Особенности липидного состава сыворотки крови женщин в период менопаузального перехода


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Цель: Сравнительная оценка метаболического профиля у женщин в ранней и поздней фазе менопаузального перехода (МП). Материалы и методы: В исследовании приняли участие 125 женщин в период МП. Выполнены определение биохимических показателей углеводного и липидного обмена, мочевой кислоты, С-реактивного белка (СРБ), лептина, адипонектина, анализ липидома сыворотки крови с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии с масс-спектрометрическим детектированием (ВЭЖХ-МС), оценка композиционного состава тела методом двухэнергетической рентгеновской абсорбциометрии. Результаты: В отсутствие значимых различий по композиционному составу тела, биохимическим показателям углеводного и липидного обмена, уровню мочевой кислоты, СРБ, лептина, адипонектина женщины в ранней и поздней фазе МП имели статистически значимые различия по уровням 14 липидов, определяемых с помощью ВЭЖХ-МС. У женщин в поздней фазе МП выявлены более высокие уровни церамида Cer(d18:1/22:0), фосфолипидов OxLPC(24:1(OOOO)), 0xPC(18:0_18:4(Ke,0H)), 0xPC(20:4_14:0(C00H)), PC(18:1_18:1), PC(18:0 20:2), PEt0H(18:0 24:0), PI(18:1_18:2), сфингомиелина SM(d26:0/16:1), которые по результатам корреляционного анализа имели положительную связь с уровнями фолликулостимулирующего гормона, липопротеинов низкой плотности, коэффициента атерогенности, глюкозы, инсулина, индекса H0MA, гликированного гемоглобина, значениями артериального давления. Заключение: Использование ВЭЖХ-МС позволило выявить различия липидного профиля у женщин в ранней и поздней фазе МП, не обнаруживаемые традиционными биохимическими методами. Изменение липидома может являться начальным этапом патогенеза кардиометаболических нарушений у женщин в период МП. Полученные данные о липидах могут быть использованы для дальнейшего изучения различных заболеваний, ассоциированных с менопаузой.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Вероника Игоревна Комедина

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: komedina.veronika@gmail.com
аспирант отделения гинекологической эндокринологии

Светлана Владимировна Юренева

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: syureneva@gmail.com
д.м.н., профессор кафедры акушерства и гинекологии департамента профессионального образования, в.н.с. отделения гинекологической эндокринологии

Виталий Викторович Чаговец

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: vvchagovets@gmail.com
к.ф. -м.н., с.н.с. лаборатории протеомики и метаболомики репродукции человека

Наталья Леонидовна Стародубцева

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: n_starodubtseva@oparina4.ru
к.б.н., заведующая лабораторией протеомики и метаболомики репродукции человека

Список литературы

  1. El Khoudary S.R., Aggarwal B., Beckie T.M., Hodis H.N., Johnson A.E., Langer R.D. et al. Menopause transition and cardiovascular disease risk: implications for timing of early prevention: A Scientific Statement from the American Heart Association. Circulation. 2020; 142(25): 506-32. https://dx.doi.org/10.1161/CIR.0000000000000912.
  2. Юренева С.В., Комедина В.И., Кузнецов С.Ю. Диагностические возможности антропометрических показателей для оценки ожирения у женщин в период менопаузального перехода. Акушерство и гинекология. 2022; 2: 72-9. [Yureneva S.V., Komedina V.I., Kuznetsov S.Yu. Diagnostic accuracy of anthropometric measures for assessing obesity in women during the menopausal transition. Akusherstvo i Ginekologiia/Obstetrics and Gynecology. 2022; 2: 72-9. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2022.2.72-79.
  3. Thurston R.C., Karvonen-Gutierrez C.A., Derby C.A., El Khoudary S.R., Kravitz H.M., Manson J.E. Menopause versus chronologic aging: their roles in women’s health. Menopause. 2018; 25(8): 849-54. https://doi.org/10.1097/GME.0000000000001143.
  4. Юренева С.В., Комедина В.И., Чаговец В.В., Стародубцева Н.Л. Роль липидов, определяемых методом масс-спектрометрии, в развитии кардиометаболических заболеваний у женщин в период менопаузы. Акушерство и гинекология. 2020; 12: 76-80. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2020.12.76-80.
  5. Neeland I.J., Singh S., McGuire D.K., Vega G.L., Roddy T., Reilly D.F. et al. Relation of plasma ceramides to visceral adiposity, insulin resistance and the development of type 2 diabetes mellitus: the Dallas Heart Study. Diabetologia. 2018; 61(12): 2570-9. https://dx.doi.org/10.1007/s00125-018-4720-1.
  6. Gui Y.-K., Li Q., Liu L., Zeng P., Ren R.F., Guo Z.F. et al. Plasma levels of ceramides relate to ischemic stroke risk and clinical severity. Brain Res. Bull. 2020; 158: 122-7. https://dx.doi.org/10.1016/J.BRAINRESBULL.2020.03.009.
  7. Van der Veen J.N., Kennelly J.P., Wan S., Vance J.E., Vance D.E., Jacobs R.L. The critical role of phosphatidylcholine and phosphatidylethanolamine metabolism in health and disease. Biochim. Biophys. Acta Biomembr. 2017; 1859 (9, Pt B): 1558-72. https://dx.doi.org/10.1016/j.bbamem.2017.04.006.
  8. Messina C., Albano D., Gitto S., Tofanelli L., Bazzocchi A., Ulivieri F.M. et al. Body composition with dual energy X-ray absorptiometry: From basics to new tools. Quant. Imaging Med. Surg. 2020; 10(8): 1687-98. https://dx.doi.org/10.21037/QIMS.2020.03.02.
  9. Tang Q., Li X., Song P., Xu L. Optimal cut-off values for the homeostasis model assessment of insulin resistance (HOMA-IR) and pre-diabetes screening: developments in research and prospects for the future. Drug Discov. Ther. 2015; 9(6): 380-5. https://dx.doi.org/10.5582/ddt.2015.01207.
  10. Bovolini A., Garcia J., Andrade M.A., Duarte J.A. Metabolic syndrome pathophysiology and redisposing factors. Int. J. Sports Med. 2021; 42(3): 199-214. https://dx.doi.org/10.1055/a-1263-0898.
  11. Choi R.H., Tatum S.M., Symons J.D., Summers S.A., Holland W.L. Ceramides and other sphingolipids as drivers of cardiovascular disease. Nature reviews. Cardiology. 2021;18(10): 701-11. https://dx.doi.org/10.1038/s41569-021-00536-1.
  12. Mantovani A., Bonapace S., Lunardi G., Canali G., Dugo C., Vinco G. et al. Associations between specific plasma ceramides and severity of coronary-artery stenosis assessed by coronary angiography. Diabet. Metab. 2020; 46(2): 150-7. https://dx.doi.org/10.1016/j.diabet.2019.07.006.
  13. Fretts A.M., Jensen P.N., Hoofnagle A., McKnight B., Howard B.V., Umans J. et al. Plasma ceramide species are associated with diabetes risk in participants of the Strong Heart Study. J. Nutr. 2020; 150(5): 1214-22. https://dx.doi.org/10.1093/jn/nxz259.
  14. Wigger L., Cruciani-Guglielmacci C., Nicolas A., Denom J., Fernandez N., Fumeron F. et al. Plasma dihydroceramides are diabetes susceptibility biomarker candidates in mice and humans. Cell Rep. 2017; 18(9): 2269-79. https://dx.doi.org/10.1016/j.celrep.2017.02.019.
  15. Im S.-S., Park H.Y., Shon J.C., Chung I.-S., Cho H.C., Liu K.-H. et al. Plasma sphingomyelins increase in pre-diabetic Korean men with abdominal obesity. PLoS ONE. 2019; 14: e0213285. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0213285.
  16. Kikas P., Chalikias G. Cardiovascular implications of sphingomyelin presence in biological membranes. Eur. Cardiol. Rev. 2018; 13: 42. https://dx.doi.org/10.15420/ecr.2017:20:3.
  17. Bochkov V., Gesslbauer B., Mauerhofer C., Philippova M., Erne P., Oskolkova O.V. Pleiotropic effects of oxidized phospholipids. Free Rad. Biol. Med. 2017; 111: 6-24. https://dx.doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2016.12.034.
  18. Lopez-Lopez A., Godzien J., Soldevilla B., Gradillas A., LopezGonzdlvez A., Lens-Pardo A. et al. Oxidized lipids in the metabolic profiling of neuroendocrine tumors - Analytical challenges and biological implications. J. Chromatogr. A. 2020; 1625: 461233. https://dx.doi.org/10.1016/j.chroma.2020.461233.
  19. Nie J., Yang J., Wei Y., Wei X. The role of oxidized phospholipids in the development of disease. Mol. Aspects Med. 2020; 76: 100909. https://dx.doi.org/10.1016/J.MAM.2020.100909.
  20. Furse S., de Kroon A.I.P.M. Phosphatidylcholine’s functions beyond that of a membrane brick. Mol. Membr. Biol. 2015; 32(4): 117-9. https://dx.doi.org/10.3109/09687688.2015.1066894.
  21. Calzada E., Onguka O., Claypool S.M. Phosphatidylethanolamine metabolism in health and disease. Int. Rev. Cell Mol. Biol. 2016; 321: 29-88. https://dx.doi.org/10.1016/bs.ircmb.2015.10.001.
  22. Llano D.A., Devanarayan V. Serum phosphatidylethanolamine and lysophosphatidylethanolamine levels differentiate Alzheimer’s disease from controls and predict progression from mild cognitive impairment. J. Alzheimers Dis. 2021; 80(1): 311-9. https://dx.doi.org/10.3233/JAD-201420.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах