Факторы роста как прогностические критерии наступления беременности в циклах ЭКО


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Цель исследования. Установить оптимальное время оценки факторов роста на протяжении цикла ЭКО и определить их связь с частотой наступления беременности в циклах ЭКО. Материал и методы. В настоящей работе представлены результаты сравнительного анализа определения содержания исследуемых факторов в цервикальной слизи, полученной в день трансвагинальной пункции (ТВП) фолликулов и в день переноса эмбрионов (ПЭ) в полость матки, у 97 бесплодных женщин, в зависимости от факта наступления беременности в результате ЭКО. Результаты. Было отмечено значительное увеличение содержания гранулоцитарно-макрофагального фактора роста (GM-CSF) и сосудистого эндотелиального фактора роста (VEGF) (р<0,01) в цервикальной слизи, полученной в день ТВП и в день ПЭ у 50 женщин с наступившей беременностью, по сравнению с группой женщин (n=47), у которых беременность не наступила. Уровни GM-CSF и VEGF в цервикальной слизи в день ПЭ были достоверно сопряжены (p<0,05) с наступлением беременности в циклах ЭКО и позволяют прогнозировать ее наступление с вероятностью 69%. Заключение. Наиболее информативными критериями оценки рецептивности эндометрия в цикле ЭКО являются показатели содержания GM-CSF и VEGF в цервикальной слизи в день ПЭ.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Дарико Александровна Ниаури

СПбГУ

Email: office@inform.pu.ru
д.м.н., профессор зав. кафедрой акушерства, гинекологии и репродуктологии медицинского факультета

Александр Мкртичевич Гзгзян

ФГБУ НИИАГ им. Д.О. Отта СЗО РАМН

Email: iagmail@ott.ru
д.м.н., зав. отделением вспомогательных репродуктивных технологий

Игорь Юрьевич Коган

ФГБУ НИИАГ им. Д О. Отта СЗО РАМН

Email: iagmail@ott.ru
д.м.н

Ляиля Харрясовна Джемлиханова

СПбГУ

Email: office@inform.pu.ru
к.м.н. доцент кафедры акушерства, гинекологии и репродуктологии медицинского факультета

Инна Отаровна Крихели

ФГБУ НИИАГ им. Д.О. Отта СЗО РАМН

Email: iagmail@ott.ru
к.м.н., научный сотрудник отделения ВРТ

Ирина Дмитриевна Федорова

ФГБУ НИИАГ им. Д.О. Отта СЗО РАМН

Email: iagmail@ott.ru
к.б.н., с.н.с. отделения ВРТ, старший эмбриолог

Елена Александровна Лесик

ФГБУ НИИАГ им. Д.О. Отта СЗО РАМН

Email: lesike@yandex.ru
к.б.н, с.н.с. отделения ВРТ

Юлия Нажибовна Шарфи

СПбГУ

Email: youlia03@yandex.ru
аспирант кафедры акушерства, гинекологии и репродуктологии медицинского факультета

Евгения Михайловна Шильникова

СПбГУ

Email: shilnikova-j@mail.ru
аспирант кафедры генетики биологического факультета

Александр Васильевич Селютин

ФГБУ НИИАГ им. Д.О. Отта СЗО РАМН

Email: a_selutin@yahoo.com
к.б.н., с.н.с. лаборатории иммунологии

Сергей Алексеевич Сельков

ФГБУ НИИАГ им. Д.О. Отта СЗО РАМН

Email: selkovsa@mail.ru
профессор, д.м.н., зав. лабораторией иммунологии

Список литературы

  1. Sutcliffe A.G., Ludwig M. Outcome of assisted reproduction. Lancet. 2007; 370(9584): 351-9.
  2. Ferraretti A.P., Goossens V., Kupka M., Bhattacharya S., de Mouzon J., Castilla J.A. Assisted reproductive technology in Europe, 2009: results generated from European registers by ESHRE. Hum. Reprod. 2013; 28(9): 2318-31.
  3. Edwards R.G. Human implantation: the last barrier in assisted reproduction technologies? Reprod. Biomed. Online. 2006; 13(6): 887-904.
  4. Wegmann T.G., Lin H., Guilbert L., Mosmann T.R. Bidirectional cytokine interactions in the maternal-fetal relationship: is successful pregnancy a TH2 phenomenon? Immunol. Today. 1993; 14(7): 353-5.
  5. Damario M.A., Lesnick T.G., Lessey B.A., Kowalik A., Mandelin E., Seppälä M., Rosenwaks Z. Endometrial markers of uterine receptivity utilizing the donor oocyte model. Hum. Reprod. 2001; 16(9):1893-9.
  6. Díaz-Gimeno P., Horcajadas J.A., Martínez-Conejero J.A., Esteban F.J., Alamá P., Pellicer A., Simon C. A genomic diagnostic tool for human endometrial receptivity based on the transcriptomic signature. Fertil. Steril. 2011; 95(1): 50-60.
  7. Quinn C.E., Casper R.F. Pinopodes: a questionable role in endometrial receptivity. Hum. Reprod. 2009; 15(2): 229-36.
  8. Quinn С., Ryan Е., Claessens Е.А. The presence of pinopodes in the human endometrium does not delineate the implantation window. Fertil. Steril. 2007; 87(5): 1015-21.
  9. Seo W.S., Jee B.C., Moon S.Y. Expression of endometrial protein markers in infertile women and the association with subsequent in vitro fertilization outcome. Fertil. Steril. 2011; 95(8): 2707-10.
  10. Serafini P.C., Silva I.D., Smith G.D., Motta E.L., Rocha A.M., Baracat E.C. Endometrial claudin-4 and leukemia inhibitory factor are associated with assisted reproduction outcome. Reprod. Biol. Endocrinol. 2009; 7: 30.
  11. Zhioua A., Elloumi H., Fourati S., Merdassi G., Ben Ammar A., Sajia B.S. et al. Morphometric analysis of the human endometrium during the implantation window. Light and transmission electron microscopy study. J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 2012; 41(3): 235-42.
  12. Boomsma C.M., Kavelaars A., Eijkemans M.J., Lentjes E.G., Fauser B.C., Heijnen C.J., Macklon N.S. Endometrial secretion analysis identifies a cytokine profile predictive of pregnancy in IVF. Hum. Reprod. 2009; 24(6): 1427-35.
  13. Gargiulo A.R., Fichorova R.N., Politch J.A., Hill J.A., Anderson D.J. Detection of implantation-related cytokines in cervicovaginal secretions and peripheral blood of fertile women during ovulatory menstrual cycles. Fertil. Steril. 2004; 82(Suppl. 3): 1226-34.
  14. Chen Q.J., Sun X.X., Li L., Gao X.H., Gemzell-Danielsson K., Cheng L.N. Effects of ovarian stimulation on endometrial integrin beta3 and leukemia inhibitory factor expression in the peri-implantation phase. Fertil. Steril. 2008; 89(Suppl. 5): 1357-63.
  15. Bellver J., Garrido N., Remohi J., Pellicer A., Meseguer M. Influence of paternal age on assisted reproduction outcome. Reprod. Biomed. Online. 2008; 17(5): 595-604.
  16. Geisler N., Schünemann J., Weber K., Häner M., Aebi U. Assembly and architecture of invertebrate cytoplasmic intermediate filaments reconcile features of vertebrate cytoplasmic and nuclear lamin-type intermediate filaments. J. Mol. Biol. 1998; 282(3): 601-17.
  17. Karimzade M.A., Oskouian H., Ahmadi S., Oskouian L. Local injury to the endometrium on the day of oocyte retrieval has a negative impact on implantation in assisted reproductive cycles: a randomized controlled trial. Arch. Gynecol. Obstet. 2010; 281(3): 499-503.
  18. Van der Gaast M.H., Beier-Hellwig K., Fauser B.C., Beier H.M., Macklon N.S. Endometrial secretion aspiration prior to embryo transfer does not reduce implantation rates. Reprod. Biomed. Online. 2003; 7(1): 105-9.
  19. Guzeloglu-Kayisli O., Kayisli U.A., Taylor H.S. The role of growth factors and cytokines during implantation: endocrine and paracrine interactions. Semin. Reprod. Med. 2009; 27(1): 62-79.
  20. Li X.F., Gregory J., Ahmed A. Immunolocalisation of vascular endothelial growth factor in human endometrium. Growth Factors. 1994; 11(4): 277-82.
  21. Neufeld G., Cohen T., Gengrinovitch S., Poltorak Z. Vascular endothelial growth factor (VEGF) and its receptors. FASEB J. 1999; 13(1): 9-22.
  22. Mazella J., Tang M., Tseng L. Disparate effects of relaxin and TGFbeta1: relaxin increases, but TGFbeta1 inhibits, the relaxin receptor and the production of IGFBP-1 in human endometrial stromal/decidual cells. Hum. Reprod. 2004; 19(7): 1513-8.
  23. Perrier d’Hauterive S., Charlet-Renard C., Dubois M., Berndt S., Goffin F., Foidart J., Geenen V. Human endometrial leukemia inhibitory factor and interleukin-6: control of secretion by transforming growth factor-beta-related members. Neuroimmunomodulation. 2005; 12(3): 157-63.
  24. Jenkins B.J., Le F., Gonda T.J. A cell type-specific constitutive point mutant of the common β-subunit of the human granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF), interleukin (IL)-3, and IL-5 receptors requires the GM-CSF receptor α-subunit for activation. J. Biol. Chem. 1999; 274(13): 8667-77.
  25. Jokhi P.P., King A., Loke Y.W. Immunology: production of granulocyte-macrophage colony-stimulating factor by human trophoblast cells and by decidual large granular lymphocytes. Hum. Reprod. 1994; 9(9): 1660-9.
  26. Chen F., Duan H., Zhang Y., Wu Y.H. Effect and mechanism of formation of intrauterine adhesion at different doses of oestrogen. Zhonghau Fu Chan Ke Za Zhi. 2010; 45(12): 917-20.
  27. Paiva P., Hannan N.J., Hincks C., Meehan K.L., Pruysers E., Dimitriadis E., Salamonsen L.A. Human chorionic gonadotrophin regulates FGF2 and other cytokines produced by human endometrial epithelial cells, providing a mechanism for enhancing endometrial receptivity. Hum. Reprod. 2011; 26(5): 1153-62.
  28. Srivastava A., Sengupta J., Kriplani A., Roy K.K., Ghosh D. Profiles of cytokines secreted by isolated human endometrial cells under the influence of chorionic gonadotropin during the window of embryo implantation. Reprod. Biol. Endocrinol. 2013; 11: 116.
  29. Jasper M.J., Tremellen K.P., Robertson S.A. Reduced expression of IL-6 and IL-1α mRNAs in secretory phase endometrium of women with recurrent miscarriage. Am. J. Reprod. Immunol. 2007; 73(1): 74-84.
  30. Perricone R., De Carolis C., Giacometti R., Guarino M.D., De Sanctis G., Fontana L. GM-CSF and pregnancy: evidence of significantly reduced blood concentrations in unexplained recurrent abortion efficiently reverted by intravenous immunoglobulin treatment. Am. J. Reprod. Immunol. 2003; 50(3): 232-7.
  31. Hannan N.J., Paiva P., Meehan K.L., Rombauts L.J., Gardner D.K., Salamonsen L.A. Analysis of fertility-related soluble mediators in human uterine fluid identifies VEGF as a key regulator of embryo implantation. Endocrinology. 2011; 152(12): 4948-56.
  32. Spandorfer S.D., Barmat L.I., Liu H.C., Mele C., Veeck L., Rosenwaks Z. Granulocyte macrophage-colony stimulating factor production by autologous endometrial co-culture is associated with outcome for in vitro fertilization patients with a history with multiple implantation failures. Am. J. Reprod. Immunol. 1998; 40(5): 377-81.
  33. Itoh H., Kishore A.H., Lindqvist A., Rogers D.E., Word R.A. Transforming growth factor β1 (TGFβ1) and progesterone regulate matrix metalloproteinases (MMP) in human endometrial stromal cells. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2012; 97(6): E888-97.
  34. Yamamoto T., Kozawa O., Tanabe K., Akamatsu S., Matsuno H., Dohi S., Uematsu N. Involvement of p38 MAP kinase in TGF-β-stimulated VEGF synthesis in aortic smooth muscle cells. J. Cell. Biochem. 2001; 82(4): 591-8.
  35. Jasper M.J., Tremellen K.P., Robertson S.A. Primary unexplained infertility is associated with reduced expression of the T-regulatory cell transcription factor Foxp3 in endometrial tissue. Mol. Hum. Reprod. 2006; 12(5): 301-8.
  36. Agerholm I., Loft A., Hald F., Lemmen J.G., Munding B., Sørensen P.D., Ziebe S. Culture of human oocytes with granulocyte-macrophage colony-stimulating factor has no effect on embryonic chromosomal constitution. Reprod. Biomed. Online. 2010; 20(4): 477-84.
  37. Würfel W. Approaches to a better implantation. J. Assist. Reprod. Genet. 2000; 17(8): 473.
  38. Ziebe S., Loft A., Povlsen B.B., Erb K., Agerholm I., Aasted M.A. et al. Randomized clinical trial to evaluate the effect of granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) in embryo culture medium for in vitro fertilization. Fertil. Steril. 2013; 99(6): 1600-9.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО «Бионика Медиа», 2014

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах