Экспериментальное лечение индуцированной задержки развития плода у модельных животных

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Задержка внутриутробного развития является одним из основных осложнений беременности. Данная патология встречается в примерно 10 % от всех беременностей в развитых странах и более чем в 20 % в развивающихся странах, более того, задержка внутриутробного развития чаще прочих патологий ассоциирована с мертворождением. Несмотря на большое количество исследований, выполненных на протяжении последних 50 лет, общепринятой схемы терапии до сих пор не разработано. Для лечения использовалось множество препаратов, однако эффективность ни одного из них не была доказана, кроме того, спустя годы апробации появляются новые данные о побочных эффектах использованных ранее лекарственных средств.

Различные модели задержки развития плода разрабатывались на протяжении длительного изучения проблемы. Основные модельные животные — крысы, свиньи и овцы. Было предложено множество методик и вариантов препаратов для лечения смоделированной задержки внутриутробного развития у этих животных. Основными аминокислотами, применяемыми для лечения, выступали аргинин, глутамин, таурин, цитруллин.

Задача настоящего литературного обзора — проанализировать, какие модельные животные и какие экспериментальные модели лечения задержки внутриутробного развития наиболее адекватно отражают эффективность применения этих препаратов.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Олеся Николаевна Беспалова

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта

Email: shiggerra@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6542-5953
SPIN-код: 4732-8089
Scopus Author ID: 57189999252
ResearcherId: D-3880-2018

д-р мед. наук

Россия, 199034, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3

Александра Александровна Блаженко

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта

Автор, ответственный за переписку.
Email: alexandrablazhenko@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-8079-0991
SPIN-код: 8762-3604

младший научный сотрудник

Россия, 199034, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3

Список литературы

  1. Barker D.J.P., Thornburg K.L. Placental programming of chronic diseases, cancer and lifespan: A review // Placenta. 2013. Vol. 34, No. 10. P. 841–845. doi: 10.1016/j.placenta.2013.07.063
  2. Barry J.S., Rozance P.J., Anthony R.V. An Animal Model of Placental Insufficiency-Induced Intrauterine Growth Restriction // Semin Perinatol. 2008. Vol. 32, No. 3. P. 225–230. doi: 10.1053/j.semperi.2007.11.004
  3. von Beckerath A.K., Kollmann M., Rotky-Fast C., et al. Perinatal complications and long-term neurodevelopmental outcome of infants with intrauterine growth restriction // Am J Obstet Gynecol. 2013. Vol. 208, No. 2. P. 130.e1–130.e6. doi: 10.1016/j.ajog.2012.11.014
  4. Beune I.M., Pels A., Gordijn S.J., Ganzevoort W. Temporal variation in definition of fetal growth restriction in the literature // Ultrasound Obstet Gynecol. 2019. Vol. 53, No. 5. P. 569–570. doi: 10.1002/uog.19189
  5. Bourdon A., Parnet P., Nowak C., et al. L-citrulline supplementation enhances fetal growth and protein synthesis in rats with intrauterine growth restriction // J Nutr. 2016. Vol. 146, No. 3. P. 532–541. doi: 10.3945/jn.115.221267
  6. Chen Y.-H., Xu D.-W., Wang J.-P., et al. Melatonin protects against lipopolysaccharide-induced intra-uterine fetal death and growth retardation in mice // J Pineal Res. 2006. Vol. 40, No. 1. P. 40–47. doi: 10.1111/j.1600-079X.2005.00274.x
  7. Clark P.A., Brown J.L., Li S., et al. Distal-less 3 haploinsufficiency results in elevated placental oxidative stress and altered fetal growth kinetics in the mouse // Placenta. 2012. Vol. 33, No. 10. P. 830–838. doi: 10.1016/j.placenta.2012.06.018
  8. Eremia S.C., de Boo H.A., Bloomfield F.H., et al. Fetal and amniotic insulin-like growth factor-I supplements improve growth rate in intrauterine growth restriction fetal sheep // Endocrinology. 2007. Vol. 148, No. 6. P. 2963–2972. doi: 10.1210/en.2006-1701
  9. Figueras F., Gratacós E. Update on the diagnosis and classification of fetal growth restriction and proposal of a stage-based management protocol // Fetal Diagn Ther. 2014. Vol. 36, No. 2. P. 86–98. doi: 10.1159/000357592
  10. Wu G., Bazer F.W., Wallace J.M., Spencer T.E. Board-invited review: intrauterine growth retardation: implications for the animal sciences // J Anim Sci. 2006. Vol. 84, No. 9. P. 2316–2337. doi: 10.2527/jas.2006-156
  11. Wu G., Bazer F.W., Tou W. Developmental changes of free amino acid concentrations in fetal fluids of pigs // J Nutr. 1995. Vol. 125, No. 11. P. 2859–2868. doi: 10.1093/jn/125.11.2859
  12. Gu W., Morris S.M. Arginine metabolism: nitric oxide and beyond// Biochem J. 1998. Vol. 336, No. 1. P. 1–17. doi: 10.1042/bj3360001
  13. Kwon H., Ford S.P., Bazer F.W., et al. Maternal nutrient restriction reduces concentrations of amino acids and polyamines in ovine maternal and fetal plasma and fetal fluids // Biol Reprod. 2004. Vol. 71, No. 3. P. 901–908. doi: 10.1095/biolreprod.104.029645
  14. Herrera E.A., Alegría R., Farias M., et al. Assessment of in vivo fetal growth and placental vascular function in a novel intrauterine growth restriction model of progressive uterine artery occlusion in guinea pigs // J Physiol. 2016. Vol. 594, No. 6. P. 1553–1561. doi: 10.1113/JP271467
  15. Hou N., Liu Y., Han F., et al. Irisin improves perivascular adipose tissue dysfunction via regulation of the heme oxygenase-1/adiponectin axis in diet-induced obese mice // J Mol Cell Cardiol. 2016. Vol. 99. P. 188–196. doi: 10.1016/j.yjmcc.2016.09.005
  16. Keswani S.G., Balaji S., Katz A.B., et al. Intraplacental gene therapy with Ad-IGF-1 corrects naturally occurring rabbit model of intrauterine growth restriction // Hum Gene Ther. 2015. Vol. 26, No. 3. P. 172–182. doi: 10.1089/hum.2014.065
  17. Liu J., Liu L., Chen H. Antenatal taurine supplementation for improving brain ultrastructure in fetal rats with intrauterine growth restriction // Neuroscience. 2011. Vol. 181. P. 265–270. doi: 10.1016/j.neuroscience.2011.02.056
  18. Lord V.M., Reiboldt W., Gonitzke D., et al. Experiences of recovery in binge-eating disorder: A qualitative approach using online message boards // Eating and Weight Disorders. 2018. Vol. 23, No. 1. P. 95–105. doi: 10.1007/s40519-016-0335-z
  19. Miller S.L., Yawno T., Alers N.O., et al. Antenatal antioxidant treatment with melatonin to decrease newborn neurodevelopmental deficits and brain injury caused by fetal growth restriction // J Pineal Res. 2014. Vol. 56, No. 3. P. 283–294. doi: 10.1111/jpi.12121
  20. Morrison J.L. Sheep models of intrauterine growth restriction: Fetal adaptations and consequences // Clin Exp Pharmacol Physiol. 2008. Vol. 35, No. 7. P. 730–743. doi: 10.1111/j.1440-1681.2008.04975.x
  21. Resnik R. Intrauterine growth restriction // Obstet Gynecol. 2002. Vol. 99, No. 3. P. 490–496. doi: 10.1097/00006250-200203000-00020
  22. Sano T., Terai Y., Daimon A., et al. Recombinant human soluble thrombomodulin as an anticoagulation therapy improves recurrent miscarriage and fetal growth restriction due to placental insufficiency – The leading cause of preeclampsia // Placenta. 2018. Vol. 65, P. 1–6. doi: 10.1016/j.placenta.2018.03.006
  23. Schröder H.J. Models of fetal growth restriction // Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2003. Vol. 110, No. S. P. S29–S39. doi: 10.1016/S0301-2115(03)00170-2
  24. Sugimura Y., Murase T., Oyama K., et al. Prevention of neural tube defects by loss of function of inducible nitric oxide synthase in fetuses of a mouse model of streptozotocin-induced diabetes // Diabetologia. 2009. Vol. 52, No. 5. P. 962–971. doi: 10.1007/s00125-009-1312-0
  25. Swanson A.M., David A.L. Animal models of fetal growth restriction: Considerations for translational medicine // Placenta. 2015. Vol. 36, No. 6. P. 623–630. doi: 10.1016/j.placenta.2015.03.003
  26. Tchirikov M., Kharkevich O., Steetskamp J., et al. Treatment of growth-restricted human fetuses with amino acids and glucose supplementation through a chronic fetal intravascular perinatal port system // Eur Surg Res. 2010. Vol. 45, No. 1. P. 45–49. doi: 10.1159/000318859
  27. Tchirikov M., Zhumadilov Z.Sh., Bapayeva G., et al. The effect of intraumbilical fetal nutrition via a subcutaneously implanted port system on amino acid concentration by severe IUGR human fetuses // J Perinat Med. 2017. Vol. 45, No. 2. P. 227–236. doi: 10.1515/jpm-2016-0155
  28. Terstappen F., Spradley F.T., Bakrania B.A., et al. Prenatal sildenafil therapy improves cardiovascular function in fetal growth restricted offspring of dahl salt-sensitive rats // Hypertension. 2019. Vol. 73, No. 5. P. 1120–1127. doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.118.12454
  29. Valenzuela I., Kinoshita M., van der Merwe J., et al. Prenatal interventions for fetal growth restriction in animal models: A systematic review // Placenta. 2022. Vol. 126. P. 90–113. doi: 10.1016/j.placenta.2022.06.007
  30. Гармашова Н.Л. Плацентарное кровообращение / Акад. мед. наук СССР. Ленинград: Медицина, 1967. 243 с.
  31. Гармашова Н.Л. Введение в перинатальную медицину. Москва: Медицина, 1978. 294 с.
  32. Гармашова Н.Л., Константинова Н.Н. Патофизиологические основы охраны внутриутробного развития человека. Ленинград: Медицина, 1985. 59 с. С. 21.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Применение различных групп препаратов в лечении индуцированной задержкой развития плода с 1978 по 2019 г. в моделях животных

Скачать (140KB)
Метаданные

© Эко-Вектор, 2023


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС 77 - 84654 от 01.02.2023 г. 

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах