Нейротропные эффекты эндогенных соединений – компонентов тиронома в центральной нервной системе

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Введение. В течение последних десятилетий накоплены данные о потенциальных цитопротекторных эффектах декарбоксилированных и дейодированных эндогенных соединений – метаболитов тиреоидных гормонов, составляющих тироном. Целью настоящего обзора является систематизация биологических эффектов компонентов тиронома в центральной нервной системе с позиции их возможной роли в качестве потенциальных нейропротекторов.

Материал и методы. Для анализа были выбраны англо- и русскоязычные полнотекстовые статьи из электронных баз PubMed, Mendeley, e-library с использованием запроса (thyroid OR thyroid hormone metabolite OR *-iodo-thyronamine OR thyronamine OR TAAR OR thyronome OR T0AM OR T1AM OR thyroacetic acid) AND (brain OR central nervous system OR CNS OR stroke OR neurodegenerat*). Глубина поиска составила 10 лет.

Результаты. В обзоре систематизированы наиболее важные нейротропные свойства 3-Т1АМ и других компонентов тиронома, включая их влияние на поведенческие эффекты, память, уровень болевого порога, процессы апоптоза, аутофагии и эксайтотоксической гибели нейронов, а также описана роль отдельных рецепторов и внутриклеточных путей передачи сигналов в реализации этих свойств.

Заключение. Компоненты тиронома, в частности, 3-Т1АМ, демонстрируют широкий спектр потенциальных нейропротективных свойств, а для его потенциального применения в клинике актуальным является поиск способов повышения локальной концентрации в головном мозге или проницаемости для гематоэнцефалического барьера, а также разработка более эффективных синтетических аналогов.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Дмитрий Анатольевич Кудлай

ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)

Автор, ответственный за переписку.
Email: dakudlay@generium.ru
ORCID iD: 0000-0003-1878-4467

доктор медицинских наук, член-корр. РАН, профессор кафедры фармакологии Института Фармации

Россия, 119991, Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Дмитрий Алексеевич Филимонов

ФГБУ «Институт неотложной и восстановительной хирургии им. В.К. Гусака» Минздрава России

Email: dnmu@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-4542-6860

доктор медицинских наук, заместитель директора по научной работе, заведующий отделом экспериментальной хирургии

Россия, 283045, Донецк, пр. Ленинский, д. 47

Виталий Валерьевич Морозов

ФГБУН «Институт химической биологии и фундаментальной медицины» Сибирского отделения Российской академии наук

Email: doctor.morozov@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-9810-5593

доктор медицинских наук, профессор, заведующий лабораторией экспериментальной и клинической медицины

Россия, 630090, Новосибирск, пр. Ак. Лаврентьева, д. 8

Роман Викторович Ищенко

ФГБУ «Институт неотложной и восстановительной хирургии им. В.К. Гусака» Минздрава России

Email: ishenkorv@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0002-7999-8955

доктор медицинских наук, директор

Россия, 283045, Донецк, пр. Ленинский, д. 47

Александр Борисович Ересько

Международная межправительственная научно-исследовательская организация «Объединенный институт ядерных исследований»

Email: a_eresko77@jinr.ru
ORCID iD: 0000-0002-3521-5314

кандидат химических наук, старший научный сотрудник НЕРА НЭОНИКС Лаборатории нейтронной физики

Россия, 141980, Дубна, ул. Жолио Кюри, д. 6

Надежда Николаевна Трубникова

ФГБУ «Институт неотложной и восстановительной хирургии им. В.К. Гусака» Минздрава России

Email: orenaji3@bk.ru
ORCID iD: 0009-0002-3407-5927

заведующая лабораторией фундаментальных исследований отдела экспериментальной хирургии

Россия, 283045, Донецк, пр. Ленинский, д. 47

Маргарита Андреевна Белоцерковская

ФГБУ «Институт неотложной и восстановительной хирургии им. В.К. Гусака» Минздрава России

Email: margarita-amb@mail.ru
ORCID iD: 0009-0004-3019-144X

младший научный сотрудник отдела экспериментальной хирургии

Россия, 283045, Донецк, пр. Ленинский, д. 47

Ирина Александровна Кисиленко

ФГБУ «Институт неотложной и восстановительной хирургии им. В.К. Гусака» Минздрава России

Email: irinka.dn.15@gmail.com
ORCID iD: 0009-0006-6404-2930

младший научный сотрудник отдела экспериментальной хирургии

Россия, 283045, Донецк, пр. Ленинский, д. 47

Инна Николаевна Носова

ФГБУ «Институт неотложной и восстановительной хирургии им. В.К. Гусака» Минздрава России

Email: n_inna_n@mail.ru
ORCID iD: 0009-0005-4868-0345

младший научный сотрудник лаборатории фундаментальных исследований отдела экспериментальной хирургии

Россия, 283045, Донецк, пр. Ленинский, д. 47

Список литературы

  1. Zucchi R., Rutigliano G., Saponaro F. Novel thyroid hormones. Endocrine. 2019; 66 (1): 95–104. doi: 10.1007/s12020-019-02018-4.
  2. Homuth G., Lietzow J., Schanze N., Golchert J., Köhrle J. Endocrine, Metabolic and Pharmacological Effects of Thyronamines (TAM), Thyroacetic Acids (TA) and Thyroid Hormone Metabolites (THM) – Evidence from in vitro, Cellular, Experimental Animal and Human Studies. Exp Clin Endocrinol Diabetes. 2020; 128 (6–07): 401–13. doi: 10.1055/a-1139-9200
  3. Филимонов Д.А., Ересько А.Б., Ракша Е.В., Трубникова Н.Н., Ищенко Р.В., Терещенко Д.А., Кисилинко И.А., Носова И.А. Антиоксидантные эффекты синтетического аналога тиронамина при экспериментальной ишемии головного мозга. Медицина экстремальных ситуаций. 2024; 1: 64–71. doi: 10.47183/mes.2024.003. [Filimonov D.A., Eresko A.B., Raksha E.V., Trubnikova N.N., Ishenko R.V., Tereshenko D.A., Kisilinko I.A., Nosova I.A. Antioksidantnye effekty sinteticheskogo analoga tironamina pri eksperimentalnoj ishemii golovnogo mozga. Medicina ekstremalnyh situacij. 2024; 1: 64–71. doi: 10.47183/mes.2024.003 (in Russian)]
  4. Bandini L., Sacripanti G., Borsò M., Tartaria M., Fogliaro M.P., Giannini G., Carnicelli V., Figuccia M.E., Verlotta S., De Antoni F., Zucchi R., Ghelardoni S. Exogenous 3-Iodothyronamine (T1AM) Can Affect Phosphorylation of Proteins Involved on Signal Transduction Pathways in In Vitro Models of Brain Cell Lines, but These Effects Are Not Strengthened by Its Catabolite, 3-Iodothyroacetic Acid (TA1). Life. 2022; 12: 1352. doi: 10.3390/life12091352
  5. Zucchi R., Rutigliano G., Saponaro F. Novel thyroid hormones. Endocrine. 2019; 66 (1): 95–104. doi: 10.1007/s12020-019-02018-4
  6. Chiellini G., Bellusci L., Sabatini M., Zucchi R. Thyronamines and analogues – the route from rediscovery to translational research on thyronergic amines. Mol. Cell Endocrinol. 2017; 458: 149–55. doi: 10.1016/j.mce.2017.01.002
  7. Rutigliano G., Bandini L., Sestito S., Chiellini G. 3-Iodothyronamine and Derivatives: New Allies Against Metabolic Syndrome? Int J. Mol. Sci. 2020; 21 (6): 2005. doi: 10.3390/ijms21062005
  8. Köhrle J., Biebermann H. 3-Iodothyronamine – A Thyroid Hormone Metabolite With Distinct Target Profiles and Mode of Action. Endocrine Reviews. 2019; 40 (2): 602–30. doi: 10.1210/er.2018-00182
  9. Zucchi R., Rutigliano G., Saponaro F. Novel thyroid hormones. Endocrine. 2019; 66 (1): 95–104. doi: 10.1007/s12020-019-02018-4
  10. Martin J.V., Sarkar P.K. Nongenomic roles of thyroid hormones and their derivatives in adult brain: are these compounds putative neurotransmitters? Front Endocrinol (Lausanne). 2023; 14: 1210540. doi: 10.3389/fendo.2023.1210540
  11. Musilli C., De Siena G., Manni M.E., Logli A., Landucci E., Zucchi R., Saba A., Donzelli R., Passani M.B., Provensi G., Raimondi L. Histamine Mediates Behavioural and Metabolic Effects of 3-Iodothyroacetic Acid, an Endogenous End Product of Thyroid Hormone Metabolism: A Novel Link between Thyroid and Histamine. Br. J. Pharmacol. 2014; 171: 3476–84. doi: 10.1111/bph.12697.
  12. Di Leo N., Moscato S., Borso’ M., Sestito S., Polini B., Bandini L., Grillone A., Battaglini M., Saba A., Mattii L., Ciofani G., Chiellini G. Delivery of Thyronamines (TAMs) to the Brain: A Preliminary Study. Molecules. 2021; 26 (6): 1616. doi: 10.3390/molecules26061616
  13. Huang S., Liu L., Tang X., Xie S., Li X., Kang X., Zhu S. Research progress on the role of hormones in ischemic stroke. Front Immunol. 2022; 13: 1062977. doi: 10.3389/fimmu.2022.1062977
  14. Panas H.N., Lynch L.J., Vallender E.J., Xie Z., Chen G.L., Lynn S.K., Scanlan T.S., Miller G.M. Normal thermoregulatory responses to 3-iodothyronamine, trace amines and amphetamine-like psychostimulants in trace amine associated receptor 1 knockout mice. J. Neurosci Res. 2010; 88: 1962–9. doi: 10.1002/jnr.22367
  15. Rutigliano G., Bertolini A., Grittani N., Frascarelli S., Carnicelli V., Ippolito C., Moscato S., Mattii L., Kusmic C., Saba A., Origlia N., Zucchi R. Effect of Combined Levothyroxine (L-T4) and 3-Iodothyronamine (T1AM) Supplementation on Memory and Adult Hippocampal Neurogenesis in a Mouse Model of Hypothyroidism. Int. J. Mol. Sci. 2023; 24: 13845. doi: 10.3390/ijms241813845
  16. Underhill S.M., Hullihen P.D., Chen J., Fenollar-Ferrer C., Rizzo M.A., Ingram S.L., Amara S.G. Amphetamines signal through intracellular TAAR1 receptors coupled to Galpha13 and GalphaS in discrete subcellular domains. Mol. Psychiatry. 2021; 26: 1208–23. doi: 10.1038/s41380-019-0469-2
  17. Li ZM., Miller M., Gachkar S., Mittag J., Schriever SC., Pfluger PT., Schramm KW., De Angelis M. Determination of 3-iodothyronamine (3-T1AM) in mouse liver using liquid chromatography-tandem mass spectrometry. J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci. 2021; 1165: 122553. doi: 10.1016/j.jchromb.2021.122553.
  18. Rutigliano G., Accorroni A., Zucchi R. The Case for TAAR1 as a Modulator of Central Nervous System Function. Front Pharmacol. 2018; 8: 987. doi: 10.3389/fphar.2017.00987
  19. Dinter J., Mühlhaus J., Jacobi SF., Wienchol CL., Cöster M., Meister J., Hoefig CS., Müller A., Köhrle J., Grüters A., Krude H., Mittag J., Schöneberg T., Kleinau G., Biebermann H. 3-iodothyronamine differentially modulates alpha-2A-adrenergic receptor-mediated signaling. J. Mol. Endocrinol. 2015; 54 (3): 205–16. doi: 10.1530/JME-15-0003.
  20. Braunig J., Mergler S., Jyrch S., Hoefig C.S., Rosowski M., Mittag J., Biebermann H., Khajavi N. 3-Iodothyronamine activates a set of membrane proteins in murine hypothalamic cell lines. Front Endocrinol (Lausanne). 2018; 9: 523. doi: 10.3389/fendo.2018.00523
  21. Rutigliano G., Zucchi R. Molecular Variants in Human Trace Amine-Associated Receptors and Their Implications in Mental and Metabolic Disorders. Cellular and Molecular Neurobiology. 2020; 40: 239–55. doi: 10.1007/s10571-019-00743-y
  22. Laurino A., De Siena G., Saba A., Chiellini G., Landucci E., Zucchi R., Raimondi L. In the brain of mice, 3-iodothyronamine (T1AM) is converted into 3-iodothyroacetic acid (TA1) and it is included within the signaling network connecting thyroid hormone metabolites with hisЕФЬine. Eur J. Pharmacol. 2015; 761: 130–4. doi: 10.1016/j.ejphar.2015.04.038
  23. Laurino A., Lucenteforte E., De Siena G., Raimondi L. The impact of scopolamine pretreatment on 3-iodothyronamine (T1AM) effects on memory and pain in mice. Horm Behav. 2017; 94: 93–6. doi: 10.1016/j.yhbeh.2017.07.003
  24. Bellusci L., Laurino A., Sabatini M., Sestito S., Lenzi P., Raimondi L., Rapposelli S., Biagioni F., Fornai F., Salvetti A., Rossi L., Zucchi R., Chiellini G. New Insights into the Potential Roles of 3-Iodothyronamine (T1AM) and Newly Developed Thyronamine-Like TAAR1 Agonists in Neuroprotection. Front Pharmacol. 2017; 8: 905. doi: 10.3389/fphar.2017.00905
  25. Zhang X., Mantas I., Alvarsson A., Yoshitake T., Shariatgorji M., Pereira M., Nilsson A., Kehr J., Andrén PE., Millan MJ., Chergui K., Svenningsson P. Striatal Tyrosine Hydroxylase Is Stimulated via TAAR1 by 3-Iodothyronamine, But Not by Tyramine or β-Phenylethylamine. Front Pharmacol. 2018; 9: 166. doi: 10.3389/fphar.2018.00166
  26. Lv J., Liao J., Tan W., Yang L., Shi X., Zhang H., Chen L., Wang S., Li Q. 3-Iodothyronamine Acting through an Anti-Apoptotic Mechanism Is Neuroprotective Against Spinal Cord Injury in Rats. Ann Clin Lab Sci. 2018; 48 (6): 736–42
  27. Landucci E., Gencarelli M., Mazzantini C., Laurino A., Pellegrini-Giampietro DE., Raimondi L. N-(3-Ethoxy-phenyl)-4-pyrrolidin-1-yl-3-trifluoromethyl-benzamide (EPPTB) prevents 3-iodothyronamine (T1AM)-induced neuroprotection against kainic acid toxicity. Neurochem Int. 2019; 129: 104460. doi: 10.1016/j.neuint.2019.05.004
  28. Bellusci L., Runfola M., Carnicelli V., Sestito S., Fulceri F., Santucci F., Lenzi P., Fornai F., Rapposelli S., Origlia N., Zucchi R., Chiellini G. Endogenous 3-Iodothyronamine (T1AM) and Synthetic Thyronamine-like Analog SG-2 Act as Novel Pleiotropic Neuroprotective Agents Through the Modulation of SIRT6. Molecules. 2020; 25 (5): 1054. doi: 10.3390/molecules25051054
  29. Accorroni A., Rutigliano G., Sabatini M., Frascarelli S., Borsò M., Novelli E., Bandini L., Ghelardoni S., Saba A., Zucchi R., Origlia N. Exogenous 3-Iodothyronamine Rescues the Entorhinal Cortex from β-Amyloid Toxicity. Thyroid. 2020; 30 (1): 147–60. doi: 10.1089/thy.2019.0255
  30. Tozzi F., Rutigliano G., Borsò M., Falcicchia C., Zucchi R., Origlia N. T1AM-TAAR1 signalling protects against OGD-induced synaptic dysfunction in the entorhinal cortex. Neurobiol Dis. 2021; 151: 105271. doi: 10.1016/j.nbd.2021.105271
  31. Polini B., Ricardi C., Bertolini A., Carnicelli V., Rutigliano G., Saponaro F., Zucchi R., Chiellini G. T1AM/TAAR1 System Reduces Inflammatory Response and β-Amyloid Toxicity in Human Microglial HMC3 Cell Line. Int. J. Mol. Sci. 2023; 24 (14): 11569. doi: 10.3390/ijms241411569
  32. Sakanoue W., Yokoyama T., Hirakawa M., Maesawa S., Sato K., Saino T. 3-Iodothyronamine, a trace amine-associated receptor agonist, regulates intracellular Ca2+ increases via CaMK II through Epac2 in rat cerebral arterioles. Biomed Res. 2023; 44 (5): 219–32. doi: 10.2220/biomedres.44.219
  33. Kim B., Ko YH., Si J., Na J., Ortore G., Chiellini G., Kim JH. Thyroxine metabolite-derived 3-iodothyronamine (T1AM) and synthetic analogs as efficient suppressors of transthyretin amyloidosis. Comput Struct Biotechnol J. 2023; 21: 4717–28. doi: 10.1016/j.csbj.2023.09.028
  34. Minatohara K., Akiyoshi M., Okuno H. Role of Immediate-Early Genes in Synaptic Plasticity and Neuronal Ensembles Underlying the Memory Trace. Front Mol Neurosci. 2016; 8: 78. doi: 10.3389/fnmol.2015.00078
  35. Шляпина В.Л., Юртаева С.В., Рубцова М.П., Донцова О.А. На распутье: механизмы апоптоза и аутофагии в жизни и смерти клетки. Acta Naturae. 2021; 2 (49): 106–15. doi: 10.32607/actanaturae.11208. [Shljapina V.L., Jurtaeva S.V., Rubcova M.P., Doncova O.A. Na rasput’e: mehanizmy apoptoza i autofagii v zhizni i smerti kletki. Acta Naturae. 2021; 2 (49): 106–15 (in Russian)]
  36. Mputhia Z., Hone E., Tripathi T., Sargeant T., Martins R., Bharadwaj P. Autophagy Modulation as a Treatment of Amyloid Diseases. Molecules. 2019; 24 (18): 3372. doi: 10.3390/molecules24183372.
  37. Crino P.B. The mTOR signalling cascade: paving new roads to cure neurological disease. Nat Rev Neurol. 2016; 12 (7): 379–92. doi: 10.1038/nrneurol.2016.81
  38. Иваненко К.А., Прасолов В.С., Хабушева Э.Р. Транскрипционный фактор Sp1 в регуляции экспрессии генов, кодирующих компоненты сигнальных путей MAPK, JAK/STAT и PI3K/Akt. Молекулярная биология. 2022; 56 (5): 832–47. doi: 10.31857/S0026898422050081. [Ivanenko K.A., Prasolov V.S., Habusheva Je.R. Transkripcionnyj faktor Sp1 v reguljacii jekspressii genov, kodirujushhih komponenty signal’nyh putej MAPK, JAK/STAT i PI3K/Akt. Molekuljarnaja biologija. 2022; 56 (5): 832–47 (in Russian)]
  39. Deleyto-Seldas N., Efeyan A. The mTOR–Autophagy Axis and the Control of Metabolism. Front Cell Dev Biol. 2021; 9: 655731. doi: 10.3389/fcell.2021.655731
  40. Shao J., Yang X., Liu T., Zhang T., Xie Q.R., Xia W. Autophagy induction by SIRT6 is involved in oxidative stress-induced neuronal damage. Protein Cell. 2016; 7: 281–90. doi: 10.1007/s13238-016-0257-6
  41. Zhou H., Mo L., Huang N., Zou C., Li C., Lin M., Zhang B., Wei B., Li P., Si X., Chen J., Li W., Liu X., Hu B. 3-iodothyronamine inhibits apoptosis induced by myocardial ischemia reperfusion via the Akt/FoxO1 signaling pathway. Ann Transl Med. 2022; 10 (4): 168. doi: 10.21037/atm-21-7041
  42. Verma M., Lizama B.N., Chu C.T. Excitotoxicity, calcium and mitochondria: a triad in synaptic neurodegeneration. Transl Neurodegener. 2022; 11 (1): 3. doi: 10.1186/s40035-021-00278-7. PMID: 35078537; PMCID: PMC8788129.
  43. Docherty A., Emelifeonwu J., Andrews PJD. Hypothermia after traumatic brain injury. JAMA. 2018; 320 (21): 2204–6. doi: 10.1001/jama.2018.17121
  44. Huang S., Liu L., Tang X., Xie S., Li X., Kang X., Zhu S. Research progress on the role of hormones in ischemic stroke. Front Immunol. 2022; 13: 1062977. doi: 10.3389/fimmu.2022.1062977.
  45. Han Y., Han Z., Huang X., Li S., Jin G., Feng J., Wu D., Liu H. An injectable refrigerated hydrogel for inducing local hypothermia and neuroprotection against traumatic brain injury in mice. J. Nanobiotechnology. 2024; 22 (1): 251. doi: 10.1186/s12951-024-02454-z

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Предполагаемый путь биосинтеза и метаболизма тиронаминов

Скачать (257KB)
Метаданные

© ИД "Русский врач", 2024