Модуляция внутривенными иммуноглобулинами взаимодействия NK-клеток и трофобласта


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Иммуноглобулины для внутривенного введения (ВВИГ) применяют в терапии бесплодия. Предполагается влияние ВВИГ на цитотоксическую функцию NK-клеток, однако механизм действия ВВИГ остается неясным. Цель: Оценка влияния препарата ВВИГ на цитотоксичность NK-клеток в отношении клеток-мишеней линии К-562 и клеток трофобласта линии JEG-3. Материалы и методы: Оценивали цитотоксичность клеток линии NK-92 в отношении клеток линии К-562 и клеток трофобласта линии JEG-3 в присутствии препарата ВВИГ, а также цитотоксичность NK-клеток периферической крови в составе фракции мононуклеаров к клеткам линии JEG-3 в присутствии препарата ВВИГ. Мононуклеары получали из периферической крови здоровых небеременных доноров (группа 1, n=10) и здоровых небеременных фертильных женщин (группа 2, n=12). Результаты: Гибель клеток линии JEG-3 в присутствии мононуклеаров группы 1 и препарата ВВИГ в концентрациях 12 и 6 мг/мл была ниже, чем без препарата ВВИГ (p<0,01 и p<0,05, соответственно). Гибель клеток линии JEG-3 в присутствии мононуклеаров группы 2 и препарата ВВИГ в концентрациях 12, 6 и 1,5 мг/мл была ниже, чем без препарата ВВИГ (p<0,001, p<0,001 и p<0,01, соответственно). Заключение: Цитотоксичность NK-клеток в отношении клеток трофобласта в присутствии препарата ВВИГ в модели их контактного взаимодействия снижена. Требуются дальнейшие исследования возможности прогнозирования эффективности терапии ВВИГ пациенток с различными формами репродуктивной патологии.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Валентина Анатольевна Михайлова

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»

с.н.с. лаборатории межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий

Алина Алексеевна Давыдова

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»

м.н.с. лаборатории межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий

Дмитрий Олегович Баженов

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»

м.н.с. лаборатории межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий

Анастасия Андреевна Ковалева

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»

лаборант лаборатории межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий

Валерия Алексеевна Загайнова

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»

м.н.с., врач акушер-гинеколог отделения вспомогательных репродуктивных технологий

Игорь Юрьевич Коган

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»

д.м.н., чл. -корр. РАН, профессор, директор

Олеся Николаевна Беспалова

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»

д.м.н., заместитель директора по научной работе

Александр Мкртичевич Гзгзян

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»

д.м.н., руководитель отделения вспомогательных репродуктивных технологий

Дмитрий Игоревич Соколов

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»

д.б.н., заведующий лабораторией межклеточных взаимодействий, отдел иммунологии и межклеточных взаимодействий

Сергей Алексеевич Сельков

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»

заслуженный деятель науки РФ, профессор, руководитель отдела иммунологии и межклеточных взаимодействий

Список литературы

  1. Robertson S.A., Jin M., Yu D., Moldenhauer L.M., Davies M.J., Hull M.L., Norman R.J. Corticosteroid therapy in assisted reproduction - immune suppression is a faulty premise. Hum. Reprod. 2016; 31(10): 2164-73. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dew186.
  2. Makrigiannakis A., Petsas G., Toth B., Relakis K., Jeschke U. Recent advances in understanding immunology of reproductive failure. J. Reprod. Immunol. 2011; 90(1): 96-104. https://dx.doi.org/1016/jad2011.03.006.
  3. Агнаева А.О., Беспалова О.Н., Соколов Д.И., Сельков С.А., Коган И.Ю. Роль естественных киллеров (NK-клеток) в репродуктивных потерях. Журнал акушерства и женских болезней. 2017; 66(3): 143-156. https://dx.doi.org/10.17816/jowd663143-156.
  4. Lee S.K., Na B.J., Kim J.Y., Hur S.E., Lee M., Gilman-Sachs A. et. al. Determination of clinical cellular immune markers in women with recurrent pregnancy loss. Am. J. Reprod. Immunol. 2013; 70(5): 398-411. https://dx.doi.org/10.1111/aji.12137.
  5. Ahmadi M., Ghaebi M., Abdolmohammadi-Vahid S., Abbaspour-Aghdam S., Hamdi K., Abdollahi-Fard S. et al. NK cell frequency and cytotoxicity in correlation to pregnancy outcome and response to IVIG therapy among women with recurrent pregnancy loss. J. Cell Physiol. 2019; 234(6): 9428-37. https://dx.doi.org/10.1002/jcp.27627.
  6. Sacks G., Yang Y., Gowen E., Smith S., Fay L., Chapman M. Detailed analysis of peripheral blood natural killer cells in women with repeated IVF failure. Am. J. Reprod. Immunol. 2012; 67(5): 434-42. https://dx.doi.org/10.1111/j.1600-0897.2012.01105.x.
  7. Salazar M.D., Wang W.J., Skariah A., He Q., Field K., Nixon M. et al. Post-hoc evaluation of peripheral blood natural killer cell cytotoxicity in predicting the risk of recurrent pregnancy losses and repeated implantation failures. J. Reprod. Immunol. 2022; 150: 103487. https://dx.doi.org/10.1016/j.jri.2022.103487.
  8. Seshadri S., Sunkara S.K. Natural killer cells in female infertility and recurrent miscarriage: a systematic review and meta-analysis. Hum. Reprod. Update. 2014; 20(3): 429-38. https://dx.doi.org/10.1093/humupd/dmt056.
  9. Karami N., Boroujerdnia M.G., Nikbakht R., Khodadadi A. Enhancement of peripheral blood CD56(dim) cell and NK cell cytotoxicity in women with recurrent spontaneous abortion or in vitro fertilization failure. J. Reprod. Immunol. 2012; 95(1-2): 87-92. https://dx.doi.org/10.1016/j.jri.2012.06.005.
  10. Polanski L.T., Barbosa M.A., Martins W.P., Baumgarten M.N., Campbell B., Brosens J. et al. Interventions to improve reproductive outcomes in women with elevated natural killer cells undergoing assisted reproduction techniques: a systematic review of literature. Hum. Reprod. 2014; 29(1): 65-75. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/det414.
  11. Ho Y.K., Chen H.H., Huang C.C., Lee C.I., Lin P.Y., Lee M.S. et al. Peripheral CD56( + )CD16(+) NK cell populations in the early follicular phase are associated with successful clinical outcomes of intravenous immunoglobulin treatment in women with repeated implantation railure. Front. Endocrinol. (Lausanne). 2019; 10: 937. https://dx.doi.org/10.3389/fendo.2019.00937.
  12. Chernyshov V.P., Dons'koiB.V., Sudoma I.O., Goncharova Y.O. Multiple immune deviations predictive for IVF failure as possible markers for IVIG therapy. Immunol. Lett. 2016; 176: 44-50. https://dx.doi.org/10.1016/j.imlet.2015.12.010
  13. Shimada S., Takeda M., Nishihira J., Kaneuchi M., Sakuragi N., Minakami H. et al. A high dose of intravenous immunoglobulin increases CD94 expression on natural killer cells in women with recurrent spontaneous abortion. Am. J. Reprod. Immunol. 2009; 62(5): 301-7. https://dx.doi.org/10.1111/j.1600-0897.2009.00739.x.
  14. Han A.R., Lee S.K. Immune modulation of i.v. immunoglobulin in women with reproductive failure. Reprod. Med. Biol. 2018; 17(2): 115-24. https://dx.doi.org/10.1002/rmb2.12078.
  15. Apps R., Murphy S.P., Fernando R., Gardner L., Ahad T., Moffett A. Human leucocyte antigen (HLA) expression of primary trophoblast cells and placental cell lines, determined using single antigen beads to characterize allotype specificities of anti-HLA antibodies. Immunology. 2009; 127(1): 26-39. https://dx.doi.org/10.1111/j.1365-2567.2008.03019.x.
  16. Huhn O., Zhao X., Esposito L., Moffett A., Colucci F., Sharkey A.M. How do uterine natural Killer and innate lymphoid cells contribute to successful pregnancy? Front. Immunol. 2021; 12: 607669. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2021.607669.
  17. Gong J.H., Maki G., Klingemann H.G. Characterization of a human cell line (NK-92) with phenotypical and functional characteristics of activated natural killer cells. Leukemia. 1994; 8(4): 652-8.
  18. Drew S.I., Terasaki P.I., Billing R.J., Bergh O.J., Minowada J., Klein E. Group-specific human granulocyte antigens on a chronic myelogenous leukemia cell line with a Philadelphia chromosome marker. Blood. 1977; 49(5): 715-8.
  19. Kohler P.O., Bridson W.E. Isolation of hormone-producing clonal lines of human choriocarcinoma. J. Clin. Endocrinol. Metab. 1971; 32(5): 683-7. https://dx.doi.org/10.1210/jcem-32-5-683.
  20. Manaster I., Goldman-Wohl D., Greenfield C., Nachmani D., Tsukerman P., Hamani Y. et al. MiRNA-mediated control of HLA-G expression and function. PLoS One. 2012; 7(3): e33395. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0033395.
  21. Bespalova 0., Bakleicheva M., Ivashchenko T., Tral T., Tolibova G., Kogan I. Expression of HLA-G and KIR2DL4 receptor in chorionic villous in missed abortion. Gynecol. Endocrinol. 2020; 36(Suppl. 1): 43-7. https://dx.doi.org/10.1080/09513590.2020.1816716.
  22. Robson A., Lash G.E., Innes B.A., Zhang J.Y., Robson S.C., Bulmer J.N. Uterine spiral artery muscle dedifferentiation. Hum. Reprod. 2019; 34(8): 1428-38. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dez124.
  23. Arumugam T.V., Tang S.C., Lathia J.D., Cheng A., Mughal M.R., Chigurupati S. et al. Intravenous immunoglobulin (IVIG) protects the brain against experimental stroke by preventing complement-mediated neuronal cell death. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2007; 104(35): 14104-9. https://dx.doi.org/10.1073/pnas.0700506104.
  24. Zhu C., Anderson A.C., Schubart A., Xiong H., Imitola J., Khoury S.J. et al. The Tim-3 ligand galectin-9 negatively regulates T. helper type 1 immunity. Nat. Immunol. 2005; 6(12): 1245-52. https://dx.doi.org/10.1038/ni1271.
  25. Wang F., Hou H., Wu S., Tang Q., Huang M., Yin B. et al. Tim-3 pathway affects NK cell impairment in patients with active tuberculosis. Cytokine. 2015; 76(2): 270-9. https://dx.doi.org/10.1016/j.cyto.2015.05.012.
  26. So E.C., Khaladj-Ghom A., Ji Y., Amin J., Song Y., Burch E. et al. NK cell expression of Tim-3: First impressions matter. Immunobiology. 2019; 224(3): 362-70. https://dx.doi.org/10.1016/j.imbio.2019.03.001.
  27. Holmannova D., Kolackova M., Kondelkova K., Kunes P., Krejsek J., Andrys C. CD200/CD200R paired potent inhibitory molecules regulating immune and inflammatory responses; Part I: CD200/CD200R structure, activation, and function. Acta Medica (Hradec Kralove). 2012; 55(1): 12-7. https://dx.doi.org/10.14712/18059694.2015.68.
  28. Barclay A.N., Wright G.J., Brooke G., Brown M.H. CD200 and membrane protein interactions in the control of myeloid cells. Trends Immunol. 2002; 23(6): 28590. https://dx.doi.org/10.1016/s1471-4906(02)02223-8.
  29. Clark D.A., Wong K., Banwatt D., Chen Z., Liu J., Lee L. et al. CD200-dependent and nonCD200-dependent pathways of NK cell suppression by human IVIG. J. Assist. Reprod. Genet. 2008; 25(2-3): 67-72. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-008-9202-9.
  30. Сельков С.А., Соколов Д.И., Чепанов С.В. Иммунорегуляторные эффекты иммуноглобулинов для внутривенного введения. Медицинская иммунология. 2013; 15(1): 5-12.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО «Бионика Медиа», 2022

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах