Современный взгляд на процессы механотрансдукции в здоровой и поврежденной коже: обзор литературы

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Вопросы изучения механотрансдукции в кожном покрове в настоящее время интересуют многих исследователей, особенно занимающихся проблемами качественного оперативного лечения ран мягких тканей. От понимания процессов передачи и преобразования механических стимулов, поступающих к клеткам кожи, в цепочки биохимических реакций зависит возможность разработки новых способов лечения различных патологий покровных тканей, в том числе раневых дефектов. В обзоре представлены основные этапы развития научного знания о механотрансдукции, описаны особенности ее процессов в покровных тканях, а также известные медиаторы и сигнальные пути, реализующие передачу механических воздействий от поверхности клетки к ее ядру. Предложены возможные направления использования механотрансдукции в медицинской практике. Описаны изменения, происходящие на клеточном уровне при «перекодировке» механических сигналов в хронических ранах. Рассмотрена перспектива применения механотрансдукции при растяжении кожного покрова в процессе лечения раневых дефектов мягких тканей.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Илья Викторович Павленко

Университетская клиника Приволжского исследовательского медицинского университета

Email: ilyapavlenko@bk.ru
ORCID iD: 0000-0003-0509-5988
SPIN-код: 1549-3861

канд. мед. наук

Россия, Нижний Новгород

Виталий Николаевич Гостев

Университетская клиника Приволжского исследовательского медицинского университета

Email: combustiolog@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-7028-4438

заведующий вторым ожоговым отделением (детское) 

Россия, Нижний Новгород

Кирилл Валерьевич Андрюхин

Университетская клиника Приволжского исследовательского медицинского университета

Автор, ответственный за переписку.
Email: andrychin@mail.ru

студент 4 курса

Россия, 603005, Нижний Новгород, пл. Минина и Пожарского, д. 10/1

Список литературы

  1. Ермаков А.С. Теория тенсегрити и пространственная организация живого // Ontogenez. 2018. Т. 49, № 2. С. 101–115. doi: 10.7868/S0475145018020039
  2. Brézulier D., Pellen-Mussi P., Sorel O., Jeanne S. La mécanobiologie osseuse, un domaine émergeant: revue de littérature [Bone mechanobiology, an emerging field: a review] // Orthod Fr. 2018. Vol. 89, No. 4. Р. 343–353. (In French). doi: 10.1051/orthodfr/2018034
  3. Uzer G., Fuchs R.K., Rubin J., Thompson W.R. Concise review: plasma and nuclear membranes convey mechanical information to regulate mesenchymal stem cell lineage // Stem Cells. 2016. Vol. 34, No. 6. P. 1455–1463. doi: 10.1002/stem.2342
  4. Потехина Ю.П., Филатова А.И., Трегубова Е.С., Мохов Д.Е. Механосенситивность различных клеток: возможная роль в регуляции и реализации эффектов физических методов лечения [обзор] // Современные технологии в медицине. 2020. Т. 12, № 4. С. 77–90. doi: 10.17691/stm2020.12.4.10
  5. Unsere Körperform und das physiologische Problem ihrer Entstehung. Lpz., 1874.
  6. Wolff J. Das Gesetz der Transformation der Knochen, Berlin: Hirschwald,1892.
  7. Серов В.В., Шехтер А.Б. Соединительная ткань. М.: Медицина, 1981.
  8. Ingber D.E. Tensegrity I. Cell structure and hierarchical systems Biology // J. Cell Sci. 2003. Vol. 116, No. Pt 7. P. 1157–1173. doi: 10.1242/jcs.00359
  9. Beloussov L.V., Grabovsky V.I. Morphomechanics: goals, basic experiments and models // Int. J. Dev. Biol. 2006. Vol. 50, No. 2–3. P. 81–92. doi: 10.1387/ijdb.052056lb
  10. Ingber D.E., Wang N., Stamenovic D. Tensegrity, cellular biophysics, and the mechanics of living systems // Rep. Prog. Phys. 2014. Vol. 77, No. 4. Р. 046603. doi: 10.1088/0034-4885/77/4/046603
  11. Hamant O., Inoue D., Bouchez D. et al. Are microtubules tension sensors? // Nat. Commun. 2019. Vol. 10, No. 1. Р. 2306. doi: 10.1038/s41467-019-10207-y
  12. Beloussov L.V., Lakirev A.V., Naumidi I.I., Novoselov V.V. Effects of relaxation of mechanical tensions upon the early morphogenesis of Xenopus laevis embryos // Int. J. Dev. Biol. 1990. Vol. 34, No. 4. Р. 409–419.
  13. Beloussov L.V., Luchinskaya N.N., Ermakov A.S., Glagoleva N.S. Gastrulation in amphibian embryos, regarded as a succession of biomechanical feedback events // Int. J. Dev. Biol. 2006. Vol. 50, No. 2–3. Р. 113–122. doi: 10.1387/ijdb.052057lb
  14. Beloussov L.V. Morphomechanics of Development. Springer; 2015. doi: 10.1007/978-3-319-13990-6
  15. Farge E. Mechanical induction of Twist in the Drosophila foregut/stomodeal primordium // Curr. Biol. 2003. Vol. 13, No. 16. Р. 1365–1377. doi: 10.1016/s0960-9822[03]00576-1
  16. Mitrossilis D., Röper J.C., Roy D.L. et al. Mechanotransductive cascade of Myo-II-dependent mesoderm and endoderm invaginations in embryo gastrulation // Nat. Commun. 2017. No. 8. Р. 13883. doi: 10.1038/ncomms13883
  17. Dupont S., Morsut L., Aragona M. et al. Role of YAP/TAZ in mechanotransduction // Nature. 2011. Vol. 474, No. 7350. Р. 179–183. doi: 10.1038/nature10137
  18. Aragona M., Sifrim A., Malfait M. et al. Mechanisms of stretch-mediated skin expansion at single-cell resolution // Nature. 2020. Vol. 584, No. 7820. Р. 268–273. doi: 10.1038/s41586-020-2555-7
  19. Паршиков В.В., Логинов В.И., Бабурин А.Б., Касимов Р.Р. Полувековой путь развития профилактики инфекционных осложнений в послеоперационных ранах // Медицинский вестник Башкортостана. 2017. Т. 12, № 1(67). С. 82–93.
  20. Bishop J.E., Rhodes S., Laurent G.J. et al. Increased collagen synthesis and decreased collagen degradation in right ventricular by pressure overload // Cardiovasc. Res. 1994. Vol. 28, No. 10. Р. 1581–1585. doi: 10.1093/cvr/28.10.1581
  21. Joodaki H., Panzer M.B. Skin mechanical properties and modeling: A review // Proc. Inst. Mech. Eng. H. 2018. Vol. 232, No. 4. Р. 323–343. doi: 10.1177/0954411918759801
  22. Huang C., Leavitt T., Bayer L.R., Orgill D.P. Effect of negative pressure wound therapy on wound healing // Curr. Probl. Surg. 2014. Vol. 51, No. 7. Р. 301–331. doi: 10.1067/j.cpsurg.2014.04.001
  23. Huang C., Holfeld J., Schaden W. et al. Mechanotherapy: revisiting physical therapy and recruiting mechanobiology for a new era in medicine // Trends Mol. Med. 2013. Vol. 19, No. 9. Р. 555–564. doi: 10.1016/j.molmed.2013.05.005
  24. Dymarek R., Halski T., Ptaszkowski K. et al. Extracorporeal shock wave therapy as an adjunct wound treatment: a systematic review of the literature // Ostomy. Wound Management. 2014. Vol. 60, No. 7. Р. 26–39.
  25. Holbrook K.A., Smith L.T., Elias S. Prenatal diagnosis of genetic skin disease using fetal skin biopsy samples // Arch. Dermatol. 1993. Vol. 129, No. 11. Р. 1437–1454.
  26. Петров К.Б. Концепция миовисцерофасциальных связей внутренних органов // Мануальная медицина. 1994. № 8. С. 5–11.
  27. Mohammed D., Versaevel M., Bruyère C. et al. Innovative tools for mechanobiology: unraveling outside-in and inside-out mechanotransduction // Front. Bioeng. Biotechnol. 2019. Vol. 7. Р. 162. doi: 10.3389/fbioe.2019.00162
  28. Marjoram R.J., Lessey E.C., Burridge K. Regulation of RhoA activity by adhesion molecules and mechanotransduction // Curr. Mol. Med. 2014. Vol. 14, No. 2. Р. 199–208. doi: 10.2174/1566524014666140128104541
  29. Holbrook K.A., Odland G.F. Regional differences in the thickness [cell layers] of the human stratum corneum: an ultrastructural analysis // J. Invest. Dermatol. 1974. Vol. 62, No. 4. Р. 415–422. doi: 10.1111/1523-1747.ep12701670
  30. Wang J.H., Lin J.S. Cell traction force and measurement methods // Biomech. Model. Mechanobiol. 2007. Vol. 6, No. 6. Р. 361–371. doi: 10.1007/s10237-006-0068-4
  31. Duscher D., Maan Z.N., Wong V.W. et al. Mechanotransduction and fibrosis // J. Biomech. 2014. Vol. 47, No. 9. Р. 1997–2005. doi: 10.1016/j.jbiomech.2014.03.031
  32. Boeri L., Albani D., Raimondi M.T., Jacchetti E. Mechanical regulation of nucleocytoplasmic translocation in mesenchymal stem cells: characterization and methods for investigation // Biophys. Rev. 2019. Vol. 11, No. 5. Р. 817–831. doi: 10.1007/s12551-019-00594-3
  33. Eming S.A., Martin P., Tomic-Canic M. Wound repair and regeneration: mechanisms, signaling, and translation // Sci. Transl. Med. 2014. Vol. 6, No. 265. Р. 265–266. doi: 10.1126/scitranslmed.3009337
  34. Chiquet M. Regulation of extracellular gene expression by mechanical stress // Matrix Biol. 1999. Vol. 18, No. 5. Р. 417–426. doi: 10.1016/s0945-053x(99)00039-6
  35. Grinnell F. Fibroblast-collagen-matrix contraction: growth-factor signaling and mechanical loading // Trends Cell. Biol. 2000. Vol. 10, No. 9. Р. 362–365. doi: 10.1016/s0962-8924(00)01802-x
  36. Grinnell F. Fibroblast biology in three-dimensional collagen matrices // Trends Cell. Biol. 2003. Vol. 13, No. 5. Р. 264–269. doi: 10.1016/s0962-8924(03)00057-6
  37. On the anatomy and physiology of the skin. I. The cleavability of the cutis. (Translated from Langer, K. (1861). Zur Anatomie und Physiologie der Haut. I. Uber die Spaltbarkeit der Cutis. Sitzungsbericht der Mathematisch-naturwissenschaftlichen Classe der Kaiserlichen Academie der Wissenschaften, 44, 19.) // Br. J. Plast. Surg. 1978. Vol. 31, No. 1. Р. 3–8.
  38. Максимова Н.В., Люндуп А.В., Любимов Р.О. и др. Патофизиологические аспекты процесса заживления ран в норме и при синдроме диабетической стопы // Вестник Российской академии медицинских наук. 2014. Т. 69, № 11–12. С. 110–117. doi: 10.15690/vramn.v69i11-12.1192
  39. Комелягина Е.Ю., Анциферов М.Б. Особенности заживления ран у больных с синдромом диабетической стопы // Эндокринология: Новости. Мнения. Обучение. 2018. Т. 7, № 4. С. 42–47. doi: 10.24411/2304-9529-2018-14005
  40. Gurtner G.C., Dauskardt R.H., Wong V.W. et al. Improving cutaneous scar formation by controlling the mechanical environment: Large animal and phase I studies // Ann. Surg. 2011. Vol. 254, No. 2. Р. 217–225. doi: 10.1097/SLA.0b013e318220b159
  41. Rosińczuk J., Taradaj J., Dymarek R., Sopel M. Mechanoregulation of wound healing and skin homeostasis // Biomed Res. Int. 2016. Vol. 2016. Р. 3943481. doi: 10.1155/2016/3943481
  42. Jaalouk D.E., Lammerding J. Mechanotransduction gone awry // Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2009. Vol. 10, No. 1. Р. 63–73. doi: 10.1038/nrm2597
  43. Пятаков С.Н., Порханов В.А., Бенсман В.М. и др. Изучение клинической эффективности метода дозированной тканевой дистракции при лечении дефектов мягких тканей различной этиологии в области нижних конечностей // Инновационная медицина Кубани. 2019. Т. 14, № 2. С. 36–44. doi: 10.35401/2500-0268-2019-14-2-36-44
  44. Kenny F.N., Connelly J.T. Integrin-mediated adhesion and mechano-sensing in cutaneous wound healing // Cell Tissue Res. 2014. Vol. 360, No. 3. Р. 571–582. doi: 10.1007/s00441-014-2064-9
  45. Ingber D.E. Cellular mechanotransduction: Putting all the pieces together again // FASEB J. 2006. Vol. 20, No. 7. Р. 811–827. doi: 10.1096/fj.05-5424rev
  46. Sukharev S., Betanzos M., Chiang C.S., Guy H.R. The gating mechanism of the large mechanosensitive channel MscL // Nature. 2001. Vol. 409, No. 6821. Р. 720–724. doi: 10.1038/35055559
  47. Liarte S., Bernabé-García Á., Nicolás F.J. Role of TGF-β in skin chronic wounds: a keratinocyte perspective // Cells. 2020. Vol. 9, No. 2. Р. 306. doi: 10.3390/cells9020306
  48. Walton K.L., Johnson K.E., Harrison C.A. Targeting TGF-β Mediated SMAD Signaling for the Prevention of Fibrosis // Front. Pharmacol. 2017. Vol. 8. Р. 461. doi: 10.3389/fphar.2017.00461
  49. Coentro J.Q., May U., Prince S. et al. Adapting the Scar-in-a-Jar to skin fibrosis and screening traditional and contemporary anti-fibrotic therapies // Front. Bioeng. Biotechnol. 2021. Vol. 9. Р. 756399. doi: 10.3389/fbioe.2021.756399
  50. Santiago B., Gutierrez-Cañas I., Dotor J. et al. Topical application of a peptide inhibitor of transforming growth factor-beta1 ameliorates bleomycin-induced skin fibrosis // J. Invest. Dermatol. 2005. Vol. 125, No. 3. Р. 450–455. doi: 10.1111/j.0022-202X.2005.23859.x
  51. Buscemi L., Ramonet D., Klingberg F. et al. The single-molecule mechanics of the latent TGF-β1 complex // Curr. Biol. 2011. Vol. 21, No. 24. Р. 2046–2054. doi: 10.1016/j.cub.2011.11.037
  52. Occleston NL, Laverty HG, O’Kane S, Ferguson MW. Prevention and reduction of scarring in the skin by Transforming Growth Factor beta 3 [TGFbeta3]: From laboratory discovery to clinical pharmaceutical // J. Biomater. Sci. Polym. Ed. 2008. Vol. 19, No. 8. Р. 1047–1063. doi: 10.1163/156856208784909345
  53. Durani P., Occleston N., O’Kane S., Ferguson M.W. Avotermin: a novel antiscarring agent // Int. J. Low Extrem. Wounds. 2008. Vol. 7, No. 3. P. 160–168. doi: 10.1177/1534734608322983
  54. Ferguson M.W., Duncan J., Bond J. et al. Prophylactic administration of avotermin for improvement of skin scarring: Three double-blind, placebo-controlled, phase I/II studies // Lancet. 2009. Vol. 373, No. 9671. Р. 1264–1274. doi: 10.1016/S0140-6736(09)60322-6
  55. Wong V.W., Rustad K.C., Akaishi S. et al. Focal adhesion kinase links mechanical force to skin fibrosis via inflammatory signaling // Nat. Med. 2011. Vol. 18, No. 1. P. 148–152. doi: 10.1038/nm.2574
  56. Zhao X., Guan J.L. Focal adhesion kinase and its signaling pathways in cell migration and angiogenesis // Adv. Drug Deliv. Rev. 2011. Vol. 63, No. 8. Р. 610–615. doi: 10.1016/j.addr.2010.11.001
  57. Parsons J.T. Focal adhesion kinase: The first ten years // J. Cell Sci. 2003. Vol. 116, No. Pt 8. 1409–1416. doi: 10.1242/jcs.00373
  58. David F.S., Zage P.E., Marcantonio E.E. Integrins interact with focal adhesions through multiple distinct pathways // J. Cell. Physiol. 1999. Vol. 181, No. 1. Р. 74–82. doi: 10.1002/(SICI)1097-4652(199910)181:1<74::AID-JCP8>3.0.CO;2-H
  59. Ma K., Kwon S.H., Padmanabhan J. et al. Controlled delivery of a focal adhesion kinase inhibitor results in accelerated wound closure with decreased scar formation // J. Invest. Dermatol. 2018. Vol. 138, No. 11. Р. 2452–2460. doi: 10.1016/j.jid.2018.04.034
  60. Jones A.M., Griffiths J.L., Sanders A.J. et al. The clinical significance and impact of interleukin 15 on keratinocyte cell growth and migration // Int. J. Mol. Med. 2016. Vol. 38, No. 3. Р. 679–686. doi: 10.3892/ijmm.2016.2687
  61. Liu W., Ma K., Kwon S.H. et al. The abnormal architecture of healed diabetic ulcers is the result of FAK degradation by calpain 1 // J. Invest. Dermatol. 2017. Vol. 137, No. 5. Р. 1155–1165. doi: 10.1016/j.jid.2016.11.039
  62. Wong V.W., Garg R.K., Sorkin M. et al. Loss of keratinocyte focal adhesion kinase stimulates dermal proteolysis through upregulation of MMP9 in wound healing // Ann. Surg. 2014. Vol. 260, No. 6. Р. 1138–1146. doi: 10.1097/SLA.0000000000000219
  63. Shan S., Fang B., Zhang Y. et al. Mechanical stretch promotes tumoricidal M1 polarization via the FAK/NF-κB signaling pathway // FASEB J. 2019. Vol. 33, No. 12. Р. 13254–13266. doi: 10.1096/fj.201900799RR
  64. Van Amerongen R., Nusse R. Towards an integrated view of Wnt signaling in development // Development. 2009. Vol. 136, No. 19. P. 3205–3214. doi: 10.1242/dev.03391
  65. Cheon S.S., Cheah A.Y.L., Turley S. et al. beta-Catenin stabilization dysregulates mesenchymal cell proliferation, motility, and invasiveness and causes aggressive fibromatosis and hyperplastic cutaneous wounds // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2002. Vol. 99, No. 10. Р. 6973–6978. doi: 10.1073/pnas.102657399
  66. Bastakoty D., Young P.P. Wnt/beta-catenin pathway in tissue injury: Roles in pathology and therapeutic opportunities for regeneration // FASEB J. 2016. Vol. 30, No. 10. Р. 3271–3284. doi: 10.1096/fj.201600502R
  67. Amini-Nik S., Cambridge E., Yu W. et al. beta-Catenin-regulated myeloid cell adhesion and migration determine wound healing // J. Clin. Invest. 2014. Vol. 124, No. 6. Р. 2599–2610. doi: 10.1172/JCI62059
  68. Duscher D., Maan Z.N., Wong V.W. et al. Mechanotransduction and fibrosis // J. Biomech. 2014. Vol. 47, No. 9. Р. 1997–2005. doi: 10.1016/j.jbiomech.2014.03.031
  69. Totaro A., Panciera T., Piccolo S. YAP/TAZ upstream signals and downstream responses // Nat. Cell Biol. 2018. Vol. 20, No. 8. Р. 888–899. doi: 10.1038/s41556-018-0142-z
  70. Yano S., Komine M., Fujimoto M. et al. Activation of Akt by mechanical stretching in human epidermal keratinocytes // Exp. Dermatol. 2006. Vol. 15, No. 5. Р. 356–361. doi: 10.1111/j.0906-6705.2006.00425.x
  71. Gao Y.L., Liu C.S., Zhao R. et al. Effects of PI3K/Akt pathway in wound healing process of mice skin // Fa Yi Xue Za Zhi. 2016. Vol. 32, No. 1. Р. 7–12. (In Chinese)
  72. Lessey E.C., Guilluy C., Burridge K. From mechanical force to RhoA activation // Biochemistry. 2012. Vol. 51, No. 38. P. 7420–7432. doi: 10.1021/bi300758e
  73. Rahaman S., Grove L., Paruchuri S. et al. TRPV4 mediates myofibroblast differentiation and pulmonary fibrosis in mice // J. Clin. Invest. 2014. Vol. 124, No. 12. Р. 5225–5238. doi: 10.1172/JCI75331
  74. Barnes L.A., Marshall C.D., Leavitt T. et al. Mechanical forces in cutaneous wound healing: emerging therapies to minimize scar formation // Adv. Wound Care (New Rochelle). 2018. Vol. 7, No. 2. Р. 47–56. doi: 10.1089/wound.2016.0709
  75. Kuehlmann B., Bonham C.A., Zucal I. et al. Mechanotransduction in wound healing and fibrosis // J. Clin. Med. 2020. Vol. 9, No. 5. Р. 1423. doi: 10.3390/jcm9051423
  76. Wong V.W., Longaker M.T., Gurtner G.C. Soft tissue mechanotransduction in wound healing and fibrosis // Semin. Cell Dev. Biol. 2012. Vol. 23, No. 9. Р. 981–986. doi: 10.1016/j.semcdb.2012.09.010
  77. Rittie L. Cellular mechanisms of skin repair in humans and other mammals // J. Cell Commun. Signal. 2016. Vol. 10, No. 2. P. 103–120. doi: 10.1007/s12079-016-0330-1
  78. Ehrlich H.P., Hunt T. K. Collagen organization critical role in wound contraction // Adv. Wound Care. 2012. Vol. 1, No. 1. P. 3–9. doi: 10.1089/wound.2011.0311
  79. Dunphy J.Е., Udupa K.N. Chemical and histo-chemical sequences in the normal healing of wounds // N. Engl. J. Med. 1955. Vol. 253, No. 20. Р. 847–852. doi: 10.1056/NEJM195511172532002
  80. Gabbiani G., Ryan G.B., Majne G. Presence of modified fibroblasts in granulation tissue and their possible role in wound contraction // Experientia. 1971. Vol. 27, No. 5. P. 549–550. doi: 10.1007/BF02147594
  81. Majno G., Gabbiani G., Hinschel B.J. et al. Statkov Contraction of granulation tissue in vitro: similarity to smooth muscle // Science. 1971. Vol. 173, No. 3996. P. 548–550. doi: 10.1126/science.173.3996.548
  82. Ефимов Е.А. Посттравматическая регенерация кожи: экспериментальное исследование. М.: Медицина, 1975.
  83. Forrest L. Current concept in soft connective tissue wound healing // Br. J. Surg. 1983. Vol. 70, No. 3. P. 133–140. doi: 10.1002/bjs.1800700302
  84. Hunt T.K. Basic principles of wound healing // J. Trauma. 1990. Vol. 30, No. 12 Suppl. P. S122–S128. doi: 10.1097/00005373-199012001-00025
  85. Патологическая физиология: учебник для медицинских вузов / под ред. А.Д. Адо, В.В. Новицкого. Томск, 1994.
  86. Kee J.L., Paulanka B.J., Polek C. Handbook of fluid, electrolyte, and acid-base imbalances. 3rd ed. Cengage Learning, 2010.
  87. Nunikoshi J. Oxygen and wound healing // Clin. Plast. Surg. 1977. Vol. 4, No. 3. P. 361–374.
  88. Hopf H.W., Hunt T.K. The role of oxygen in wound repair and wound infection // Musculoskeletal infection. Ed. by J.L. Esterhai, A.G. Gristina, R. Poss. American Academy of Orthopaedic Surgeons, 1992. P. 329–339.
  89. Kimura S., Tsuji T. Mechanical and immunological regulation in wound healing and skin reconstruction // Int. J. Mol. Sci. 2021. Vol. 22, No. 11. Р. 5474. doi: 10.3390/ijms22115474
  90. Fujishiro T., Nishikawa T., Shibanuma N. et al. Effect of cyclic mechanical stretch and titanium particles on prostaglandin E2 production by human macrophages in vitro // J. Biomed. Mater. Res. A. 2004. Vol. 68, No. 3. Р. 531–536. doi: 10.1002/jbm.a.20098
  91. Huang C., Miyazaki K., Akaishi S. et al. Biological effects of cellular stretch on human dermal fibroblasts // J. Plast. Reconstr. Aesthet. Surg. 2013. Vol. 66, No. 12. Р. e351–e361. doi: 10.1016/j.bjps.2013.08.002
  92. Nowell C.S., Odermatt P.D., Azzolin L. et al. Chronic inflammation imposes aberrant cell fate in regenerating epithelia through mechanotransduction // Nat. Cell Biol. 2016. Vol. 18, No. 2. Р. 168–180. doi: 10.1038/ncb3290
  93. Yano S., Komine M., Fujimoto M. et al. Mechanical stretching in vitro regulates signal transduction pathways and cellular proliferation in human epidermal keratinocytes // J. Invest. Dermatol. 2004. Vol. 122, No. 3. Р. 783–790. doi: 10.1111/j.0022-202X.2004.22328.x
  94. Abe G., Hayashi T., Yoshida K. et al. Insights regarding skin regeneration in non-amniote vertebrates: Skin regeneration without scar formation and potential step-up to a higher level of regeneration // Semin. Cell Dev. Biol. 2020. Vol. 100. Р. 109–121. doi: 10.1016/j.semcdb.2019.11.014
  95. Harn H.I., Ogawa R., Hsu C.K. et al. The tension biology of wound healing // Exp. Dermatol. 2019. Vol. 28, No. 4. Р. 464–471. doi: 10.1111/exd.13460
  96. Kimura S., Tsuchiya A., Ogawa M. et al. Tissue-scale tensional homeostasis in skin regulates structure and physiological function // Commun. Biol. 2020. Vol. 3, No. 1. Р. 637. doi: 10.1038/s42003-020-01365-7
  97. Ульянина А.А. Метод острого и дозированного тканевого растяжения в пластике обширных раневых дефектов мягких тканей: дис. … канд. мед. наук. М., 2006.
  98. Митиш В.А., Мединский П.В., Багаев В.Г. Хирургическое лечение обширной скальпированной раны теменно-затылочной области // Раны и раневые инфекции. Журнал им. проф. Б.М. Костючёнка. 2021. Т. 8, № 1. С. 42–49. doi: 10.25199/2408-9613-2021-8-1-42-49
  99. Измайлов С.Г., Бесчастнов В.В. Аппаратная техника ушивания ран // Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2003. № 11. С. 61.
  100. Бесчастнов В.В., Орлинская Н.Ю., Кудыкин М.Н. Экспериментально-клиническое обоснование применения дозированной дермотензии в первую фазу раневого процесса // Новости хирургии. 2012. Т. 20. № 2. С. 55–59.
  101. Мартель И.И., Гребенюк Л.А. Замещение дефекта мягких тканей опорной поверхности стопы по методике Илизарова под контролем механобиологического состояния кожи // Политравма. 2018. №1. С. 39–46.
  102. Пятаков С.Н., Завражнов А.А., Лукьянченко И.В., Ралко С.Н. Биофизическое и патогенетическое обоснование применения метода дозированного растяжения кожи в лечении обширных раневых дефектов // Кубанский научный медицинский вестник. 2017. Т.162, №1(162). С. 155–160.
  103. Ingber D.E. Tensegrity I. Cell structure and hierarchical systems biology // J. Cell Sci. 2003. Vol. 116, No. Pt 7. Р. 1157–1173. doi: 10.1242/jcs.00359
  104. Ingber D.E. Tensegrity II. How structural networks influence cellular information processing networks // J. Cell Sci. 2003. Vol. 116, No. Pt 8. Р. 1397–1408. doi: 10.1242/jcs.00360
  105. Geiger B., Spatz J.P., Bershadsky A.D. Environmental sensing through focal adhesions // Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2009. Vol. 10, No. 1. Р. 21–33. doi: 10.1038/nrm2593
  106. Panciera T., Azzolin L., Cordenonsi M., Piccolo S. Mechanobiology of YAP and TAZ in physiology and disease // Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2017. Vol. 18, No. 12. Р. 758–770. doi: 10.1038/nrm.2017.87

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Павленко И.В., Гостев В.Н., Андрюхин К.В., 2022

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 71733 от 08.12.2017.