Hematological Features of Codfishes (Gadidae) from the Northwest Pacific

Мұқаба
  • Авторлар: Pronina G.I.1, Orlov A.M.2,3,4,5,6, Artemenkov D.V.7, Bomko S.P.8, Gritsai E.V.8, Matveev A.A.9
  • Мекемелер:
    1. Russian State Agrarian University – Moscow Timiryazev Agricultural Academy (RSAU-MTAA)
    2. Shirshov Institute of Oceanology, Russian Academy of Sciences
    3. Dagestan State University
    4. Caspian Institute of Biological Resources, Dagestan Federal Research Center, Russian Academy of Sciences
    5. Tomsk State University
    6. Severtsov Institute of Ecology and Evolution, Russian Academy of Sciences
    7. Russian Federal Research Institute of Fisheries and Oceanography (VNIRO)
    8. Pacific Branch, Russian Federal Research Institute of Fisheries and Oceanography (TINRO)
    9. Kamchatka Branch, Russian Federal Research Institute of Fisheries and Oceanography (KamchatNIRO)
  • Шығарылым: Том 50, № 4 (2024)
  • Беттер: 257-265
  • Бөлім: ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
  • ##submission.datePublished##: 24.11.2024
  • URL: https://journals.eco-vector.com/0134-3475/article/view/670333
  • DOI: https://doi.org/10.31857/S0134347524040011
  • ID: 670333

Дәйексөз келтіру

Толық мәтін

Ашық рұқсат Ашық рұқсат
Рұқсат жабық Рұқсат берілді
Рұқсат жабық Тек жазылушылар үшін

Аннотация

Hematological parameters of the peripheral blood of the walleye pollock Gadus chalcogrammus Pallas, 1814, saffron cod Eleginus gracilis Tilesius, 1810, and Pacific cod Gadus macrocephalus Tilesius, 1810 from the Sea of Okhotsk were studied. An analysis of the leukogram of the studied species revealed a large portion of segmented neutrophils and myelocytes in walleye pollock, which indicates a significant potential of the cellular factor of its innate immunity and a greater activity of corticosteroid hormones. The most active erythropoiesis observed in G. chalcogrammus is probably related to substantial vertical migrations, specific for the species, associated with sharp pressure variations and the necessity to provide the body with oxygen. The high level of leukopoiesis revealed in saffron cod is assumed to be caused by ecological adaptations of the species to inhabit both fresh and sea water.

Толық мәтін

Рұқсат жабық

Авторлар туралы

G. Pronina

Russian State Agrarian University – Moscow Timiryazev Agricultural Academy (RSAU-MTAA)

Хат алмасуға жауапты Автор.
Email: dmitriy.artemenkov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-0805-6784
Ресей, Moscow, 127550

A. Orlov

Shirshov Institute of Oceanology, Russian Academy of Sciences; Dagestan State University; Caspian Institute of Biological Resources, Dagestan Federal Research Center, Russian Academy of Sciences; Tomsk State University; Severtsov Institute of Ecology and Evolution, Russian Academy of Sciences

Email: dmitriy.artemenkov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-0877-2553
Ресей, Moscow, 117218; Makhachkala, 367000; Makhachkala, 367000; Tomsk, 634050; Moscow, 119071

D. Artemenkov

Russian Federal Research Institute of Fisheries and Oceanography (VNIRO)

Email: dmitriy.artemenkov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-9051-697X
Ресей, Moscow, 105187

S. Bomko

Pacific Branch, Russian Federal Research Institute of Fisheries and Oceanography (TINRO)

Email: dmitriy.artemenkov@gmail.com
Ресей, Vladivostok, 690091

E. Gritsai

Pacific Branch, Russian Federal Research Institute of Fisheries and Oceanography (TINRO)

Email: dmitriy.artemenkov@gmail.com
Ресей, Vladivostok, 690091

A. Matveev

Kamchatka Branch, Russian Federal Research Institute of Fisheries and Oceanography (KamchatNIRO)

Email: dmitriy.artemenkov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-2101-6207
Ресей, Petropavlovsk-Kamchatsky, 683000

Әдебиет тізімі

  1. Андрияшев А.П. Рыбы северных морей СССР. Л.: АН СССР, 1954. 566 с.
  2. Галактионов В.Г. Эволюционная иммунология: учебное пособие. М.: Академкнига, 2005. 408 с.
  3. Головина Н.А., Тромбицкий И.Д. Гематология прудовых рыб. Кишинев: Штиинца, 1989. 156 с.
  4. Головина Н.А. Морфофункциональная характеристика крови рыб – объектов аквакультуры: автореф. дис. … докт. биол. наук. М., 1996. 53 с.
  5. Дубровская Н.В. Биология и промысел дальневосточной наваги: автореф. дис. ... канд. биол. наук. М.: Мосрыбвтуз, 1954. 15 с.
  6. Житенева Л.Д., Полтавцева Т.Г., Рудницкая О.А. Атлас нормальных и патологически измененных клеток крови рыб. Ростов н/Д.: Ростов, 1989. 111 с.
  7. Заводский Р.Ю., Шевченко Ю.А., Конева О.Ю. и др. Иммунорегуляторная роль эритроидных ядросодержащих клеток // Иммунология. 2022. № 1. С. 103.
  8. Иванов А.А., Пронина Г.И., Корягина Н.Ю., Петрушин А.Б. Клиническая лабораторная диагностика в аквакультуре. Методические указания. М.: ТСХА, 2013. 50 с.
  9. Иванов А.А., Пронина Г.И., Корягина Н.Ю. Гематология пойкилотермных гидробионтов. Иркутск: Мегапринт, 2018. 133 с.
  10. Иванова Н.Т. Атлас клеток крови рыб. М.: Легкая и пищ. пром-сть, 1983. 184 с.
  11. Колесник Е.А., Нохрин Д.Ю., Грибовский Ю.Г. и др. Оценка лейкоцитарного профиля промысловой рыбы из озер Челябинской области // Аграрный вестн. Урала. 2019. № 8 (187). С. 39–44.
  12. https://doi.org/10.32417/article_5d908b85dcb853.25473638
  13. Линдберг Г.У. Определитель и характеристика семейств рыб мировой фауны. Л.: Наука, 1971. 472 с.
  14. Липунова Е.А., Скоркина М.Ю. Система красной крови. Сравнительная физиология: Монография. Белгород: Изд-во БелГУ, 2004. 216 с.
  15. Микряков В.Р., Балабанова Л.В. Клеточные основы иммунитета у рыб. Физиология и паразитология пресноводных животных. Л.: Наука, 1979. С. 57–64.
  16. Микряков В.Р., Балабанова Л.В., Заботкина Е.А. и др. Реакция иммунной системы рыб на загрязнение воды токсикантами и закисление среды. М.: Наука, 2001. 126 с.
  17. Никитенко А.И., Пронина Г.И., Орлов А.М. и др. О периферической крови у трех видов рыб с разной экологией (Scombridae и Berycidae) // Изв. РАН. Сер. биол. 2022. № 6. C. 1–6.
  18. doi: 10.31857/S1026347022060117
  19. Пронина Г.И., Корягина Н.Ю. Референсные значения физиолого-иммунологических показателей гидробионтов разных видов // Вестн. Астрахан. гос. техн. ун-та. 2015. № 4. С. 103–108.
  20. Пронина Г.И., Орлов А.М., Артеменков Д.В. Параметры периферической крови двух видов глубоководных рыб семейства Веретенниковых (Paralepididae) // Изв. РАН. Сер. биол. 2021. № 4. C. 444–448.
  21. doi: 10.31857/S1026347021030139
  22. Световидов А.Н. Трескообразные. Фауна СССР. Рыбы. Т. 9. Вып. 4. М.-Л.: Изд. АН СССР, 1948. 221 с.
  23. Точилина Л.В. Лейкоцитарная формула морских рыб // Гидробиол. журн. 1994. Т. 30. № 3. С. 50–57.
  24. Фадеев Н.С. Справочник по биологии и промыслу рыб северной части Тихого океана. Владивосток: ТИНРО-Центр, 2005. 366 с.
  25. Федоров Н.А. Нормальное кроветворение и его регуляция. М.: Медицина, 1976. 544 с.
  26. Barton B.A. Stress in fishes: a diversity of responses with particular reference to changes in circulating corticosteroids // Integr. Comp. Biol. 2002. V. 42. № 3. P. 517–525.
  27. Chikurova E.A., Orlov A.M., Shchepetov D.M., Orlova S.Y. Separated by space and time but united by kinship: Phylogeographical and phylogenetic history of two species of Eleginus (Gadidae) based on the polymorphism of Cyt b mitochondrial DNA gene // J. Ichthyol. 2023. V. 63. № 2. P. 216241.
  28. https://doi.org/10.1134/s0032945223020042
  29. Clauss T.M., Dove A.D.M., Arnold J.E. Hematologic disorders of fish // Vet. Clin. North Am.: Exot. Anim. Pract. 2008. V. 11. № 3. P. 445–462.
  30. Cohen D.M., Inada T., Iwamoto T., Scialabba N. FAO Species Catalogue. V. 10. Gadiform Fishes of the World (Order Gadiformes): an Annotated and Illustrated Catalogue of Cods, Hakes, Grenadiers and Other Gadiform Fishes Known to Date // FAO Fisheries Synopsis. № 125. V. 10. Rome: FAO, 1990.
  31. Cooper D.W., Cieciel K., Copeman L. et al. Pacific cod or tikhookeanskaya treska (Gadus macrocephalus) in the Chukchi Sea during recent warm years: Distribution by life stage and age-0 diet and condition // Deep Sea Res. Part II. 2023. V. 208. Art. ID 105241.
  32. https://doi.org/10.1016/j.dsr2.2022.105241
  33. Devries A.L. Biological antifreeze agents in coldwater fishes // Comp. Biochem. Physiol. Part A: Phisiol. 1982. V. 73. № 4. P. 627–640.
  34. Dunn J.R., Matarese A.C. Gadidae: Development and Relationships. New York: Am. Soc. Ichthyologists Herpetologists, 1984. P. 283–299.
  35. Ellis A.E. Innate host defense mechanisms of fish against viruses and bacteria // Dev. Comp. Immunol. 2001. V. 25. P. 827–839.
  36. FAO Fisheries and Aquaculture: FishStatJ – Software for Fishery and Aquaculture Statistical Time Series.
  37. https://www.fao.org/fishery/en/statistics/software/fishstatj. Accessed September 19, 2023.
  38. Fischer U., Utke K., Somamoto T. et al. Cytotoxic activities of fish leucocytes // Fish Shellfish Immunol. 2006. V. 20. P. 209–226.
  39. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2005.03.013
  40. Fricke R., Eschmeyer W.N., Fong J.D. Eschmeyer’s catalog of fishes: genera/species by family/subfamily.
  41. http://researcharchive.calacademy.org/research/ichthyology/catalog/SpeciesByFamily.asp Accessed September 28, 2023.
  42. Hart J.L. Pacific Fishes of Canada // Bulletin of the Fisheries Research Board of Canada. V. 180. Ottawa: Fish. Res. Board Can., 1973.
  43. Mecklenburg C.W., Lynghammar A., Johannesen E. et al. Marine fishes of the Arctic Region. V. 1. CAFF Monitoring Series Report 28. Akureyri, Iceland: Conservation of Arctic Flora and Fauna, 2018.
  44. Orlov A.M., Rybakov M.O., Vedishcheva E.V. et al. Walleye pollock Gadus chalcogrammus, a species with continuous range from the Norwegian Sea to Korea, Japan, and California: new records from the Siberian Arctic // J. Mar. Sci. Eng. 2021. V. 9. Art. ID 1141.
  45. https://doi.org/10.3390/jmse9101141
  46. Orlov A.M., Tokranov A.M. Checklist of deep-sea fishes of the Russian northwestern Pacific Ocean found at depths below 1000 m // Prog. Oceanogr. 2019. V. 176. Art. ID 102143.
  47. https://doi.org/10.1016/j.pocean.2019.102143
  48. Parish N., Wrathmell A., Hart S., Harris J.E. The leucocytes of the elasmobranch Scyliorhinus vanicula L. – a morphological study // J. Fish. Biol. 1986. V. 28. № 5. P. 545–561.
  49. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.1986.tb05192.x
  50. Sarantseva K.A., Laktionova L.V., Reutova E.V. et al. Immunology: immune response as leading protectionfactor against cancer // Zlokach. Opukholi. 2016. V. 2. P. 5–14.
  51. https://doi.org/10.18027/2224-5057-2016-2-5-14
  52. Witeska M. Erythrocytes in teleost fishes: a review // Zool. Ecol. 2013. V. 23. № 4. P. 275–281.
  53. https://doi.org/10.1080/21658005.2013.846963
  54. Wolotira R.J. Saffron Cod (Eleginus gracilis) in Western Alaska: The Resource and Its Potential // NOAA Technical Memorandum NMFS F/NWC-79, Seattle, Wash.: U.S. Department of Commerce, 1985.

Қосымша файлдар

Қосымша файлдар
Әрекет
1. JATS XML
Жүктеу
2. Fig. 1. Blood cells of pollock Gadus chalcogrammus (a), navaga Eleginus gracilis (b) and cod Gadus macrocephalus (c). Scale: 10 µm. Legend: 1 – erythroblasts, 2 – normoblasts, 3 – basophilic erythrocytes, 4 – mature and polychromatophilic erythrocytes, 5 – myeloblasts, 6 – myelocytes, 7 – metamyelocytes, 8 – band neutrophils, 9 – segmented neutrophils, 10 – monocytes and 11 – lymphocytes.

Жүктеу (753KB)
Метадеректер

© The Russian Academy of Sciences, 2024