Оценка эффективности in vitro компонентов препарата «Депантол» против биопленок, сформированных вагинальными микроорганизмами

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Цель: Оценка эффективности in vitro компонентов препарата «Депантол» против биопленок, сформированных вагинальными микроорганизмами.

Материалы и методы: Исследовано 33 клинических изолята чистых культур микроорганизмов, выделенных из вагинального биотопа и образующих бактериальные пленки: G. vaginalis (2 изолята), E. coli (3 изолята), K. pneumoniae (3 изолята), K. piersonii (1 изолят), C. freundii (3 изолята), A. baumannii (3 изолята), S. agalactiae (3 изолята), E. faecalis (3 изолята), S. aureus (3 изолята), и дрожжеподобных грибов рода Candida (9 изолятов).

Для исследования использовали плотные и жидкие селективные питательные среды. Идентификацию микроорганизмов проводили методом MALDI-TOF-масс-спектрометрии (Bruker Microflex). Способность к образованию биопленок оценивали по модифицированному протоколу Christensen et al. (1985).

Для оценки эффективности действия in vitro компонентов препарата «Депантол» против биопленок использовали разные разведения компонентов препарата (хлоргексидина биглюконат, декспантенол, макроголы).

Результаты: Все 33 клинических изолята образовывали биопленки разной степени плотности. Декспантенол в исследуемых концентрациях и макрогол не оказали влияния на биопленки. Хлоргексидина биглюконат 1% раствор оказывал разрушающее действие на биопленки, сформированные большинством вагинальных бактерий. Это в первую очередь G. vaginalis – оба тестируемых изолята, все E. coli, клинический изолят K. piersonii, все E. faecalis, S. aureus и все изоляты дрожжеподобных грибов рода Candida, как C. albicans, так и C. non-albicans (C. parapsilosis и C. glabrata). Среди трех изолятов K. pneumoniae, C. freundii, A. baumannii, S. agalactiae разрушение биопленок имело место у двух.

Заключение: Среди компонентов препарата «Депантол» эффективность хлоргексидина биглюконата 1% раствора по действию на бактериальные пленки в отношении Gardnerella vaginalis, Escherichia coli, Klebsiella piersonii, Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus и дрожжеподобных грибов рода Candida, как C. albicans, так и C. non-albicans (C. parapsilosis и C. glabrata), была 100%. В отношении других микроорганизмов она составила 70%.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Кира Валентиновна Шалепо

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»; ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Автор, ответственный за переписку.
Email: 2474151@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-3002-3874

к.б.н., с.н.с. отдела медицинской микробиологии; доцент кафедры клинической лабораторной диагностики ФП и ДПО

Россия, Санкт-Петербург; Санкт-Петербург

Елена Владимировна Спасибова

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»; ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Email: elena.graciosae@gmail.com
ORCID iD: 0009-0002-6070-4651

врач-бактериолог лаборатории клинической микробиологии; ассистент кафедры клинической лабораторной диагностики ФП и ДПО

Россия, Санкт-Петербург; Санкт-Петербург

Ольга Викторовна Будиловская

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»; ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Email: o.budilovskaya@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-7673-6274

к.м.н., с.н.с. группы экпериментальной микробиологии; ассистент кафедры клинической лабораторной диагностики ФП и ДПО

Россия, Санкт-Петербург; Санкт-Петербург

Анна Александровна Крысанова

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»; ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Email: krusanova.anna@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4798-1881

к.м.н., с.н.с. отдела медицинской микробиологии; ассистент кафедры клинической лабораторной диагностики ФП и ДПО

Россия, Санкт-Петербург; Санкт-Петербург

Татьяна Алексеевна Хуснутдинова

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»; ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Email: husnutdinovat@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-2742-2655

к.м.н., с.н.с. группы экпериментальной микробиологии; ассистент кафедры клинической лабораторной диагностики ФП и ДПО

Россия, Санкт-Петербург; Санкт-Петербург

Александра Сергеевна Чеберя

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»; ФГБОУ ВО «Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова»

Email: alexa-vorobjeva.09@yandex.ru
ORCID iD: 0009-0008-1091-5753

лаборант-исследователь лаборатории микробиологии; студентка 6 курса

Россия, Санкт-Петербург; Санкт-Петербург

Александр Романович Чеберя

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»; ФГБОУ ВО «Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова»

Email: sanekcheberya@yandex.ru
ORCID iD: 0009-0006-9058-6720

лаборант-исследователь лаборатории микробиологии; студент 6 курса

Россия, Санкт-Петербург; Санкт-Петербург

Алевтина Михайловна Савичева

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта»; ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Email: savitcheva@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-3870-5930

д.м.н., профессор, Заслуженный деятель науки РФ, заведующая отделом медицинской микробиологии; заведующая кафедрой клинической лабораторной диагностики ФП и ДПО

Россия, Санкт-Петербург; Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Limoli D.H., Jones C.J., Wozniak D.J. Bacterial extracellular polysaccharides in biofilm formation and function. Microbiol. Spectr. 2015; 3(3): 10.1128/microbiolspec.MB-0011-2014. https://dx.doi.org/10.1128/microbiolspec.MB-0011-2014.
  2. Atiencia-Carrera M.B., Cabezas-Mera F.S., Tejera E, Machado A. Prevalence of biofilms in Candida spp. bloodstream infections: A meta-analysis. PLoS One. 2022; 17(2): e0263522. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0263522.
  3. Cangui-Panchi S.P., Ñacato-Toapanta A.L., Enríquez-Martínez L.J., Reyes J., Garzon-Chavez D., Machado A. Biofilm-forming microorganisms causing hospital-acquired infections from intravenous catheter: A systematic review. Curr. Res. Microb. Sci. 2022; 3: 100175. https://dx.doi.org/10.1016/ j.crmicr.2022.100175.
  4. Yin W., Wang Y., Liu L., He J. Biofilms: the microbial "Protective Clothing" in extreme environments. Int. J. Mol. Sci. 2019; 20(14): 3423. https:// dx.doi.org/10.3390/ijms20143423.
  5. Cangui-Panchi S.P., Ñacato-Toapanta A.L., Enríquez-Martínez L.J., Salinas-Delgado G.A., Reyes J., Garzon-Chavez D. et al. Battle royale: Immune response on biofilms - host-pathogen interactions. Curr. Res. Immunol. 2023; 4: 100057. https://dx.doi.org/10.1016/j.crimmu.2023.100057.
  6. Ciarolla A.A., Lapin N., Williams D., Chopra R., Greenberg D.E. Physical approaches to prevent and treat bacterial biofilm. Antibiotics (Basel). 2022; 12(1): 54. https://dx.doi.org/10.3390/antibiotics12010054.
  7. Hall-Stoodley L., Stoodley P., Kathju S., Høiby N., Moser C., Costerton J.W. et al. Towards diagnostic guidelines for biofilm-associated infections. FEMS Immunol. Med. Microbiol. 2012; 65(2): 127-45. https://dx.doi.org/10.1111/j.1574-695X.2012.00968.x.
  8. Lebeaux D., Chauhan A., Rendueles O., Beloin C. From in vitro to in vivo models of bacterial biofilm-related infections. Pathogens. 2013; 2(2): 288-356. https://dx.doi.org/10.3390/pathogens2020288.
  9. Bjarnsholt T., Ciofu O., Molin S., Givskov M., Høiby N. Applying insights from biofilm biology to drug development - can a new approach be developed?. Nat. Rev. Drug Discov. 2013; 12(10): 791-808. https://dx.doi.org/10.1038/nrd4000.
  10. Swidsinski A., Mendling W., Loening-Baucke V., Swidsinski S., Dörffel Y., Scholze J. et al. An adherent Gardnerella vaginalis biofilm persists on the vaginal epithelium after standard therapy with oral metronidazole. Am J Obstet Gynecol. 2008; 198(1): 97.e1-6.1. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2007.06.039.
  11. Machado A., Jefferson K.K., Cerca N. Interactions between Lactobacillus crispatus and bacterial vaginosis (BV)-associated bacterial species in initial attachment and biofilm formation. Int. J. Mol. Sci. 2013; 14(6): 12004-12. https://dx.doi.org/10.3390/ijms140612004.
  12. Савичева А.М., Крысанова А.А., Шалепо К.В., Спасибова Е.В., Будиловская О.В., Хуснутдинова Т.А., Тапильская Н.И., Коган И.Ю., Свидзинский А.В., Свидзинская С. Применение метода флуоресцентной гибридизации in situ в диагностике бактериального вагиноза. Акушерство и гинекология. 2023; 12: 68-77. [Savicheva A.M., Krysanova A.A., Shalepo K.V., Spasibova E.V., Budilovskaya O.V., Khusnutdinova T.A., Tapilskaya N.I., Kogan I.Yu., Swidsinski A.V., Swidsinski S. Application of fluorescent in situ hybridization in the diagnosis of bacterial vaginosis. Obstetrics and Gynecology. 2023; (12): 68-77. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565aig.2023.129.
  13. Савичева А.М., Спасибова Е.В., Шалепо К.В. Исследование чувствительности Streptococcus agalactiae, выделенных из урогенитального тракта, к действующим веществам, входящим в состав препарата «Депантол». Российский вестник акушера-гинеколога. 2017; 17(6): 96-100. [Savicheva A.M., Spasibova E.V., Shalepo K.V. Investigation of the sensitivity of Streptococcus agalactiae isolated from the urogenital tract to the active substances included in the composition of Depantol. Russian Bulletin of Obstetrician-Gynecologist. 2017; 17(6): 96-100. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.17116/rosakush201717696-100.
  14. Gristina A.G., Costerton J.W. Bacterial adherence to biomaterials and tissue. The significance of its role in clinical sepsis. J. Bone Joint Surg. Am. 1985; 67: 264-73.
  15. LaFleur M.D., Kumamoto C.A., Lewis K. Candida albicans biofilms produce antifungal-tolerant persister cells. Antimicrob. Agents Chemother. 2006; 50(11): 3839-46. https://dx.doi.org/10.1128/AAC.00684-06.
  16. Lewis K. Riddle of biofilm resistance. Antimicrob. Agents Chemother. 2001; 45(4): 999-1007. https://dx.doi.org/10.1128/AAC.45.4.999-1007.2001.
  17. Zhao A., Sun J., Liu Y. Understanding bacterial biofilms: From definition to treatment strategies. Front Cell Infect. Microbiol. 2023; 13: 1137947. https://dx.doi.org/10.3389/fcimb.2023.1137947.
  18. Шалепо К.В., Михайленко Т.Г., Савичева А.М. Роль бактериальных пленок в формировании хронических патологических процессов во влагалище и эндометрии. Журнал акушерства и женских болезней. 2016; 65(4): 65-75. [Shalepo K.V., Mihailenko T.G., Savicheva A.M. The role of bacterial biofilms in the development of chronic pathological processes in the vagina and endometrium. Journal of Obstetrics and Women's Diseases. 2016; 65(4): 65-75. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.17816/ JOWD65465-75.
  19. Wang S., Zhao Y., Breslawec A.P., Liang T., Deng Z., Kuperman L.L. et al. Strategy to combat biofilms: a focus on biofilm dispersal enzymes. NPJ Biofilms Microbiomes. 2023; 9(1): 63. https://dx.doi.org/10.1038/s41522-023-00427-y.
  20. Harris J.B., Monir R.L., Schoch J.J. Chlorhexidine gluconate for antisepsis in preterm neonates: A review of safety and efficacy. Pediatr. Dermatol. 2024; 41(5): 786-92. https://dx.doi.org/10.1111/pde.15709.
  21. Sionov R.V., Steinberg D. Targeting the holy triangle of quorum sensing, biofilm formation, and antibiotic resistance in pathogenic bacteria. Microorganisms. 2022; 10(6): 1239. https://dx.doi.org/10.3390/microorganisms10061239.
  22. Shen Y., Stojicic S., Haapasalo M. Antimicrobial efficacy of chlorhexidine against bacteria in biofilms at different stages of development. J. Endod. 2011; 37(5): 657-61. https://dx.doi.org/10.1016/j.joen.2011.02.007.
  23. Alvendal C., Mohanty S., Bohm-Starke N., Brauner A. Anti-biofilm activity of chlorhexidine digluconate against Candida albicans vaginal isolates. PLoS One. 2020; 15(9): e0238428. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0238428.
  24. Kramer A., Assadian O., Koburger-Janssen T. Antimicrobial efficacy of the combination of chlorhexidine digluconate and dexpanthenol. GMS Hyg. Infect. Control. 2016; 11: Doc24. https://dx.doi.org/10.3205/ dgkh000284.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рисунок. Действие 1 % раствора хлоргексидина биглюконата, входящего в состав препарата «Депантол», на биопленки, образованные клиническими изолятами вагинальных микроорганизмов, участвующих в эксперименте

Скачать (757KB)
Метаданные

© ООО «Бионика Медиа», 2024