Эффект ацетонового экстракта листьев Agrimonia Pilosa Ledeb. на амилазу и липазу

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Введение. В последние годы значительный интерес вызывают пищеварительные ферменты для таргетированного воздействия на метаболические пути. Лекарственные растения богаты различными биологически активными соединениями и в сравнении с синтетическими ингибиторами обладают меньшей токсичностью в качестве ингибирующих лигандов желудочно-кишечных ферментов. В пищевой практике возможно расширение спектра применения экстрактов листьев Agrimonia pilosa Ledeb.

Цель исследования – определение содержания фенольных соединений и флавоноидов в ацетоновом экстракте листьев A. pilosa и оценка его влияния на ферментативную активность панкреатических ферментов амилазы и липазы.

Материал и методы. Для опреледения активности панкреатических ферментов использовались in vitro методы с использованием искуственных субтратов, синтезированных для специфического взаимодействия с липазой и амилазой.

Результаты. Обогащенный полифенольными соединениями ацетоновый экстракт листьев A. pilosa ингибировал активность пищеварительных ферментов в моделях in vitro. При этом ингибирование амилазы оказалось значительнее, чем липазы.

Выводы. Эффект A. pilosa на липазу ранее уже был предметом изучения, однако, по мнению авторов, исследования влияния ацетонового экстракта листьев A. pilosa на амилазу не проводились, что придает новизну полученным данным. Полученные результаты открывают перспективу для дальнейшего проведения исследований в этом направлении.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Е. В. Соколова

ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт лекарственных и ароматических растений»

Автор, ответственный за переписку.
Email: eka9739@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-7605-9688
SPIN-код: 3578-1374

к.б.н., вед. науч. сотрудник

Россия, 117216, Москва, ул. Грина, д. 7

Т. А. Кроль

ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт лекарственных и ароматических растений»

Email: tatianakroll1@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-4642-651X
SPIN-код: 1620-2290

к.с.-х.н., зав. лабораторией геномики и биохимии лекарственных растений

Россия, 117216, Москва, ул. Грина, д. 7

Д. Н. Балеев

ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт лекарственных и ароматических растений»

Email: dbaleev@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-1228-0594
SPIN-код: 5487-2926

к. с.-х. н., зав. лабораторией атомарно-молекулярной биорегуляции и селекции

Россия, 117216, Москва, ул. Грина, д. 7

Список литературы

  1. Li Z., Tian J., Cheng Z. et al. Hypoglycemic bioactivity of anthocyanins: A review on proposed targets and potential signaling pathways. Critical reviews in food science and nutrition. 2023; 63(26): 7878–7895. doi: 10.1080/10408398.2022.2055526.
  2. Shen Y., Wang M., Zhou J. et al. Construction of Fe3O4@ α-glucosidase magnetic nanoparticles for ligand fishing of α-glucosidase inhibitors from a natural tonic Epimedii Folium. International Journal of Biological Macromolecules. 2020; 165: 1361–72. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2020.10.018.
  3. Li Y.J., Wan G.Z., Xu F.C. et al. Screening and identification of α-glucosidase inhibitors from Cyclocarya paliurus leaves by ultrafiltration coupled with liquid chromatography-mass spectrometry and molecular docking. Journal of Chromatography A. 2022; 1675: 463160. doi: 10.1016/j.chroma.2022.463160.
  4. Park M.J., Kang Y.H. Isolation of Isocoumarins and Flavonoids as α-Glucosidase Inhibitors from Agrimonia pilosa L. Molecules. 2020 May 31; 25(11): 2572. doi: 10.3390/molecules25112572.
  5. Guo H., Chen Y., Song N. et al. Screening of lipase inhibitors from bamboo leaves based on the magnetic ligand fishing combined with HPLC/MS. Microchemical Journal. 2020; 153: 104497. doi: 10.1016/j.microc.2019.104497.
  6. de Almeida F.G., Vanzolini K.L., Cass Q.B. Angiotensin converting enzyme immobilized on magnetic beads as a tool for ligand fishing. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 2017; 132: 159–64. doi: 10.1016/j.jpba.2016.10.006.
  7. Meng J., Li Q., Cao Z. et al. Rapid screening and separation of active compounds against α-amylase from Toona sinensis by ligand fishing and high-speed counter-current chromatography. International Journal of Biological Macromolecules. 2021; 174: 270–277. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2021.01.195.
  8. Liu D.M., Chen J., Shi Y.P. α-Glucosidase immobilization on chitosan-enriched magnetic composites for enzyme inhibitors screening. International journal of biological macromolecules. 2017; 105: 308–316. doi: 10.1016/j.ijbio-mac.2017.07.045.
  9. Wan G.Z., Ma X.H., Jin L., Chen J. α-glucosidase immobilization on magnetic core-shell metal-organic frameworks for inhibitor screening from traditional Chinese medicines. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 2021; 205: 111847. doi: 10.1016/j.colsurfb.2021.111847.
  10. Jiang X., Qin Y., Wang X. et al. Enzyme immobilized on magnetic fluorescent bifunctional nanoparticles for α-glucosidase inhibitors virtual screening from Agrimonia pilosa Ledeb extracts accompanied with molecular modeling. Journal of Chromatography A. 2023; 1711: 464433. doi: 10.1016/j.chroma.2023.464433.
  11. Singleton V.L., Rossi J.A. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. American journal of Enology and Viticulture. 1965; 16(3): 144–158. doi: 10.5344/ajev.1965.16.3.144.
  12. Ojha S., Raj A., Roy A., Roy S. Extraction of total phenolics, flavonoids and tannins from Paederia foetida L. Leaves and their relation with antioxidant activity. Pharmacognosy Journal. 2018; 10(3). doi: 10.5530/pj.2018.3.88.
  13. Chang C.C., Yang M.H., Wen H.M., Chern J.C. Estimation of total flavonoid content in propolis by two complementary colorimetric methods. Journal of food and drug analysis. 2002; 10(3).
  14. Mammen D., Daniel M. A critical evaluation on the reliability of two aluminum chloride chelation methods for quantification of flavonoids. Food chemistry. 2012; 135(3): 1365–1368. doi: 10.1016/j.foodchem.2012.05.109.
  15. Morishita Y., Iinuma Y., Nakashima N. et al. Total and pancreatic amylase measured with 2-chloro-4-nitrophenyl-4-O-β-D-galactopyranosylmaltoside. Clinical chemistry. 2000; 46(7): 928–933. doi: 10.1093/clinchem/46.7.928.
  16. Panteghini M., Bonora R., Pagani F. Measurement of pancreatic lipase activity in serum by a kinetic colorimetric assay using a new chromogenic substrate. Annals of clinical biochemistry. 2001; 38(4): 365–370. doi: 10.1258/0004563011900876.
  17. Cho N.H., Shaw J.E., Karuranga S. et al. IDF Diabetes Atlas: Global estimates of diabetes prevalence for 2017 and projections for 2045. Diabetes research and clinical practice. 2018; 138: 271–281. doi: 10.1016/j.diabres.2018.02.023.
  18. Chanu K.D., Sharma N., Kshetrimayum V. et al. Ageratina adenophora (Spreng.) King & H. Rob. Standardized leaf extract as an antidiabetic agent for type 2 diabetes: An in vitro and in vivo evaluation. Frontiers in Pharmacology. 2023; 14: 1178904. doi: 10.3389/fphar.2023.1178904.
  19. Wen S., Zhang X., Wu Y. et al. Agrimonia pilosa Ledeb.: a review of its traditional uses, botany, phytochemistry, pharmacology, and toxicology. Heliyon. 2022; 8(8).
  20. Lee Y.M., Kim Y.S., Lee Y. et al. Inhibitory activities of pancreatic lipase and phosphodiesterase from Korean medicinal plant extracts. Phytotherapy Research. 2012; 26(5): 778–782. doi: 10.1002/ptr.3644.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Активность пищеварительных ферментов липазы и амилазы в присутствии ацетонового экстракта листьев Agrimonia pilosa Ledeb. в моделях in vitro (* – достоверное статистическое отличие относительно бланка, p≤ 0,05)

Скачать (279KB)
Метаданные

© ИД "Русский врач", 2025