Стабильность коллагенового геля после ультрафиолетового облучения

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Коллаген I типа является наиболее распространенным белком внеклеточного матрикса в организме человека, обеспечивающим основу структуры тканей и регулирует клеточные функции. В процессе жизнедеятельности компоненты внеклеточного матрикса, в частности коллаген, подвергаются ультрафиолетовому облучению. Целью данной работы было изучение влияния ультрафиолетового облучения на стабильность и структуру коллагеновых фибрилл. Было показано, что ультрафиолетовое облучение оказывает стабилизирующее действие на коллагеновый гель с концентрацией 0.5 мг/мл. При анализе диаметров коллагеновых фибрилл после УФ облучения методом сканирующей электронной микроскопии изменение размеров не выявлено. Степень распластанности клеток, культивируемых на коллагеновых фибриллах после ультрафиолетового облучения, больше по сравнению с площадью клеток, культивируемых на коллагеновых фибриллах без обработки. Методом ИК-Фурье-спектроскопии также показано, что ультрафиолетовое облучение вызывает смещение полосы амида коллагена А в более низкочастотную область, что свидетельствует об изменении структурного порядка коллагена.

Об авторах

Ю. А Нащекина

Институт цитологии РАН;Физико-технический институт им. А.Ф. Иоффе РАН

Email: nashchekina.yu@mail.ru
Санкт-Петербург, Россия

Н. А Трусова

Институт цитологии РАН

Санкт-Петербург, Россия

П. О Никонов

Институт цитологии РАН

Санкт-Петербург, Россия

А. В Нащекин

Физико-технический институт им. А.Ф. Иоффе РАН

Н. А Михайлова

Институт цитологии РАН

Санкт-Петербург, Россия

Список литературы

  1. A. Bailey and R. Paul, J. Soc. Leather Technol. Chem., 82, 104 (1998).
  2. S. Ricard, Perspect. Biol., 1, 3 (2011).
  3. S. Ricard-Blum, Perspect. Biol., 3, 1 (2011).
  4. Yu. А. Nashchekina, А. А. Starostina, N. А. Trusova, et al., J. Physics: Conf. Series, 1697, 012053 (2020).
  5. A. Amaro-Ortiz, B. Yan, and J. A. D'Orazio, Molecules, 19, 6202 (2014).
  6. Yu. A. Nashchekina, N. M. Yudintceva, P. O. Nikonov, et al., Bull. Exp. Biol. Med., 163, 123 (2017).
  7. M. G. Haugh, C. M. Murphy, R. C. McKiernan, et al., Tissue. Eng. Part A, 17, 1201 (2011).
  8. Y. Hu, L. Liu, W. Dan, et al., Int. J. Biol. Macromol., 55, 221 (2013).
  9. S. J. Hollister and R. D. T. Maddox, J. Biomater., 23, 4095 (2002).
  10. J. S. Pieper, T. Hafmans, J. H. Veerkamp, et al. Biomaterials, 21, 581 (2000).
  11. M. G. Haugh., PhD Thesis (Trinity Colledge, Dublin University, Ireland, 2008).
  12. D.-H. Lew, P. H-T. Liu, and D. P. Orgill, J. Biomed. Mater. Res. B. Appl. Biomater., 82, 51 (2007).
  13. L. H. Olde Damink, P. J. Dijkstra, M. J. van Luyn, et al., Biomaterials, 17, 765 (1996).
  14. N. Davidenko, D. V. Bax, C. F. Schuster, et al., Mater. Sci.: Mater. Med., 27,14 (2016).
  15. N. Metreveli, L. Namicheishvili, K. Jariashvili, et al., Int. J. Photoenergy, 76830, 1 (2006).
  16. M. P. Ohan, K. S. Weadock, and M. G. Dunn, J. Biomed. Mater. Res., 60, 384 (2002).
  17. G. Chandrakasan, D. A. Torchia, K. A. Piez, J. Biol. Chem., 251, 6062 (1976).
  18. O. H. Lowry, N. J. Rosbrough, A. L. Farr, and R. J. Randall, J. Biol. Chem., 193, 265. (1951).
  19. Y. Nashchekina, A. Chabina, A. Nashchekin, et al., Polymers, 12, 1042 (2020).
  20. A. Sionkowska, J. Photoch. Photobiol. B: Biology, 82, 9 (2006).
  21. A. Kaminska and A. Sionkowska, Pol. Degr. Stability, 51,19 (1996).

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2023