Методические основы изучения ткани плаценты и оптимизация режимов предподготовки материала


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Целью исследования был анализ факторов, влияющих на морфофункциональные показатели последа, и разработка алгоритма взятия и хранения образцов плаценты, пуповины и оболочек для морфологического и молекулярно-биологических исследований. Представлены сведения из нормативных документов, регламентирующих необходимость морфологического исследования последов, а также обобщены данные литературы об особенностях гистологического, иммуногистохимического, уль-траструктурного, молекулярно-биологических и молекулярно-генетического исследований образцов ткани. Отмечены особенности влияния гипоксии и инфекционного фактора на структуры плаценты. Показано, что методика взятия и хранения образцов плаценты определяется в первую очередь задачами исследования. Представлены методические рекомендации по взятию, фиксации и хранению образцов последа в зависимости от цели, задач и вида исследования. Отмечены особенности изучения плаценты при наличии макроскопических изменений, а также в зависимости от вида родораз-решения. Указано оптимальное время взятия материала (плаценты, плодных оболочек, пупочного канатика) для морфологических и молекулярно-биологических исследований при самопроизвольных и оперативных родах. Для рутинного морфологического исследования последа пригоден материал, хранящийся в холодильнике до двух суток, для молекулярно-биологических исследований необходимо взятие материала сразу после родов. Подчеркнута необходимость параллельного морфологического исследования участка ткани, взятого для молекулярно-биологического анализа, с целью получения объективной характеристики образца и верификации имеющихся изменений. Даны рекомендации по сбору коллекций биологического материала и созданию биобанка, где образцы должны быть разделены по диагнозу, виду биопробы (ткань, кровь, культура клеток, ДНК) и месту (условиям) хранения, определяющих достоверность и эффективность молекулярно-генетических исследований.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Наталья Викторовна Низяева

ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: niziaeva@gmail.com
к.м.н., с.н.с. 2-го патологоанатомического отделения

Юлия Сергеевна Волкова

ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: volcko.yulia@yandex.ru
врач-патологоанатом 2-го патологоанатомического отделения

Светлана Мининхаевна Муллабаева

ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: s_mullabaeva@oparina4.ru
к.м.н., зав. лабораторией по сбору и хранения биоматериалов

Александр Иванович Щеголев

ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: ashegolev@oparina4.ru
д.м.н., профессор, зав. 2-м патологоанатомическим отделением

Список литературы

  1. Пальцев М.А., Казанцева И.А., Зайратьянц О.В., Кактурский Л.В. Порядок патологоанатомического исследования биопсийного (диагностического и операционного) материала. В кн.: Хабриев Р.У., Пальцев М.А., ред. Система добровольной сертификации процессов выполнения патоморфологических (патологоанатомических) исследований и патологоанатомических услуг в здравоохранении. М.: Медицина для всех; 2007; вып. 1: 291-7. [Paltsev M.A., Kazantseva I.A., Zairatyants O.V., Kaktursky L.V. Order of mortem examination of biopsy (diagnostic and surgical) material. In.: Khabriev R.U., Paltsev M.A., ed. System of voluntary processes certification under pathological (pathological) and postmortem studies in health services. M.: Medicine for all; , 2007; MY. 1: 291-7.]
  2. Altshuler G., Deppisch L.M. College of American Pathologists Conference XIX on the Examination of the Placenta: report of the Working Group on indications for placental examination. Arch. Pathol. Lab. Med. 1991; 115(7): 701-3.
  3. Salafia C.M., Vintzileos A.M. Why all placentas should be examined by pathologist in 1990. Am. J. Obstet. Gynecol. 1990; 163(4, Pt 1): 1282-93.
  4. Perry I.J., Beevers D.G., Whincup PH., Bareford D. Predictors of ratio of placental weight to fetal weight in multiethnic community. Br. Med. J. 1995; 310: 436-9.
  5. Roberts V.H., Smith J., McLea S.A., Heizer A.B., Richardson J.L., Myatt L. Effect of increasing maternal body mass index on oxidative and nitrative stress in the human placenta. Placenta. 2009; 30: 169-75.
  6. Nomura Y., Lambertini L., Rialdi A., Lee M., Mystal E.Y., Grabie M. et al. Global methylation in the placenta and umbilical cord blood from pregnancies with maternal gestational diabetes, preeclampsia, and obesity. Reprod. Sci. 2014; 21(1): 131-7.
  7. Nelson D.M., Burton G.J. A technical note to improve the reporting of studies of the human placenta. Placenta. 2011; 32(2): 195-6.
  8. Bush P.G., Mayhew T.M., Abramovich D.R., Aggett P.J., Burke M.D., Page K.R. A quantitative study on the effects of maternal smoking on placental morphology and cadmium concentration. Placenta. 2000; 21: 247-56.
  9. Burd L., Roberts D., Olson M., Odendaal H. Ethanol and the placenta: a review. J. Matern. Fetal Neonatal Med. 2007; 20: 361-75.
  10. Haavaldsen C., Samuelsen S.O., Eskild A. The association of maternal age with placental weight: a population-based study of 536,954 pregnancies. Br. J. Obstet. Gynaecol. 2011; 118(12): 1470-6.
  11. Str0m-Roum E.M., Haavaldsen C., Tanbo T.G., Eskild A. Paternal age, placental weight and placental to birthweight ratio: a population-based study of 590, 835 pregnancies. Hum. Reprod. 2013; 28(11): 3126-33.
  12. Burton G.J., Sebire N.J., Myatt L., Tannetta D., Wang Y.-L., Sadovsky Y. et al. Optimising sample collection for placental research. Placenta. 2014; 35: 9-22. АКУШЕРСТВО И ГИНЕКОЛОГИЯ № 8 /2014 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
  13. Mendez-Figueroa H., Chien E.K., Ji H., Nesbitt N.L., Bharathi S.S., Goetzman E. Effects of labor on placental fatty acid beta oxidation. J. Matern. Fetal Neonatal Med. 2013; 26: 150-4.
  14. Fratelli N., Prefumo F, Andrico S., Lorandi A., Recupero D., Tomasoni G. et al. Effects of epidural analgesia on uterine artery Doppler in labour. Br. J. Anaesth. 2011; 106: 221-4.
  15. Александрова Н.В., Дубова Е.А., Баев О.Р., Щеголев А.И., Сухих Г.Т. Маркеры трансмембранного и энергетического обмена в клетках терминальных ворсин плаценты при спонтанной и индуцированной беременности. Клеточные технологии в биологии и медицине. 2012; 1:19-23. [Alexandrova N.V., Dubova E.A., Baev O.R., Shchegolev A.I., Sukhikh G.T. Markers of transmembrane and energy metabolism in the cells of terminal placental villi during spontaneous and induced pregnancy. Cell technologies in biology and medicine. 2012; 1:19-23.]
  16. Abdulsid A., Hanretty K., Lyall F. Heat shock protein 70 expression is spatially distributed in human placenta and selectively upregulated during labor and preeclampsia. PLoS One. 2013; 8: е 54540.
  17. Roland L., Beauchemin D., Acteau G., Fradette C., St-Pierre I., Bilodeau J.F. Effects of labor on placental expression of superoxide dismutases in preeclampsia. Placenta. 2010; 31: 392-400.
  18. Rodriguez-Prado Y.M., Kong X., Fant M.E. PLAC1 expression decreases in chorionic villi in response to labor. ISRN Obstet. Gynecol. 2013; 2013: 704252.
  19. Lee K.J., Shim S.H., Kang K.M., Kang J.H., Park D.Y., Kim S.H. et al. Global gene expression changes induced in the human placenta during labor. Placenta. 2010; 31: 698-704.
  20. Melvin A., Rocha S. Chromatin as an oxygen sensor and active player in the hypoxia response. Cell. Signal. 2012; 24: 35-43.
  21. Queiros da Mota V., Prodhom G., Yan P., Hohlfheld P., Greub G., Rouleau C. Correlation between placental bacterial culture results and histological cho-rioamnionitis: a prospective study on 376 placentas. J. Clin. Pathol. 2013; 66: 243-8.
  22. Farraj A.A. Randomized placental and cord blood sampling culture in women with preterm and term labour to detect infection. East. Mediterr. Health J. 2000; 6: 272-5.
  23. Leary S.D., Godfrey K.M., Greenaway L.J., Davill V.A., Fall C.H. Contribution of the umbilical cord and membranes to untrimmed placental weight. Placenta. 2003; 24: 276-8.
  24. Teng J., Chang T., Reyes C., Nelson K.B. Placental weight and neurologic outcome in the infant: a review. J. Matern. Fetal Neonatal Med. 2012; 25: 2082-7.
  25. Милованов А.П. Патология системы мать-плацента-плод. М.: Медицина; 1999. 272 с. [Milovanov A.P. Pathology of mother-placenta-fetus system. M.: Medicine; 1999. 272 p.]
  26. Щеголев А.И., Дубова Е.А., Павлов К.А. Морфология плаценты. М.; 2010. 48 с. [Shchegolev A.I., Dubova E.A., Pavlov K.A. The morphology of the placenta. M.; 2010. 48.]
  27. Щеголев А.И., Бурдули Г.М., Дубова Е.А., Павлов К.А. Патология пупочного канатика. М.; 2011. 72 с. [Shchegolev A.I., Burduli G.M., Dubova E.A., Pavlov K.A. Pathology of the umbilical cord. M.; 2011. 72.]
  28. Ионов О.В., Никитина И.В., Бурменская О.В., Непша О.С., Трофимов Д.Ю., Донников А.Е., Митрохин С.Д., Припутневич Т.В., Любасовская Л.А., Дегтярев Д.Н. Роль метода полимеразной цепной реакции в диагностике врожденных и нозокомиальных инфекций у детей. Акушерство и гинекология. 2013; 11: 59-64. [Ionov O.V., Nikitina I.V., Burmenskaya O.V., Nepsha O.S., Trofimov D.Yu., Donnikov A.E., Mitrokhin S.D., Priputnevich T.V., Lyubasovskaya L.A., Degtyarev D.N. Role of PCR assay in the diagnosis of congenital and nosocomial infections in neonatal infants. Obstetrics and Gynecology. 2013; 11: 59-64.]
  29. Benirschke K., Burton G.J. Baergen R.N. Pathology of the human placenta. 6th ed. New York: Springer; 2012. 939 р.
  30. Павлов К.А., Дубова Е.А., Щеголев А.И. Фетоплацентарный ангиогенез при нормальной беременности: роль сосудистого эндотелиального фак тора роста. Акушерство и гинекология. 2011; 3: 11-6. [Pavlov K.A., Dubova E.A., Shchegolev A.I. Fetoplacental angiogenesis during normal pregnancy: a role of vascular endothelial growth factor. Obstetrics and Gynecology. 2011; 3: 11-6]
  31. Wyatt S.M., Kraus F.T., Roh C.R., Elchalal U., Nelson D.M., Sadovsky Y. The correlation between sampling site and gene expression in the term human placenta. Placenta. 2005; 26: 372-9.
  32. Павлов К.А., Дубова Е.А., Щеголев А.И. Фетоплацентарный ангиогенез при нормальной беременности: роль плацентарного фактора роста и ангиопоэтинов. Акушерство и гинекология. 2010; 6: 10-5. [Pavlov K.A., Dubova Ye.A., Shchegolev A.I. Fetoplacental angiogenesis during normal pregnancy: a role of placental growth factor and angiopoietins. Obstetrics and Gynecology. 2010; 6: 10-5]
  33. Walford N., Htun K., Akhilesh M. Detection of atherosis in preeclamptic placentas: comparison of two gross sampling protocols. Pediatr. Dev. Pathol. 2005; 8: 61-5.
  34. Pijnenborg R., Brosens I., Romero R., eds. Placental bed disorders. Basic science and its translation to obstetrics. Cambridge: Cambridge University Press; 2010. 320 р.
  35. Воднева Д.Н., Шмаков Р.Г., Щеголев А.И. Роль маркеров инвазии трофоб-ласта в развитии преэклампсии и опухолевой прогрессии. Акушерство и гинекология. 2013; 11: 9-12. [Vodneva D.N., Shmakov R.G., Shchegolev A.I. Role of markers for trophoblast invasion in the development of preeclampsia and tumor progression. Obstetrics and Gynecology. 2013; 11: 9-12.]
  36. Staff A.C., Ranheim T., Khoury J., Henriksen T. Increased contents of phospholipids, cholesterol, and lipid peroxides in decidua basalis in women with preeclampsia. Am. J. Obstet. Gynecol. 1999; 180: 587-92.
  37. Akane H., Saito F., Yamanaka H., Shiraki A., Imatanaka N., Akahori Y. et al. Methacarn as a whole brain fixative for gene and protein expression analyses of specific brain regions in rats. J. Toxicol. Sci. 2013; 38: 431-43.
  38. Burton G.J. The fine structure of the human placenta as revealed by scanning electron microscopy. Scanning Microsc. 1987; 1: 1811-28.
  39. Devor E.J., Santillan D.A., Santillan M.K. Preeclampsia and MicroRNAs. Proc. Obstet. Gynecol. 2013; 3(1): 1-10.
  40. Погорелова Т.Н., Гунько В.О., Линде В.А. Протеомный профиль плаценты при физиологической беременности и беременности, осложненной пре-эклампсией. Акушерство и гинекология. 2013; 7: 24-8. [Pogorelova T.N., Gunko V.O., Linde VA. Placental proteomic profile during physiological and preeclampsia-complicated pregnancy. Obstetrics and Gynecology. 2013; 7: 24-8.]
  41. Сенявина Н.В., Хаустова С.А., Гребенник Т.К., Павлович С.В. Анализ пуриновых метаболитов в сыворотке материнской крови для оценки риска возникновения патологии беременности. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2013; 155(5): 635-8. [Senyavina N.V., Khaustova S.A., Grebennik T.K., Pavlovich S.V. Analysis of purine metabolites in maternal serum to assess the risk of pregnancy pathology. Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 2013; 155 (5): 635-8.]
  42. Collioni F., Padmanabham N., Yung H., Watson E.D., Cetin I., Tissot van Patot M.C. et al. Suppression of mitochondrial electron transport chain function in the hypoxic human placenta: a role miRNA -210 and protein synthesis inhibition. PloS One. 2013; 8(1): e 55194.
  43. Colleoni F, Morash A.J., Ashmore T., Monk M., Burton G.J., Murray A.J. Cryopreservation of placental biopsies for mitochondrial respiratory analysis. Placenta. 2012; 33: 122-3.
  44. Cindrova-Davies T., Spasic-Boskovic O., Jauniaux E., Charnock-Jones D.S., Burton G.J. Nuclear factor-kappa B, p38, and stress-activated protein kinase mitogen-activated protein kinase signaling pathways regulate proinflammatory cytokines and apoptosis in human placental explants in response to oxidative stress: effects of antioxidant vitamins. Am. J. Pathol. 2007; 170: 1511-20.
  45. Tannetta D.S., Sargent I.L., Linton EA., Redman C.W. Vitamins C and E inhibit apoptosis of cultured human term placenta trophoblast. Placenta. 2008; 29: 680-90.
  46. Male V., Gardner L., Moffett A. Isolation of cells from the feto-maternal interface. Curr. Protoc. Immunol. 2012; 40: 1-11.
  47. Bhatti P., Kampa D., Alexander B.H., McClure C., Ringer D., Doody M.M. et al. Blood spots as an alternative to whole blood collection and the effect of a small monetary incentive to increase participation in genetic association studies. BMC Med. Res. Methodol. 2009; 9: 76.
  48. Matthews A.M., Kaur H., Dodd M., D’Souza J., Liloglou T., Shaw R.J. et al. Saliva collection methods for DNA biomarker analysis in oral cancer patients. Br. J. Oral Maxillofac. Surg. 2013; 51: 394-8.
  49. Верясов В.Н., Савилова А.М., Буяновская О.А., Чулкина М.М., Павлович С.В., Сухих Г.Т. Получение мезенхимальных стромальных кле ток из внезародышевых тканей и их характеристика. Клеточные технологии в биологии и медицине. 2014; 1: 3-9. [Veryasov V.N., Savilova A.M., Buyanovskaya O.A., Chulkina M.M., Pavlovich S.V., Sukhikh G.T. Preparation of mesenchymal stromal cells from the extraembryonic tissues and their characteristics. Cell technologies in biology and medicine. 2014; 1: 3-9.]
  50. Пальцев М.А., Сухих Г.Т., Смирнов В.Н. Терапевтический потенциал стволовых клеток пуповинной крови (неврология и психиатрия). Российские медицинские вести. 2009; 14(2): 84-5. [Paltsev M.A., Sukhikh G.T., Smirnov V.N. The therapeutic potential of cord blood stem cells (neurology and psychiatry). Russian medical news. 2009; 14 (2): 84-5.]

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО «Бионика Медиа», 2014

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах