Липидные маркеры неопластической трансформации эпителия шейки матки при заболеваниях, ассоциированных с вирусом папилломы человека


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Цель исследования. Изучение особенностей липидного состава неопластически трансформированного эпителия шейки матки при заболеваниях, ассоциированных с вирусом папилломы человека (ВПЧ). Материал и методы. В исследование была включена 41 пациентка с неопластическими процессами эпителия шейки матки, вызванными ВПЧ, обратившаяся в поликлиническое отделение ФГБУ НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России. Всем включенным в исследование женщинам была проведена биопсия шейки матки (строго по показаниям) с последующим гистологическим исследованием биоптатов и анализом их липидного состава. Качественную и количественную оценку липидных экстрактов биоптатов проводили с помощью масс-спектрометрии с электрораспылительной ионизацией. В результате анализа были идентифицированы липиды, относящиеся к пяти классам: фосфатидилхолины, фосфатидилэтаноламины, сфингомиелины, ди- и триглицериды. Полученные экспериментальные данные были проанализированы с помощью многофакторного метода OPLS-DA. Результаты. Выявлено статистически значимое изменение уровней липидов, относящихся к фосфатидилхолинам (PC 32:0, PC 34:1, PC 36:4, PC 34:0, PC 38:4), этаноламинам (PE 0-46:0, LPE 46:0, PE 0-48:0, LPE 48:0, PE 0-46:1) и сфингомиелинам (SM 34:0, SM 42:2) в тканях, подвергшихся неопластической трансформации вследствие воздействия ВПЧ. Заключение. Данное исследование выявило изменение содержания ряда глицерофосфолипидов и сфинголипидов в неопластически трансформированных тканях шейки матки по сравнению с нормальной тканью. Найденные липиды можно использовать при создании панели для прогнозирования течения цервикальных неоплазий в сторону регресса или малигнизации.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Мария Евгеньевна Некрасова

ФГБУ НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: mashenka_90@mail.ru
аспирант

Виталий Викторович Чаговец

ФГБУ НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: vvchagovets@gmail.com
к.ф-м.н., старший научный сотрудник лаборатории протеомики и метаболомики репродукции человека

Наталия Леонидовна Стародубцева

ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: n_starodubtseva@oparina4.ru
к.б.н., зав. лабораторией протеомики и метаболомики репродукции человека

Алексей Сергеевич Кононихин

ФГБУ НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: konoleha@yandex.ru
к.ф-м.н., научный сотрудник лаборатории протеомики и метаболомики репродукции человека

Динара Фаильевна Салимова

ФГБУ НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: Salimova.l993@mail.ru
специалист лаборатории протеомики и метаболомики репродукции человека

Алиса Олеговна Токарева

Московский физико-технический институт

Email: alisa.tokareva@phystech.edu
аспирант

Вадим Владимирович Лагутин

ФГБУ ФГБУ НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: laggi@mail.ru
научный сотрудник лаборатории биоинформатики

Владимир Александрович Наумов

ФГБУ НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: looongdog@gmail.com
научный сотрудник лаборатории биоинформатики

Нисо Мирзоевна Назарова

ФГБУ НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: grab2@yandex.ru
д.м.н., ведущий научный сотрудник

Владимир Евгеньевич Франкевич

ФГБУ НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: v_frankevich@oparina4.ru
к.ф-м.н., руководитель отдела системной биологии в репродукции

Геннадий Тихонович Сухих

ФГБУ НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: g_sukhikh@oparina4.ru
академик РАН, доктор медицинских наук, профессор, директор

Список литературы

  1. Каприн А.Д., Старинский В.В., Петрова Г.В., ред. Злокачественные новообразования в России в 2015 году (заболеваемость и смертность). М.: МНИОИ им. П.А. Герцена - филиал ФГБУ «НМИРЦ» Минздрава России; 2017.
  2. Arbyn M., Tommasino M., Depuydt C., DiUner J. Are 20 human papillomavirus types causing cervical cancer? J. Pathol. 2014; 234(4): 431-5.
  3. WHO guidelines for screening and treatment of precancerous lesions for cervical cancer prevention. Geneva: WHO; 2013.
  4. Nilsson K., Norberg C., Mossberg A.K., Schwartz S. HPV16 E5 is produced from an HPV16 early mRNA spliced from SD226 to SA3358. Virus Res. 2017; 244: 128-36.
  5. Escobar-Hoyos L.F., Yang J., Zhu J., Cavaïïo J.A., Zhai H., Burke S. Keratin 17 in premalignant and malignant squamous lesions of the cervix: proteomic discovery and immunohistochemical validation as a diagnostic and prognostic biomarker. Mod. Pathol. 2014; 27(4): 621-30.
  6. Стародубцева Н.Л., Назарова Н.М., Зардиашвили М.Д., Бурменская О.В., Бугрова А.Е., Чаговец В.В., Кононихин А.С., Трофимов Д.Ю., Франкевич В.Е., Сухих Г.Т. Комбинация протеомного и транс криптомного подходов для определения риска малигнизации неоплазий шейки матки при папилломавирусной инфекции. Акушерство и гинекология. 2017; 5: 64-71. http://dx.doi.org/10.18565/aig.2017.5.64-71
  7. Зардиашвили М.Д., Франкевич В.Е., Назарова Н.М., Бугрова А.Е., Кононихин А.С., Бржозовский А.Г., Стародубцева Н.Л., Асатурова А.В., Сухих Г.Т. Характеристика изменений протеомного состава цервиковагинальной жидкости при заболеваниях шейки матки, ассоциированных с ВПЧ-инфекцией. Акушерство и гинекология. 2017; 4: 88-94. http://dx.doi.org/10.18565/aig.2017.4.88-94
  8. Jiang S., Li Y., Lin S., Yang H., Guan X.Y., Zhou H. et al. Mass spectrometry-based lipidomics analysis using methyl tert-butyl ether extraction in human hepatocellular carcinoma tissues. Analyt. Methods. 2015; 19(7): 8466-71.
  9. Некрасова М.Е., Назарова Н.М., Стародубцева Н.Л., Чаговец В.В., Кононихин А.С., Франкевич В.Е., Прилепская В.Н. Липидомика: новые перспективы поиска маркеров неоплазий. Акушерство и гинекология. 2017; 3: 34-40.
  10. OC 17-10. Zoidakis I., Lygirou V., Kontostathi G., Vlahou A., Anagnou N.P., Pappa K.I. Cofilin-1 and Cathepsin-D are putative early cervical cancer bio-markers. In: EUROGIN 2015 - HPV infection and related cancers: translating research innovations into improved practice. Seville 04.02.15 - 07.02.15. Spain; 2015: 228.
  11. Zhao Q., He Y., Wang X.L., Zhang Y.X., Wu Y.M. Differentially expressed proteins among normal cervix, cervical intraepithelial neoplasia and cervical squamous cell carcinoma. Clin. Transl. Oncol. 2015; 17(8): 620-31.
  12. Mori N., Wildes F., Takagi T., Glunde K., Bhujwalla Z.M. The tumor microenvironment modulates choline and lipid metabolism. Front. Oncol. 2016; 6: 262.
  13. ASCCP. The society for lower genital tract disorders since 1964. Updated Consensus Guidelines for Managing Abnormal Cervical Cancer Screening Tests and Cancer Precursors. Reprinted -April 2013.
  14. Wold S., Sjostrom M., Eriksson L. PLS-regression: a basic tool of chemometrics. Chemometr. Intell. Lab. Syst. 2001; 58(2): 109-30.
  15. Sud M., Fahy E., Cotter D., Brown A., Dennis E.A., Glass C.K. et al. LMSD: LIPID MAPS structure database. Nucleic Acids Res. 2007; 35(Database issue): D527-32.
  16. Swierczynski J., Hebanowska A., Sledzinski T. Role of abnormal lipid metabolism in development, progression, diagnosis and therapy of pancreatic cancer. World J. Gastroenterol. 2014; 20(9): 2279-303.
  17. Токарева А.О., Чаговец В.В., Чжихао В., Родионов В.В., Кометова В.В., Родионова М.В., Кононихин А. С., Стародубцева Н.Л., Чингин К., Франкевич В.Е., Хуаньвэнь Ч., Сухих Г.Т. Прямая масс-спектрометрия как метод экспресс-идентификации опухолевой ткани у больных раком молочной железы. Акушерство и гинекология. 2017; 4: 119-25. https:// dx.doi.org/10.18565/aig.2017.4.119-125
  18. Kang S., Lee A., Park Y.S., Lee S.C., Park S.Y., Han S.Y. et al. Alteration in lipid and protein profiles of ovarian cancer similarity to breast cancer. Int. J. Gynecol. Cancer. 2011; 21(9): 1566-72.
  19. Altadill T., Dowdy T.M., Gill K., Reques A., Menon S.S., Moiola C.P. et al. Metabolomic and lipidomic profiling identifies the role of the RNA editing pathway in endometrial carcinogenesis. Sci. Rep. 2017; 7(1): 8803.
  20. Sans M., Gharpure K., Tibshirani R., Zhang J., Liang L., Liu J. et al. Metabolic markers and statistical prediction of serous ovarian cancer aggressiveness by ambient ionization mass spectrometry imaging. Cancer Res. 2017; 77(11): 2903-13.
  21. Wang S., Chen X., Luan H., Gao D., Lin S., Cai Z. et al. Matrix-assisted laser desorption/ionization mass spectrometry imaging of cell cultures for the lipidomic analysis of potential lipid markers in human breast cancer invasion. Rapid Commun. Mass Spectrom. 2016; 30(4): 533-42.
  22. Cifkovâ E., Holcapek M., Lisa M., Vrâna D., Gatek J., Melichar B. Determination of lipidomic differences between human breast cancer and surrounding normal tissues using HILIC-HPLC/ESI-MS and multivariate data analysis. Anal. Bioanal. Chem. 2015; 407(3): 991-1002.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах