КЛЕТОЧНЫЕ ТЕХНОЛОГИИ В ЛЕЧЕНИИ СТРЕССОВОГО НЕДЕРЖАНИЯ МОЧИ У ЖЕНЩИН


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Проблема недержания мочи (НМ) у женщин приобретает в последние годы все большую актуальность, причем стрессовое НМ составляет 51—77%. В настоящее время консервативные методы лечения стрессового НМ и фармакологические препараты малоэффективны, в то время как хирургические методы могут приводить к серьезным осложнениям. В связи с развитием клеточных технологий и регенеративной медицины разрабатываются новые подходы лечения стрессового НМ, основанные на трансплантации стволовых/прогениторных клеток (СПК) и тканеинженерных конструкций (ТИК). Анализ научной литературы продемонстрировал, что в этой области регенеративной медицины остается еще много нерешенных вопросов. В частности, по-прежнему отсутствует единая точка зрения на выбор типа клеток для трансплантации. Дискуссионным остается вопрос о механизмах терапевтической активности трансплантации клеток при стрессовом НМ. Однако уже сейчас в данной области совершенно явно наблюдается тренд применения клеток не в виде суспензии, а с использованием матриц-носителей, т.е. в виде ТИК.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Андрей Витальевич МАКАРОВ

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздравсоцразвития России; ФГБУ Научно-исследовательский институт морфологии человека РАМН

Email: anvitmak@yandex.ru
кандидат медицинских наук, старший научный сотрудник ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздравсоцразвития России, ведущий научный сотрудник ФГБУ НИИМЧ РАМН

Татьяна Александровна ТЕТЕРИНА

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздравсоцразвития России

Email: palpebra@inbox.ru
аспирант

Айна Салавдиновна САИДОВА

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздравсоцразвития России

Email: Asekova14@yandex.ru
кандидат медицинских наук, врач акушер-гинеколог гинекологического отделения восстановительного лечения и стационара дневного пребывания

Ирина Владимировна АРУТЮНЯН

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздравсоцразвития России; ФГБУ Научно-исследовательский институт морфологии человека РАМН

Email: labrosta@yandex.ru
научный сотрудник

Тимур Хайсамудинович ФАТХУДИНОВ

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздравсоцразвития России; ФГБУ Научно-исследовательский институт морфологии человека РАМН

Email: tfat@yandex.ru
кандидат медицинских наук, заведующий лабораторией регенеративной медицины ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздравсоцразвития России, ведущий научный сотрудник ФГБУ НИИМЧ РАМН

Инна Анатольевна АПОЛИХИНА

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздравсоцразвития России; ГОУ ВПО Первый московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова

Email: apolikhina@inbox.ru
доктор медицинских наук, профессор кафедры акушерства, гинекологии, перинатологии и репродуктологии ФППОВ ПМГМУ им. И.М. Сеченова, руководитель гинекологического отделения восстановительного лечения и стационара дневного пребывания ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздравсоцразвития России

Геннадий Тихонович СУХИХ

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздравсоцразвития России

академик Российской академии медицинских наук, доктор медицинских наук, профессор, заслуженный деятель науки Российской Федерации, директор ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздравсоцразвития России, заведующий кафедрой акушерства, гинекологии, перинатологии и репродуктологии ФППОВ ПМГМУ им. И.М. Сеченова

Список литературы

  1. Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия. М.: Медицина; 1990.
  2. Аполихина И.А. Клиническая эпидемиология, дифференциальная диагностика и консервативное лечение недержания мочи у женщин: Автореф. дис.. д-ра мед. наук. М.; 2006.
  3. Кулаков В.И., Адамян Л.В., Сашин Б.Е. Современные методы хирургической коррекции недержания мочи. В кн.: Кулаков В.И., Адамян Л.В., ред. Эндоскопия в диа гностике, лечении и мониторинге женских болезней: Материалы Междунар. конф. М.; 2000: 592-621.
  4. Макаров А.В., Арутюнян И.В., Большакова Г.Б., Волков А.В. Морфологические изменения в парауретральной области при введении тканеинженерной конструкции на основе стромальных клеток жировой ткани. Клеточные технологии в биологии и медицине. 2009; 4: 229-35.
  5. Макаров А.В., Волков А.В., Гольдштейн Д.В., Зайратьянц О.В. Инъекционный комбинированный клеточный трансплантат и перспективы его использования для коррекции стрессового недержания мочи. Проблемы репродукции. 2007; 2: 71-6.
  6. Пушкарь Д.Ю. Диагностика и лечение сложных и комбинированных форм недержания мочи у женщин: Автореф. дис.. д-ра мед. наук. М.; 1996. 53 с.
  7. Саидова А.С. Оптимизация лечения стрессового и смешанного типов недержания мочи у женщин с помощью объемообразующего средства декстраномер/гиалуроновой кислоты: Автореф. дис.. канд. мед. наук. М.; 2011. 24 с.
  8. Atala A. Regenerative medicine and tissue engineering in urology. Urol. Clin. North. Am. 2009; 36(2): 199 - 209.
  9. Bae J.H., Yoo J.J. Cell - based therapy for urinary incontinence. Korean J. Urol. 2010; 51: 1-7.
  10. Carr L.K., Steele D., Steele S., Wagner D., Pruchnic R., Jankowski R. et al. 1-year follow-up of autologous muscle-derived stem cell injection pilot study to treat stress urinary incontinence. Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 2008; 19(6): 881-3.
  11. ChancellorM.B., Yokoyama T., Tirney S., Mattes C.E., Ozawa H., Yoshimura N. et al. Preliminary results of myoblast injection into the urethra and bladder wall: a possible method for the trearment of stress urinary incontinence and impaired detrusor contractility. Neurourol. Urodyn. 2000; 19(3): 279-87.
  12. Chen B., Wen Y., Polan M.L. Elastolytic activity in women with stress urinary incontinence and pelvic organ prolapse. Neurourol. Urodyn. 2004; 23: 119-26.
  13. Collins C.A., Olsen I., Zammit P.S., Heslop L., Petrie A., Partridge T., Morgan J.E. Stem cell function, self - renewal, and behavioral heterogeneity of cells from the adult muscle satellite cell niche. Cell. 2005; 122(2): 289-301.
  14. Cruz M., Dissaranan C., Cotleur A., Kiedrowski M., Penn M., Damaser M. Pelvic organ distribution of mesenchymal stem cells injected intravenously after simulated childbirth injury in female rats. Obstet. Gynecol. Int. 2012; 2012: 612946.
  15. DeCoppi P., Delo D., Farrugia L., Udompanyanan K., Yoo J.J, Nomi M. et al. Angiogenic gene - modified muscle cells for enhancement of tissue formation. Tissue Eng. 2005; 11(7-8): 1034-44.
  16. Dennis J.E., Merriam A., Awadallah A., Yoo J. U., Johnstone B., Caplan A.I. A quadripotential mesenchymal progenitor cell isolated from the marrow of an adult mouse. J. Bone Miner. Res. 1999; 14(5): 700-9.
  17. Dissaranan C., Cruz M.A., Couri B.M., Juarez R., Balog B.M. et al. Mesenchimal stem cells facilitate recovery after simulated childbirth injury via secreted factors. In: Materials of 36-th Annual meeting of International Urogynecological Association (IUGA), June 28-July 2, 2011, Lisbon. 2011: 139.
  18. Fano V., Shatel M., Tanzi M.L. Release phenomena and toxicity in polymer-based dental restorative materials. Acta Biomed. 2007; 78(3): 190-7.
  19. Fierabracci A., Caione P., Di Giovine M., Zavaglia D., Bottazzo G.F. Identification and characterization of adult stem/ progenitor cells in the human bladder (bladder spheroids): perspectives of application in pediatric surgery. Pediatr. Surg. Int. 2007; 23(9): 837-9.
  20. Goldberg M. In vitro and in vivo studies on the toxicity of dental resin components: a review. Clin. Oral Invest. 2008; 12(1): 1-8.
  21. Gregory C. D., Devitt A. The macrophage and the apoptotic cell: an innate immune interaction viewed simplistically? Immunology. 2004; 113: 1-14.
  22. Hirsch R.J., Stier M. Complications of soft tissue augmentation. J. Drugs Dermatol. 2008; 7(9): 841-5.
  23. Hong L., Peptan I.A., Colpan A., Daw J.L. Adipose tissue engineering by human adipose-derived stromal cells. Cells Tissues Organs. 2006; 183(3): 133-40.
  24. Hsu S.H., Lin C.H. The properties of gelatin-poly (gamma-glutamic acid) hydrogels as biological glues. Biorheology. 2007; 44(1): 17-28.
  25. Inanc B., Elcin A.E., Elcin Y.M. Human embryonic stem cell differentiation on tissue engineering scaffolds: effects of NGF and retinoic acid injections. Tissue Eng. Part A. 2008; 14(6): 955-64.
  26. Isom—Batz G., Zimmern P.E. Collagen injection for female urinary incontinence after urethral or periurethral surgery. J. Urol. 2009; 181(2): 701-4.
  27. Junqueira L.C.U., Bignolas G., Bretani R. Picrosirius staining plus polarizing microscopy, a specific method for collagen detection in tissue sections. Histochem. J. 1979; 11: 447-55.
  28. Keane D.P., Sims T.J., Abrams P., Bailey A.J. Analysis of collagen status in premenopausal nulliparous women with genuine stress incontinence. Br. J. Obstet. Gynaecol. 1997;104(9): 994-.
  29. Keegan P.E., Atiemo K., Cody J., McClinton S., Pickard R. Periurethral injection therapy for urinary incontinence in women. Cochrane Database Syst. Rev. 2007; (3): CD003881.
  30. Kobayashi T., Hamano K., Li T.S., Katoh T., Kobayashi S., Matsuzaki M., Esato K. Enhancement of angiogenesis by the implantation of self bone marrow cells in a rat ischemic heart model. J. Surg. Res. 2000; 89(2): 189-95.
  31. Le Blanc K., Pittenger M. Mesenchymal stem cells: progress toward promise. Cytotherapy. 2005; 7(1): 36-45.
  32. Lin G., Wang G., Banie L., Ning H., Shindel A.W., Fandel T.M. et al. Treatment of stress urinary incontinence with adipose tissue - derived stem cells. Cytotherapy. 2010; 12 (1): 88-95.
  33. Mariappan P., Alhasso A., Ballantyne Z., Grant A., N’Dow J. Duloxetine, a serotonin and noradrenaline reuptake inhibitor (SNRI) for the treatment of stress urinary incontinence: a systematic review. Eur. Urol. 2007; 51(1): 67-74.
  34. Mitchell J.B., McIntosh K., Zvonic S., Garrett S., Floyd Z.E., Kloster A. et al. Immunophenotype of human adipose-derived cells: temporal changes in stromal-associated and stem cell-associated markers. Stem Cells. 2006; 24(2): 376-85.
  35. Mitterberger M., Marksteiner R., Margreiter E., Pinggera G.M., Colleselli D., Frauscher F. et al. Autologous myoblasts and fibroblasts for female stress incontinence: a 1-year follow-up in 123 patients. Br. J. Urol. Int. 2007; 100(5): 1081-5.
  36. Oberpenning F., Meng J., Yoo J.J., Atala A. De novo reconstruction of a functional mammalian bladder by tissue engineering. Nat. Biotechnol. 1999; 17: 371-5.
  37. Pajoncini C., Costantini E., Guercini F., Bini V., Porena M. Clinical and urodynamic features of intrinsic sphincter deficiency. Neurourol. Urodyn. 2003; 22(4): 264-8.
  38. Peter S.J., Miller M.J., Yaszemski M.J., Mikos A.G. Poly(propylene fumarate). In: Domb A.J., Kost J., Wiseman D.M., eds. Handbook of biodegradable polymers. Amsterdam: Harwood Academic Publishers; 1997: 87-98.
  39. Pickard R., Reaper J., Wyness L., Cody D.J, McClinton S., N’Dow J. Periurethral injection therapy for urinary incontinence in women. Cochrane Database Syst. Rev. 2007; (2): CD003881.
  40. Rechberger T., Donica H., Baranowski W, Jakowicki J. Female urinary stress incontinence in terms of connective tissue biochemistry. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 1993; 49(3): 187-91.
  41. Reinecke H., Murry C.E. Transmural replacement of myocardium after skeletal myoblast grafting into the heart. Too much of a good thing? Cardiovasc. Pathol. 2000; 9(6): 337-44.
  42. Rogers R.G. Urinary stress incontinence in women. N. Engl. J. Med. 2008; 358: 1029-36.
  43. Roques C., Fattal E., Fromes Y. Comparison of toxicity and transfection efficiency of amphiphilic block copolymers and polycationic polymers in striated muscles. J. Gene Med. 2009; 11(3): 240-9.
  44. Seach N., Mattesich M., Abberton K., Matsuda K., Tilkorn D.J., Rophael J. et al. Vascularized tissue engineering mouse chamber model supports thymopoiesis of ectopic thymus tissue grafts. Tissue Eng. Part C Methods. 2010; 16(3): 543-51.
  45. Sebe P., Doucet C., Cornu J.-N., Ciofu C., Costa P., de Medina S.G. et al. Intrasphincteric injections of autologous muscular cells in women with refractory stress urinary incontinence: a prospective study. Int. Urogynecol. J. 2011; 22(2): 183-9.
  46. Shamliyan Т.А., Kane R.L., Wyman J., Wilt T.J. Systematic review: randomized, controlled trials of nonsurgical treatments for urinary incontinence in women. Ann. Intern. Med. 2008; 148: 459-73.
  47. Shvetsova E.V., Rogovaia O.S., Tkachenko S.B., Kiselev I.V., Vasil'evA.V., Terskikh V.V. Contractile capacity of fibroblasts from different sources in the model of living skin equivalent. Izv. Akad. Nauk. Ser. Biol. 2008; 2: 169-73.
  48. Smythe G.M., Grounds M.D. Exposure to tissue culture conditions can adversely affect myoblast behavior in vivo in whole muscle grafts: implications for myoblast transfer therapy. Cell Transplant. 2000; 9(3): 379-93.
  49. Strasser H., Beijukow S., Marksteiner R., Margreiter E., Hering S., Bartsch G. et al. Stem cell therapy for urinary stress incontinence. Exp. Gerontol. 2004; 39: 1259-65.
  50. Sung H.W., Huang D.M., Chang W.H., Huang R.N., Hsu J.C. Evaluation of gelatin hydrogel crosslinked with various crosslinking agents as bioadhesives: in vitro study. J. Biomed. Mater. Res. 1999; 46(4): 520-30.
  51. Surcel C., Savu C., Chibelean C., Iordache A., Mirvald C., Sinescu I. Comparative analysis of different surgical procedures for female stress urinary incontinence. Is stem cell implantation the future? Rom. J. Morphol. Embryol. 2012; 53(1): 151-4.
  52. Tilkorn D.J. Bedogni A., Keramidaris E., Han X., Palmer J.A., Dingle A.M. et al. Implanted myoblast survival is dependent on the degree of vascularization in a novel delayed implan-tation/ prevascularization tissue engineering model. Tissue Eng. Part A. 2010; 16(1): 165-78.
  53. Toma C., Pittenger M.F., Cahill K.S., Byrne B.J., Kessler P.D. Human mesenchymal stem cells differentiate to a cardiomyo-cyte phenotype in the adult murine heart. Circulation. 2002; 105(1): 93-8.
  54. Trabucco E., Soderberg M., Cobellis L., Torella M., Bystrom B., Ekman-Ordeberg G. et al. Role of proteoglycans in the organization of periurethral connective tissue in women with stress urinary incontinence. Maturitas. 2007; 58(4): 395-405.
  55. Versi E., Cardozo L., Brincat M., Cooper D., Montgomery J., Studd J. Correlation of urethral physiology and skin collagen in postmenopausal women. Br. J. Obstet. Gynaecol. 1988; 95(2): 147-52.
  56. Wagner W., Wein F., Seckinger A., Frankhauser M., Wirkner U., Krause U. et al. Comparative characteristics of mesenchymal stem cells from human bone marrow, adipose tissue, and umbilical cord blood. Exp. Hematol. 2005; 33(11): 1402-16.
  57. Wang H.J., Pieper J., Schotel R., van Blitterswijk C.A., Lamme E.N. Stimulation of skin repair is dependent on fibroblast source and presence of extracellular matrix. Tissue Eng. 2004; 10: 1054-64.
  58. Wang Y., Blasioli D.J., Kim H.J., Kim H.S., Kaplan D.L. Сartilage tissue engineering with silk scaffolds and human articular chondrocytes. Biomaterials. 2006; 27(25): 4434-42.
  59. Wilson T.S., Lemack G.E., Zimmem P.E. Management of intrinsic sphincteric deficiency in women. J. Urol. 2003; 169(5): 1662-9.
  60. Woodbury D., Schwarz E.J., Prockop D.J., Black I.B. Adult rat and human bone marrow stromal cells differentiate into neurons. J. Neurosci. Res. 2000; 61(4): 364-70.
  61. Wynn T.A. Common and unique mechanisms regulate fibrosis in various fibroproliferative diseases. J. Clin. Invest. 2007; 117 (3): 524-9.
  62. Xu Y., Song Y.F., Lin Z.X. Transplantation of muscle-derived stem cells plus biodegradable fibrin glue restores the urethral sphincter in a pudendal nerve-transected rat model. Braz. J. Med. Biol. Res. 2010; 43(11): 1076-83.
  63. Zuk P.A., Zhu M., Mizuno H., Huang J., Futrell J.W., Katz A.J. et al. Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies. Tissue Eng. 2001; 7(2): 211-28.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО «Бионика Медиа», 2012

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах