Сравнительный анализ транскриптов клеток кумулюса при использовании различных триггеров овуляции в программах вспомогательных репродуктивных технологий


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Цель исследования. Изучение транскрипционного профиля (транскриптов) клеток кумулюса при использовании агониста гонадотропин рилизинг гормона (а-ГнРГ) или человеческого хорионического гонадотропина (чХГ) в качестве триггера овуляции. Материал и методы. В ходе проведенного исследования были проанализированы 179 образцов кумулюсных клеток от 35 пациенток, проходивших программу ЭКО/ИКСИ. Пациентки были разделены на 2 группы с учетом введенного триггера овуляции: I группа (n=17), где триггером являлся чХГ в дозе 10000 МЕ; II группа (n=18), где триггером являлся а-ГнРГ в дозе 0,2 мг. Был исследован уровень экспрессии мРНК 13 генов в кумулюсных клетках методом полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией (ОТ-ПЦР) в реальном времени Результаты. Были выявлены различия в экспрессии CALM2 (0,08 против 0,05; P<0.0001), TRPM7(0,82 против 0,70; P=0.007), ALCAM(0,26против 0,37; P=.0008) и PfKp (3,46против 4,70; P=0.0005). Все изменения были менее, чем в 2 раза. Экспрессия мРНК гена TP53I3 была выше в клетках кумулюса ооцитов, которые в дальнейшем сформировали бластоцисту (0,3 против 0,23; P=0,0304).

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Снеха Мари Ипен

ГБОУ ВПО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России

Email: dr.snehaeapen@gmail.com
аспирант

Ольга Владимировна Бурменская

ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: o_bourmenskaya@oparina4.ru
д.б.н., научный сотрудник лаборатории молекулярно-генетических методов

Станислав Владиславович Павлович

ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: s_pavlovich@oparina4.ru
к.м.н., ученый секретарь

Лев Алексеевич Левков

ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: l_levkov@oparina4.ru
к.м.н., советник директора, научный консультант по клинической эмбриологии 1-го гинекологического отделения

Анастасия Григорьевна Сыркашева

ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: anast.syrkasheva@gmail.com
научный сотрудник отдела научного планирования и аудита

Татьяна Александровна Кодылева

ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: t_kodyleva@oparina4.ru
эмбриолог 1-го гинекологического отделения

Айдар Назимович Абубакиров

ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: nondoc555@yahoo.com
к.м.н., руководитель 1-го гинекологического отделения

Нонна Годовна Мишиева

ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: nondoc555@mail.ru
д.м.н., в.н.с. 1-го гинекологического отделения

Дмитрий Юрьевич Трофимов

ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: d.trofimov@dna-tech.ru
д.б.н., зав. лабораторией молекулярно-генетических методов

Список литературы

  1. Homburg R. The physiology of ovulation. In: Homburg R. Ovulation induction and controlled ovarian stimulation. A practical guide. Springer; 2014: 7-23.
  2. Humaidan P., Papanikolaou E.G., Tarlatzis B.C. Reply: GnRHa to trigger final oocyte maturation: a time to reconsider. Hum. Reprod. 2010; 25(3): 807-8.
  3. Acevedo B., Gomez-Palomares J.L., Ricciarelli E., Hernândez E.R. Triggering ovulation with gonadotropin-releasing hormone agonists does not compromise embryo implantation rates. Fertil. Steril. 2006; 86(6): 1682-7.
  4. Casper R.F. Reducing the risk of OHSS by GnRH agonist triggering. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2015; 100(12): 4396-8.
  5. Ding L.J., Wang B., Shen X.Y., Yan G.J., Zhang N.Y., Hu Y.L. et al. Withdrawal of GnRH agonist decreases oestradiol and VEGF concentrations in high responders. Reprod. Biomed. Online. 2013; 27(2): 131-9.
  6. Andersen C., Humaidan P., Ejdrup H., Bungum L., Grondahl M., Westergaard L. Hormonal characteristics of follicular flluid from women receiving either GnRH agonist or hCG for ovulation. Hum. Reprod. 2006; 21(8): 2126-30.
  7. Humaidan P., Westergaard L., Mikkelsen L., Fukuda A., Yding Andersen C. Levels of the epidermal growth factor-like peptide amphiregulin in follicular fluid reflect the mode of triggering ovulation: a comparison between gonadotrophin-releasing hormone agonist and urinary human chorionic gonadotrophin. Fertil. Steril. 2011; 95(6): 2034-8.
  8. Cerrillo M., Pacheco A., Rodriguez S., Delgado F., Pellicer A., Garcia-Velasco J. Effect of GnRH agonist and hCG treatment on VEGF, angiopoietin-2, and VE-cadherin: trying to explain the link to ovarian hyperstimulation syndrome. Fertil. Steril. 2011; 95(8): 2517-9.
  9. Haas J., Ophir L., Barzilay E., Yerushalmi G.M., Yung Y., Kedem A. et al. GnRH agonist vs. hCG for triggering of ovulation - differential effects on gene expression in human granulosa cells. PLoS One. 2014; 9(3): e90359.
  10. Gebhardt K.M., Feil D.K., Dunning K.R., Lane M., Russell D.L. Human cumulus cell gene expression as a biomarker of pregnancy outcome after single embryo transfer. Fertil. Steril. 2011; 96(1): 47-52. e2.
  11. Ekart J., Mcnatty K., Hutton J., Pitman J. Ranking and selection of MII oocytes in human ICSI cycles using gene expression levels from associated cumulus cells. Hum. Reprod. 2013; 28(11): 2930-42.
  12. Мартазанова Б.А., Мишиева Н.Г., Абубакиров А.Н. Замена триггера овуляции как метод профилактики развития синдрома гиперстимуляции яичников. Акушерство и гинекология. 2014; 5: 15-8. [Martazanova B.A., Mishieva N.G., Abubakirov A.N. Ovulation trigger replacement as a method for preventing ovarian hyperstimulation syndrome. Akusherstvo i Ginekologiya/ Obstetrics and Gynecology. 2014; (5): 15-8. (in Russian)]
  13. Мартазанова Б.А., Мишиева Н.Г., Ведихина И.А., Аксененко А.А., Ипен С.М., Ибрагимова М.Х., Иванец Т.Ю., Абубакиров А.Н. Гормональный профиль после замены триггера овуляции у женщин с высоким риском развития синдрома гиперстимуляции яичников. Акушерство и гинекология. 2015; 6: 84-90. [Martazanova B.A., Mishieva N.G., Vedikhina I.A., Aksenenko A.A., Eapen S.M., Ibragimova M.Kh., Ivanets T.Yu., Abubakirov A.N. The hormonal profile in women at high risk for ovarian hyperstimulation syndrome after replacement of an ovulation trigger. Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2015; 6: 84-90. (in Russian)]
  14. Engmann L., DiLuigi A., Schmidt D., Nulsen J., Maier D., Benadiva C. The use of gonadotropin-releasing hormone (GnRH) agonist to induce oocyte maturation after cotreatment with GnRH antagonist in high-risk patients undergoing in vitro fertilization prevents the risk of ovarian hyperstimulation syndrome: a prospective randomized controlled study. Fertil. Steril. 2008; 89(1): 84-91.
  15. Gurbuz A.S., Gode F., Uzman M.S., Ince B., Kaya M., Ozcimen N. et al. GnRH agonist triggering affects the kinetics of embryo development: a comparative study. J. Ovarian Res. 2016; 9: 22.
  16. Anderson R.A., Sciorio R., Kinnell H., Bayne R.A., Thong K.J., de Sousa P.A., Pickering S. Cumulus gene expression as a predictor of human oocyte fertilisation, embryo development and competence to establish a pregnancy. Reproduction. 2009; 138(4): 629-37.
  17. Fragouli E., Wells D., Iager A.E., Kayisli U.A., Patrizio P. Alteration of gene expression in human cumulus cells as a potential indicator of oocyte aneuploidy. Hum. Reprod. 2012; 27(8): 2559-68.
  18. Assou S., Haouzi D., De Vos J., Hamamah S. Human cumulus cells as biomarkers for embryo and pregnancy outcomes. Mol. Hum. Reprod. 2010; 16(8): 531-8.
  19. Wathlet S., Adriaenssens T., Segers I., Verheyen G., Van de Velde H., Coucke W. et al. Cumulus cell gene expression predicts better cleavage-stage embryo or blastocyst development and pregnancy for ICSI patients. Hum. Reprod. 2011; 26(5): 1035-51.
  20. Fujiwara H., Tatsumi K., Kosaka K., Sato Y., Higuchi T., Yoshioka S. et al. Human blastocysts and endometrial epithelial cells express activated leukocyte cell adhesion molecule (ALCAM/CD166). J. Clin. Endocrinol. Metab. 2003; 88(7): 3437-43.
  21. Borgbo T., Povlsen B.B., Andersen C.Y., Borup R., Humaidan P., Grondahl M.L. Comparison of gene expression profiles in granulosa and cumulus cells after ovulation induction with either human chorionic gonadotropin or a gonadotropin-releasing hormone agonist trigger. Fertil. Steril. 2013; 100(4): 994-1001.
  22. Yerushalmi G.M., Salmon-Divon M., Yung Y., Maman E., Kedem A., Ophir L. et al. Characterization of the human cumulus cell transcriptome during final follicular maturation and ovulation. Mol. Hum. Reprod. 2014; 20(8): 719-35.
  23. de los Santos M.J., García-Láez V., Beltrán-Torregrosa D., Horcajadas J.A., Martínez-Conejero J.A., Esteban F.J. et al. Hormonal and molecular characterization of follicular fluid, cumulus cells and oocytes from pre-ovulatory follicles in stimulated and unstimulated cycles. Hum. Reprod. 2012; 27(6): 1596-605.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО «Бионика Медиа», 2017

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах