Cytokines and monoamines in pathogenesis of multiple sclerosis

Cover Page


Cite item

Full Text

Abstract

The article presents the results of research of cytokines (α- and ß-interferons and tumor necrosis factor-а) and monoamines (adrenalin, noradrenalin, dopamin, serotonin) in blood and cerebrospinal fluid in 151 patients with multiple sclerosis. The correlation between immune, biochemical changes and clinical activity and course of disease were revealed. The immunocorrection with α-interferon is recommended.

Full Text

Патогенез рассеянного склероза (PC), caмого распространенного демиелинизирующего заболевания центральной нервной системы (ЦНС), остается предметом обсуждения исследователей различных областей науки — иммунологии, нейрохимии и т.д.

В настоящее время доказанным является аутоиммунный механизм повреждения олигодендроцита и миелина при PC, в реализации которого основную роль играют иммунокомпетентные клетки периферического и центрального происхождения (лимфоциты, макро фаги, микроглия, астроциты). Формирование так называемого тримолекулярного комплекса, который включает молекулу ГКГ 2 класса антигенпрезентирующей клетки, расщепленный пептид антигена в молекуле ГКГ 2 класса и Т-клеточный рецептор на CD4+ Т-лимфоците, является первым этапом иммунного ответа после захвата и расщепления антигена макрофагом [14]. В дальнейшем основная роль в активации различных субпопуляций Т и В-клеток, микроглии, астроцитов отводится цитокинам [интерлейкины (ИЛ), интерфероны (ИФ), факторы некроза опухоли (ФНО), колониестимулирующие факторы и различные ростковые факторы], являющимся межклеточними медиаторами иммунного ответа [1].

Открытие способности клеток ЦНС — микроглии и астроцитов экспрессировать ряд цитокинов при индукции их активными Т-лимфоцитами явилось новым этапом в изучении патогенеза PC [2]. Так, было выявлено, что при обострении процесса глиальные клетки экспрессируют ИФ-γ , ФНО, ИЛ-1, ИЛ-2, ИЛ-6. Это подтверждается данными исследования прижизненных стереотаксических биоптатов мозга — в области бляшек PC и спинно-мозговой жидкости у этих больных [15]. По мнению большинства исследователей, основная роль в гибели олигодендроцита отводится ФНО-α -[3], который в норме не регистрируется в мозге. Кроме прямого цитотоксического действия, ФНО- α оказывает действие опосредованно, через активацию синтазы окиси азота (NO) в макрофагах и микроглии, что приводит к усиленному образованию NO и его токсичного соединения пероксинитрита; последний является одним из самых известных токсичных свободнорадикальных соединений, способных вызвать деструкцию мембран олигодендроцита и миелина [10]. Кроме вышесказанного, ФНО регулирует синтез молекул адгезии ICAM-1 (Intercellular Adhesion Molecule-1), VCAM-1 (Vascular Cell Adhesion Molecule-1) и их соответствующие рецепторы LFA-1 (Lymphocyte Function associated Antigen-1), VLA-4 (Very Late Antigen-4) [8], повышение которых регистрируется при обострении PC или неуклонно прогрессирующем течении заболевания. С другой стороны, та кие цитокины, как ИФ-α и ИФ-ß, ИЛ-10, трансформирующий ростковый фактор-ß (ТРФ-ß), повышая активность Т-супрессоров, способны оказывать защитное действие. Повышение их уровня наблюдается при доброкачественной форме PC и ремиссии заболевания [17].

Помимо участия цитокинов в формировании иммунного ответа, выявлена их способность активировать ряд клеточных ферментных систем, тем самым вмешиваясь в обмен активных биологических соединений, к которым относится ряд нейропептидов, нейротрансмиттерных аминокислот и моноаминов. Например, при СПИД деменции было выявлено усиление синтеза хинолиновой кислоты — промежуточного метаболита об мена серотонина. Это может быть обусловлено ИФ-у, который способен активировать фермент индоламин-2-3-диоксигеназу. Как известно, хинолиновая кислота является эндогенным экзайтотоксином [9].

На формирование иммунного ответа в ЦНС оказывают влияние различные классы соединений: нейротрансмиттеры, нейропептиды, гормоны. Лимфоциты, как и глиальные клетки, экспрессируют ряд соответствующих рецепторов: α- и ß-адренергические, допамин ергические, серотонинергические, опиатные и т.д., через которые осуществляется регуляция иммунного ответа [13]. Понятие нейроиммуно модуляторного комплекса предполагает не толь ко влияние на иммунокомпетентные клетки, но и обратную связь. Ряд цитокинов регулирует обмен нейротрансмиттеров, участвует в формировании поведенческих реакций, механизмах сна и бодрствования. К настоящему времени установлено, что адреналин (А), норадреналин (НА), серотонин (5-окситрипта мин, 5-ОТ) активируют Т супрессоры, что играет защитную роль при PC, так же как и ГАМК. Допамин, наоборот, стимулирует активность Т хелперов и N-киллеров, что может усугублять течение патологического процесса [6].

Взаимоотношение цитокинов и моноаминов до конца не выяснено. В настоящее время показано, что при PC происходит повышение в 2,5 раза плотности ß-адренергических рецепторов на субпопуляции Т-супрессорных лимфоцитов. Повышение плотности этих рецепторов, по мнению ряда исследователей, отражает снижение метаболизма катехоламинов при PC [5]; отмечено, что симпатэктомия у мышей с ЭАЭМ (экспериментальный аллергический энцефаломиелит) вызывает те же изменения ß-адренорецепторов Т супрессоров, а течение ЭАЭМ у этих мышей утяжеляется и приобретает неуклонно прогрессирующий характер [И]. Доказано, что у животных, перенесших симпатэктомию, резко повышается активность иммунокомпетентных клеток, а способность макрофагов секретировать ФНО повышается в 2 раза. Предполагается, что нарушения метаболизма катехоламинов являются фактором, способствующим развитию неуклонно прогрессирующего течения PC в связи с недостаточной функциональной активностью Т супрессоров [4]. В связи с этим предполагается оправданным использование ß-адреномиметиков [6].

Нами были исследованы у 151 больного PC активность ИФ-α и ИФ-γ, ФНО, содержание катехоламинов (А, НА, дофамин) в сыворотке крови и ликворе, а также основные параметры серотонинового обмена (общее содержание 5-ОТ, обратный захват 5-ОТ, плотность имипраминовых рецепторов в тромбоцитах) в крови у 59 больных PC.

Группу сравнения составили 48 здоровых доноров крови и 20 больных с хирургической патологией, которым производилась спинномозговая анестезия при оперативных вмешательствах. Для последующего анализа больные PC были разделены на группы в зависимости от характера течения и формы заболевания, активности патологического процесса и степени неврологического дефицита по шкале Куртцке. Обследован 151 больной PC в возрасте от 16 до 50 лет (средний возраст 31,4 года), в их числе 63 мужчины и 88 женщин. Длительность заболевания составляла от 3 дней до 25 лет, в среднем 6,7 года С цереброспинальной формой было 130 пациентов, с церебральной — 18, со спинальной — 3. Дебют заболевания (до 2 мес от появления первых симптомов) наблюдался у 29 человек, ремиттирующее течение у 77 больных (среди них 55 — с обострением процесса, 22 в стадии ремиссии), прогредиентное — у 45 (из них 18 с первично и 27 — со вторично-прогредиентным течением процесса). Легкий неврологический дефицит в 1—3 балла определялся у 83, средняя степень у 57, тяжелый неврологический дефицит — у 11 больных. У всех больных в сыворотке крови определялась спонтанная продукция ИФ-α , ИФ-у и ФНО, а также индуцированная in vitro. В качестве индукторов α- ИФ и γ-ИФ использовались соответственно вирус болезни Ньюкасла (10 ЦПД 50 на 1 лейкоцит) и фитогемагглютинин (10 у/мл). Активность ФНО определяли по цитотоксическому действию разведений биологических жидкостей на чувствительные клетки L-929, обработанные актиномицином D (Wong P.N., 1985). Изучение содержания катехоламинов проводили с использованием методик ионообменной высокоэффективной жидкостной хроматографии, а изучение серотонинового обмена в тромбоцитах — с использованием радиолигандных методов.

По полученным данным, у больных PC, как и в контрольной группе, в сыворотке крови не зарегистрировано спонтанной продукции ИФ-α и ИФ-γ. В ликворе больных спонтанная активность ИФ составила 25,1 ±1,84 ед., р<0,001; ФНО — 0,6±0,12 ед., р<0,01 (в группе контроля — 0), что свидетельствовало о напряженности иммунореактивности в ЦНС при PC.

Индуцированная лейкоцитами крови цитокиновая продукция составила для ИФ-α 308,2±27,18 ед., для ИФ-γ — 39,8±6,0 ед., для ФНО — 63,45±8,85 ед. (в контроле соответственно 307,2±45,8; 26,8±1,98; р<0,05). Повышение ИФ- γ и ФНО у больных PC соответствует современным представлениям об их роли в демиелинизации и формировании иммунного ответа в ЦНС.

Наиболее интересными результаты оказались при их сопоставлении в разных группах больных. (Полученные результаты отражены в табл. 1, 2). При исследовании активности ФНО в зависимости от активности процесса было выявлено, что наиболее высокие показатели встречаются при дебюте заболевания в первые 2 нед от его начала. В последующем активность ФНО при дебюте снижается (80,0±23,4 ед. и 46,0±8,1 ед. соответственно; р< 0,01). Полученные данные подтверждают мнение большинства исследователей об участии ФНО в развитии демиелинизации на самых ранних этапах. Мнение, что ФНО отражает остроту процесса, подтверждается и нашими данными: высокий уровень при обоcтрении существенно снижался при ремиссии заболевания (40,4±5,0 ед. и 19,3±6,1 ед. соответственно; р<0,01). Показателем остроты процесса может служить также индуцированная продукция ИФ-γ в сыворотке крови. Повышение ИФ-у выявлено при дебюте заболевания независимо от длительности (36,0±6,9 ед. в первые 2 нед; соответственно 37,0±4,1 ед. в последующие сроки дебюта; р>0,5). Эти результаты, в отличие от ФНО, указывают на большую стабильность и инертность показателей ИФ-γ. Однако при обострении заболевания отмечается достоверное повышение ИФ-γ по сравнению с ремиссией (43,3±3,8 ед. и 29,0±3,4 ед. соответственно; р<0,01). Повышение индуцированной продукции ФНО и ИФ-γ отмечено и при прогредиентном течении. При первично прогредиентном течении величина ФНО и ИФ- γ составляет 76,0±17,5 ед. и 45,0±8,3 ед. соответственно. При ремиттирующем прогредиентном течении 56,6± 12,8 ед. и 48,0±6,8 ед. соответственно (см. табл. 1).

 

Таблица 1. Определение содержания цитокинов в зависимости от активности и характера патологического процесса при рассеянном склерозе

Группы обследованных лиц

Цитокиновая реакция лейкоцитов

ФНО (ед.)

ИФ-γ (ед.)

Иф-а (ед.)

Дебют до 2 нед (n = 10)

80,0±23,4

36,0±6,7

168,0±28,0

Дебют более 2 нед (п = 20)

46,0±8,1

37,0=4=4,1

240,0±23,0

Ремиттирующее течение — ремиссия (п = 22)

19,3±6,1

29,0±3,4

378,0±45,0

Ремиттирующее течение — обострение (n =55)

40,4±5,0

43,3±3,8

301,0±22,0

Первично-прогредиентное течение (n = 18)

76,0±17,5

45,0±8,3

227,0±33,0

Ремиттирующе-прогредиентное течение (n =26)

56,6±12,8

48,0±6,8

225,0 ±29,5

р 1 —2

<0,01

>0,5

<0,05

р 3—4

<0,01

<0,01

>0,05

р 3—5

<0,001

<0,01

<0,05

р 5—6

>0,05

>0,5

>0,5

 

Величины ФНО и ИФ-γ при первом и втором типах прогредиентного течения достоверно отличаются от показателей в норме и при ремиссии заболевания. Интересно отметить, что показатели ФНО при прогредиентном течении достоверно отличаются и от показателей ФНО при обострении заболевания. Таким образом, показатель ФНО отражает не только степень остроты процесса, но и злокачественность течения. Последнее утверждение находит свое подтверждение и в нарастании величины ФНО по мере углубления неврологического дефицита: показатели ФНО в группах больных с легкой, средней и тяжелой степенью неврологического дефицита (по шкале Куртцке) составляют соответственно 22,2±4,9 ед., 48,1 ±5,7 ед. и 55,0±2,1 ед.; р<0,001. Увеличение продукции по мере нарастания неврологического дефицита зарегистрировано при исследовании ИФ-γ (35,0±2,1 ед., 47,4±4,8 ед. и 54,0±13,3 ед. соответственно; р<0,001) (табл. 2).

 

Таблица 2. Определение содержания цитокинов в зависимости от степени патологического дефицита

Группы обследованных лиц

Цитокиновая реакция лейкоцитов

ФНО (ед.)

ИФ-γ (ед.)

Иф-α(ед.)

Легкая степень (1—3 балла) (n = 83)

22,2±4,9

35,0=4=2,1

304,5±20,0

Средняя степень (4—6 баллов) (n =57)

48,1 ±5,7

47,4±4,8

217,0±18,4

Тяжелая степень (7—10 баллов) (n = 11)

55,0±21,0

54,0±13,3

280,0±64,5

р 1—2

<0,001

<0,01

<0,01

р 1—3

<0,001

>0,2

>0,5

 

Следует отметить, что при корреляционном анализе наблюдается обратная зависимость этих показателей от величины содержания ИФ-α в этих группах больных. Особо низкие цифры ИФ-α выявлены при дебюте заболевания с длительностью до 2 нед (168,0±28,0 ед.), которые достоверно отличались при дебюте заболева ния с более длительным сроком (240,0±23,0 ед.; р<0,05) и при обострении PC (301,0±22,0 ед.; р<0,01). Полученные данные указывают на угнетение синтеза ИФ-α на ранней острой стадии процесса, что требует соответствую щей иммунокоррекции. Такое же значительное снижение показателей ИФ-α выявлено при первично прогредиентном течении PC (227,0±33,0 ед.), они достоверно не отличались от показателей при раннем дебюте (р>0,05). Таким образом, эта группа больных также нуждается в иммунокоррекции.Исследование спонтанной продукции ИФ в ликворе выявило достоверное повышение его уровня до 25,1 ±1,84 ед. при полном отсутствии в группе сравнения, р<0,01. Обнаружение спонтанной продукции ИФ во всех группах больных PC вне зависимости от формы, длительности и активности процесса указывает на постоянно текущие иммунологические процессы в ЦНС, сопровождающиеся интенсивной экспрессией комплекса цитокинов.

Для уточнения отдельных нейроиммуно-модуляторных механизмов у 59 больных PC определялось содержание катехоламинов (НА, А, ДА) в крови и ликворе и основные пара метры серотонинового обмена. Выявлено достоверное повышение НА в ликворе боль ных по сравнению с контрольной группой (152,8±19,6 и 110,0±41,6 соответственно; р<0,05). Учитывая, что НА обладает способностью активировать Т-супрессоры, можно предположить, что повышение НА во всех группах больных PC является компенсаторным механизмом для улучшения функционального состояния Т-супрессоров. Однако это явление не может служить единственной причиной повышения НА. Механизмы регуляции и обмена катехоламинов до настоящего времени до конца не выяснены.

Исследование общего содержания 5-ОТ в тромбоцитах при PC в целом по группе не выявило достоверных отличий. Учитывая сходство действия 5-ОТ с НА на Т-супрессоры, можно предполагать, что любое новышение 5-ОТ является положительным фактором для формирования характера течения заболевания. Это предположение основано на факте более высокого уровня 5-ОТ при минимальных двигательных нарушениях по шкале Куртцке (1—3 балла) по сравнению с грубым неврологическим дефицитом (5,5±0,5 и 1,0±0,6 соответственно; р<0,05).

Полученные данные определенно указывают на несомненную роль цитокинов в патогенезе PC. Проведенные исследования могут служить основанием для назначения иммуно-корригирующей терапии α-ИФ больным PC [7-12].

Это согласуется и с мнением ряда исследователей, которые наряду с ß-ИФ рекомендуют использовать человеческий лейкоцитарный α-ИФ как при ремиттирующем, так и при прогредиентном течении.

Таким образом, результаты проведенных исследований подтверждают важное значение цитокинов в формировании демиелинизирующего процесса. Выявленные корреляции уровня ИФ и ФНО с активностью и характером течения PC, а также со степенью неврологического дефицита служат основанием для разработки новых критериев активности патологического процесса и его прогнозирова ния и, что особенно важно, для определения показаний к иммунокорригирующей терапии α-ИФ.

Результаты исследования моноаминов при PC указывают на сложность патогенетических механизмов диемиелинизации, регуляции иммунного ответа и являются основанием для использования препаратов, регулирующих моно аминовый обмен при PC.

×

About the authors

B. T. Khaidarov

Research Institute of Neurology, Russian Academy of Medical Sciences; Research Institute of Epidemiology and Microbiology named after V.I. acad. N.F. Gamalei RAMS; VTSPZ RAMS

Author for correspondence.
Email: info@eco-vector.com
Russian Federation, Moscow; Moscow; Moscow

V. Р. Kuznetsov

Research Institute of Neurology, Russian Academy of Medical Sciences; Research Institute of Epidemiology and Microbiology named after V.I. acad. N.F. Gamalei RAMS; VTSPZ RAMS

Email: info@eco-vector.com
Russian Federation, Moscow; Moscow; Moscow

М. N. Zakharova

Research Institute of Neurology, Russian Academy of Medical Sciences; Research Institute of Epidemiology and Microbiology named after V.I. acad. N.F. Gamalei RAMS; VTSPZ RAMS

Email: info@eco-vector.com
Russian Federation, Moscow; Moscow; Moscow

D. L. Belyaev

Research Institute of Neurology, Russian Academy of Medical Sciences; Research Institute of Epidemiology and Microbiology named after V.I. acad. N.F. Gamalei RAMS; VTSPZ RAMS

Email: info@eco-vector.com
Russian Federation, Moscow; Moscow; Moscow

V. P. Barhatova

Research Institute of Neurology, Russian Academy of Medical Sciences; Research Institute of Epidemiology and Microbiology named after V.I. acad. N.F. Gamalei RAMS; VTSPZ RAMS

Email: info@eco-vector.com
Russian Federation, Moscow; Moscow; Moscow

О. S. Brusov

Research Institute of Neurology, Russian Academy of Medical Sciences; Research Institute of Epidemiology and Microbiology named after V.I. acad. N.F. Gamalei RAMS; VTSPZ RAMS

Email: info@eco-vector.com
Russian Federation, Moscow; Moscow; Moscow

А. А. Babayants

Research Institute of Neurology, Russian Academy of Medical Sciences; Research Institute of Epidemiology and Microbiology named after V.I. acad. N.F. Gamalei RAMS; VTSPZ RAMS

Email: info@eco-vector.com
Russian Federation, Moscow; Moscow; Moscow

L. S. Askarova

Research Institute of Neurology, Russian Academy of Medical Sciences; Research Institute of Epidemiology and Microbiology named after V.I. acad. N.F. Gamalei RAMS; VTSPZ RAMS

Email: info@eco-vector.com
Russian Federation, Moscow; Moscow; Moscow

А. D. Konysova

Research Institute of Neurology, Russian Academy of Medical Sciences; Research Institute of Epidemiology and Microbiology named after V.I. acad. N.F. Gamalei RAMS; VTSPZ RAMS

Email: info@eco-vector.com
Russian Federation, Moscow; Moscow; Moscow

I. A. Zavalishin

Research Institute of Neurology, Russian Academy of Medical Sciences; Research Institute of Epidemiology and Microbiology named after V.I. acad. N.F. Gamalei RAMS; VTSPZ RAMS

Email: info@eco-vector.com
Russian Federation, Moscow; Moscow; Moscow

References

  1. Зимина И.В., Лопухин Ю.М., Арион В.Я. Кожа как иммунный орган: Клеточные элементы и цитокины // Иммунология.—1994.—№ 1.—С.8—13.
  2. Benveniste E.N. Inflammatory cytokines within central nervous system: sources, function and mechanism of action // An. J. Physiol.—1992—Vol.263.-P. 1—16.
  3. Benvenuto R., Parolli M., Buttinelle C. Tumor necrosis factor alpha and interferon-gamma synthesis by cerebrospinal fluidderived T-cell clones in multiple sclerosis // Ann. N. J. Acad. Sсi.—1992,—Vol.690.—P.341—346.
  4. Chelmicka-Schorr E. et. al. Chemical sympathectomy augments the severity of experimental allergic encephalomyelids // J. Neuroimmunol.—1988.—Vol. 17,—P.347—350.
  5. Chelmicka-Schorr E., Arnason B.G. Nervous system — Immune system interactions and their role in multiple sclerosis // Annals of neurol.—1994.—Vol.36.—P.29—33.
  6. Ellison J.W. et al. Design Strategies in Multiple Sclerosis Clinical Trials // Annals of neurology.—1994.—Vol.36.— P.108—113.
  7. Jacobs L., Johnson K.P. A brief history of tne use of interferons as treatment of multiple sclerosis // Arch. Neurol.—
  8. . —Vol. 51—P.1245—1252.
  9. Hartung H.P. et al. Circulating adhesion molecules and inflammatory, mediators in demyelination // Neurology.—
  10. —Vol.45.—P.22—32.
  11. Heyes M.P. Lackner A. AIDS-dementia and excitotoxicity // J. Neurochem.—1992— Vol.55.—P.338—341.
  12. Ignarro L.J. Nitric Oxide // Hypotension.—1990.— Vol. 16.—P.477—483.
  13. Karaszevski J.W., Reder A., Anlas B., Arnason B. Increased high affinity beta-adrenergic receptor densities and cyclic AMP responses of CD8 cells in multiple sclerosis // J. Neuroimmunol.—1993.—Vol.43.—P. 1—8.
  14. Medenda R.F. et al. Plasmapheresis combined with interferon: an effective therapy for multiple sclerosis // J. Clin.—Apheresis.—1994— Vol.9.—P.222—227.
  15. Me Carthy K.D., Salm A. Astroglial receptors and their regulation of intermediate filament protein phosphorylation // Glial and Cell Receptor.—CD. H.Kimetberg; New York: Raven Press.—1989.—P.1—23.
  16. Raine C.S. The Immunology of the multiple sclerosis // Annals of Neurol.—1994.—Vol.36.—P.61—73.
  17. Ransohoff R.M., Estes M.L. Astrocyte expression of major histocompatibility complete gene products in multiple sclerosis brain tissue obtained by stereotactic biopsy // Arch. Neurol.—1991.—Vol.48.-P. 1244—1246.
  18. Werner H. et al. Interaction between lymphocytes and neurotransmitters // Annals of the New York Academy of Sciences—1988,—Vol.496.—P.312— 316.
  19. Whitaker J.N. Rationale for immunotherapy in multiple sclerosis // Annals of Neurol.—1994.—Vol.36.— P. 103—108.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 1996 Khaidarov B.T., Kuznetsov V.Р., Zakharova М.N., Belyaev D.L., Barhatova V.P., Brusov О.S., Babayants А.А., Askarova L.S., Konysova А.D., Zavalishin I.A.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 75562 от 12 апреля 2019 года.


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies