Reference values for TREC and KREC concentrations in adults


Cite item

Full Text

Open Access Open Access
Restricted Access Access granted
Restricted Access Subscription or Fee Access

Abstract

The quantitative determination of TREC and KREC levels has found wide application in the diagnosis of primary immunodeficiency in the world pediatric practice. The application of the method in the diagnosis of adult patients has remained poorly understood until now. To determine the reference values of TREC and KREC for patients over 17 years old, 140 people aged 18 to 83 years were examined. As a result, the cutoff of the TREC and KREC concentration were determined for whole blood and dry blood stains in patients of the following age groups: 18-24 years old, 25-44 years old, 45-60 years old and over 60 years old.

Full Text

Restricted Access

About the authors

N. V Davydova

G.N. Speransky City Children’s Hospital Ninth

A. P Prodeus

Immanuel Kant Baltic Federal University

I. V Obraztsov

G.N. Speransky City Children’s Hospital Ninth

D. A Kudlay

I.M. Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University); NRC Institute of Immunology, Federal Biomedical Agency of Russia

I. A Korsunsky

G.N. Speransky City Children’s Hospital Ninth

References

  1. Корсунский И.А., Продеус А.П., Румянцев А.Г. и др. Скрининг новорожденных на первичные иммунодефициты и группу риска иммунорегуляторных расстройств, требующих диспансерного наблюдения. Педиатрия. 2019; 98 (3): 49-54 doi: 10.24110/0031-403X-2019-98-3-49-54
  2. Корсунский И.А., Гордукова М.А., Мунблит и др. Клинические и эпидемиологические аспекты первичных иммунодефицитных состояний и их раннего обнаружения. Медицинская иммунология. 2017; 19 (5): 505-12 doi: 10.15789/1563-0625-2017-5-505-512
  3. Корсунский И.А., Кудлай Д.А., Продеус А.П. и др. Неонатальный скрининг на первичные иммунодефицитные состояния и Т-/В. -клеточные лимфопении как основа формирования групп риска детей с врожденными патологиями. Педиатрия им. Г.Н. Сперанского. 2020; 99 (2) 8-15 doi: 10.24110/0031-403X-2020-99-2-8-15
  4. Korsunskiy I. et al. TREC and KREC levels as a predictors of lymphocyte subpopulations measured by flow cytometry. Front Physiol. 2019; 9: 1877. doi: 10.3389/fphys.2018.01877
  5. Korsunskiy I. et al. Expanding TREC and KREC Utility in Primary Immunodeficiency Diseases Diagnosis. Front Immunol. 2020; 11: 320. doi: 10.3389/fimmu.2020.00320
  6. Козлов В.А., Савченко А.А., Кудрявцев И.В. и др. Клиническая иммунология. Красноярск: Поликор, 2020; 386 с. [Kozlov V.A., Savchenko А.А., Kudryavtsev I.V. et al. Klinicheskaya immunologiya.[Clinical immunology]. Krasnoyarsk, Polikom Publ., 2020; 386 p. (in Russ.)]. doi: 10.17513/np.438
  7. Mauracher A.A. et al. Causes of low neonatal T-cell receptor excision circles: A systematic review. J. Allergy Clin Immunol Pract. 2017; 5 (5): 1457-60.e22. doi: 10.1016/j.jaip.2017.02.009
  8. Parvaneh N. et al. Primary immunodeficiencies: A rapidly evolving story. J. Allergy Clin Immunol. 2013; 131 (2): 314-23. doi: 10.1016/j.jaci.2012.11.051
  9. Kwok J.S.Y. et al. Establishing Simultaneous T. Cell Receptor Excision Circles (TREC) and K-Deleting Recombination Excision Circles (KREC) Quantification Assays and Laboratory Reference Intervals in Healthy Individuals of Different Age Groups in Hong Kong. Front Immunol. 2020; 11: 1411. DOI: 10.3389/ fimmu.2020.01411
  10. Yi J.S. et al. Establishment of normative ranges of the healthy human immune system with comprehensive polychromatic flow cytometry profiling. PLoS One. 2019; 14 (12): e0225512. doi: 10.1371/journal.pone.0225512
  11. Гордукова М.А., Оскорбин И.П., Мишукова О.В. и др. Разработка набора реагентов для количественного определения молекул ДНК TREC и KREC в цельной крови и сухих пятнах крови методом мультиплексной ПЦР в режиме реального времени. Медицинская иммунология. 2015; 17 (5): 467-78 doi: 10.15789/1563-0625-2015-5467-478
  12. Мамаев А.Н., Кудлай Д.А. Статистические методы в медицине. М.: Практическая медицина, 2021; 136 с.
  13. Cowan J.E. et al. Postnatal Involution and Counter-Involution of the Thymus. Front Immunol. 2020; 11: 897. doi: 10.3389/fimmu.2020.00897
  14. Rahikainen A.-L. et al. DNA quality and quantity from up to 16 years old post-mortem blood stored on FTA cards. Forensic Science International. 2016; 261: 148-53. doi: 10.1016/j.forsciint.2016.02.014
  15. Adekambi T. et al. Biomarkers on patient T. cells diagnose active tuberculosis and monitor treatment response. J. Clin Invest. 2015; 125 (5): 1827-38. doi: 10.1172/JCI77990
  16. Образцов И.В., Гордукова М.А., Северина Н.А. и др. Эксцизионные кольца V(D)J-рекомбинации B- и T-клеток как прогностический маркер при В-клеточном хроническом лимфолейкозе. Клиническая онкогематология. 2017; 10 (2): 131-40 doi: 10.21320/2500-2139-2017-10-2-131-140
  17. Образцов И.В., Гордукова М.А., Цветкова Е.В. и др. Эксцизионные кольца V(D)J рекомбинации B- и T-клеток как показатели иммунологической реконституции у детей с острым лимфобластным лейкозом. Вопросы гематологии/онкологии и иммунопатологии в педиатрии. 2016; 15 (4): 42-50 doi: 10.24287/1726-17082016-15-4-42-50
  18. Douek D.C. et al. Changes in thymic function with age and during the treatment of HIV infection. Nature. 1998; 396 (6712): 690-5. doi: 10.1038/25374

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies