Влияние холодной гелиевой плазмы на состояние свободнорадикальных процессов в крови при экспериментальной термической травме


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Целью работы явилось изучение влияния гелиевой холодной плазмы (пять ежедневных процедур по 1 мин) на окислительный метаболизм крови крыс с экспериментальной термической травмой. Эксперимент выполнен на 30 половозрелых крысах-самцах Вистар, разделенных на три равных по численности группы. Первая группа животных (л=10) - интактная. Крысам второй и третьей групп (л=10 в каждой) моделировали контактный термический ожог (площадь - 10% поверхности тела) по собственной методике, проводили местное лечение раны левомеколем. Животным третьей группы дополнительно проводили курс, включавший пять ежедневных процедур обработки ожоговой раны (1 мин), локализованной на коже спины, потоком гелиевой холодной плазмы. Расстояние от края «плазменного факела» до обрабатываемой поверхности равнялось 1,0-1,2 см. Холодную плазму получали с помощью специальной установки, использующей принцип СВЧ-индуцированной ионизации газового потока. В качестве газаносителя плазмы использовали баллонный гелий марки А. Интенсивность перекисного окисления в плазме и мембранах эритроцитов исследовали методом Ғе-индуцированной биохемилюминесценции по светосумме последней. Анализ кривой биохемилюминесценции позволял рассчитывать общую антиоксидантную активность плазмы крови. Установлено, что обработка экспериментальной ожоговой раны холодной гелиевой плазмой оказывает положительное влияние на метаболизм крови крыс, позволяя нивелировать проявления окислительного стресса и оказывая антиоксидантное действие. Выявлено, что данный эффект реализуется как в плазме крови, так и в мембранах эритроцитов.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

А. К Мартусевич

Приволжский исследовательский университет; Ассоциация российских озонотерапевтов

Email: cryst-mart@yandex.ru
д.б.н., руководитель лаборатории медицинской биофизики, Университетская клиника; ученый секретарь г. Нижний Новгород, Россия

А. Г Галка

Приволжский исследовательский медицинский университет; Институт прикладной физики РАН

к.ф.-м.н., науч.сотрудник, лаборатория медицинской биофизики, Университетская клиника; науч. сотрудник, лаборатория моделирования космической плазмы г. Нижний Новгород, Россия

Е. С Голыгина

Приволжский исследовательский медицинский университет

лаборант-исследователь, лаборатория медицинской биофизики, Университетская клиника г. Нижний Новгород, Россия

С. Ю Краснова

Приволжский исследовательский медицинский университет

мл. науч. сотрудник, лаборатория медицинской биофизики, Университетская клиника г. Нижний Новгород, Россия

К. Л Беляева

Приволжский исследовательский медицинский университет

лаборант-исследователь, лаборатория медицинской биофизики, Университетская клиника г. Нижний Новгород, Россия

Список литературы

  1. Воробьев А.В., Мартусевич А.К., Соловьева А.Г., Размахов А.М., Лузан А.С., Дмитриев А.Д. Некоторые физикобиохимические свойства биологических жидкостей крыс при модельной термической травме. Бюллетень экспериментальной медицины и биологии. 2009; 147 (4): 404-406.
  2. Мартусевич А.К., Соловьева А.Г., Краснова С.Ю., Янин Д.В., Галка А.Г., Костров А.В. Влияние гелиевой холодной плазмы на метаболические и физико-химические параметры крови человека in vitro. Биомедицина. 2018; 2: 47-58.
  3. Мартусевич А.К., Соловьева А.Г., Галка А.Г., Козлова Л.А., Янин Д.В. Влияние гелиевой холодной плазмы на метаболизм эритроцитов. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2019; 167 (2): 144-146.
  4. Alkawareek M.Y., Gorman S.P., Graham W.G., Gilmore B.F. Potential cellular targets and antibacterial efficacy of atmospheric pressure non-thermal plasma. Int J. Antimicrob. Agents. 2014; 43: 154-160.
  5. Brun P., Pathak S., Castagliuolo I. et al. Helium generated cold plasma finely regulates activation of human fibroblastlike primary cells. Plos ONE. 2014; 9 (8): e104397.
  6. Ermolaeva S.A., Varfolomeev A.F., Chernukha M.Yu. et al. Bactericidal effects of non-thermal argon plasma in vitro, in biofilms and in the animal model of infected wounds. J. Med. Microbiol. 2011; 60: 75-83.
  7. Flynn P.B., Busetti A., Wielogorska E. et al. Potential cellular targets and antibacterial efficacy of atmospheric pressure non-thermal plasma. Sci. Rep. 2016; 6: 26320.
  8. Hoffmann C., Berganza C., Zhang J. Cold Atmospheric Plasma: methods of production and application in dentistry and oncology. Medical Gas Research. 2013; 3: 21.
  9. Jawaid P., Rehman M. U., Zhao Q.L. et al. Helium-based cold atmospheric plasma-induced reactive oxygen species-mediated apoptotic pathway attenuated by platinum. J. Cell. Mol. Med. 2016; 20 (9): 1737-1748.
  10. Martusevich A.K., Galka A.G., Karuzin K.A., Tuzhilkin A.N., Malinovskaya S.L. Cold helium plasma as a modifier of free radical processes in the blood: in vitro study. AIMS Biophysics. 2021; 8 (1): 34-40.
  11. Popova T.N., Sukhoveeva O.V., Makeeva A.V. et al. Synthesis and effect of biguanide derivatives on biochemiluminescence and level of reduced glutathione in rat blood serum and brain under ischemia-reperfusion conditions. Pharm Chem J. 2011; 45: 359-362.
  12. Wiegand C., Fink S., Beier O. et al. Dose- and time-dependent cellular effects of cold atmospheric pressure plasma evaluated in 3D skin models. Skin Pharmacol. Physiol. 2016; 29: 257-265

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ИД "Русский врач", 2021