1016/j.gene.2013.09.113.
  48. Möller B, Kukoc-Zivojnov N, Kessler U, et al. Interferon-gamma induces expression of interleukin-18 binding protein in fibroblast-like synoviocytes. Rheumatology. 2003;42(3):442-445.
  49. Denoble AE, Huffman KM, Stabler TV, et al. Uric acid is a danger signal of increasing risk for osteoarthritis through inflammasome activation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2011;108(5):2088-2093. doi: 10.1073/pnas.1012743108.
  50. Hulin-Curtis SL, Bidwell JL, Perry MJ. Evaluation of IL18 and IL18R1 polymorphisms: genetic susceptibility to knee osteoarthritis. International Journal of Immunogenetics. 2012;39(2):106-109. doi: 10.1111/j.1744-313X.2011.01060.x.
  51. Dai SM, Shan ZZ, Nishioka K, et al. Implication of interleukin 18 in production of matrix metalloproteinases in articular chondrocytes in arthritis: direct effect on chondrocytes may not be pivotal. Annals of the Rheumatic Diseases. 2005;64(5):735-742. doi: 10.1136/ard.2004.026088.
  52. John T, Kohl B, Mobasheri A, et al. Interleukin-18 induces apoptosis in human articular chondrocytes. Histology and Histopathology. 2007;22(5):469-482. doi: 10.14670/HH-22.469.
  53. Mueller TD, Zhang JL, Sebald W, et al. Structure, binding, and antagonists in the IL-4/IL-13 receptor system. Biochimica et Biophysica Acta-Molecular Cell Research. 2002;1592(3):237-250.
  54. Bhattacharjee A, Shukla M, Yakubenko VP, et al. IL-4 and IL-13 employ discrete signaling pathways for target gene expression in alternatively activated monocytes/macrophages. Free Radical Biology & Medicine. 2013;54:1-16. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2012.10.553.
  55. Yigit S, Inanir A, Tekcan A, et al. Significant association of interleukin-4 gene intron 3 VNTR polymorphism with susceptibility to knee osteoarthritis. Gene. 2014;537(1):6-9. doi: 10.1016/j.gene.2013.12.060.
  56. Wagner S, Fritz P, Einsele H, et al. Evaluation of synovial cytokine patterns in rheumatoid arthritis and osteo arthritis by quantitative reverse transcription polymerase chain reaction. Rheumatology International. 1997;16(5):191-196.
  57. van Meegeren ME, Roosendaal G, Jansen NW, et al. IL-4 alone and in combination with IL-10 protects against blood-induced cartilage damage. Osteoarthritis and Cartilage. 2012;20(7):764-772. doi: 10.1016/j.joca.2012.04.002.
  58. Yorimitsu M, Nishida K, Shimizu A, et al. Intra-articular injection of interleukin-4 decreases nitric oxide production by chondrocytes and ameliorates subsequent destruction of cartilage in instability-induced osteoarthritis in rat knee joints. Osteoarthritis and Cartilage. 2008;16(7):764-771. doi: 10.1016/ j.joca.2007.11.006.
  59. Donnelly RP, Dickensheets H, Finbloom DS. The interleukin-10 signal transduction pathway and regulation of gene expression in mononuclear phagocyte s. Journal of Interferon and Cytokine Research. 1999;19(6):563-573. doi: 10.1089/107999099313695.
  60. Wang Y, Lou S. Direct protective effect of interleukin-10 on articular chondrocytes in vitro. Chinese Medical Journal. 2001;114(7):723-725.
  61. John T, Müller RD, Oberholzer A, et al. Interleukin-10 modulates pro-apoptotic effects of TNF-α in human arti cular chondrocytes in vitro. Cytokine. 2007;40(3):226-234. doi: 10.1016/j.cyto.2007.10.002.
  62. Lacraz S, Nicod LP, Chicheportiche R, et al. IL-10 inhibits metalloproteinase and stimulates TIMP-1 production in human mononuclear phagocytes. Journal of Clinical Investigation. 1995;96(5):2304-2310. doi: 10.1172/JCI118286.
  63. Umulis D, O’Connor MB, Blair SS. The extracellular regulation of bone morphogenetic protein signaling. Development. 2009;136(22):3715-3728. doi: 10.1242/dev.031534.
  64. Yeh LA, Augustine AJ, Lee P, et al. Interleukin-4, an inhibitor of cartilage breakdown in bovine articular cartilage explants . Journal of Rheumatology. 1995;22(9):1740-1746.
  65. Crane JL, Cao XJ. Bone marrow mesenchymal stem cells and TGF-beta signaling in bone remodeling. Clin Invest. 2014;124:466-472. doi: 10.1172/JCI70050.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2018 Raymuev K.V.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 71733 от 08.12.2017.


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies