Роль хромосомных V(D)J рекомбинаций лимфоцитов в формировании противоопухолевого иммунитета и эффективности применения иммунотерапии

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Введение. Эффективность противоопухолевого иммунитета определяется различными механизмами распознавания опухолевых антигенов, при этом разнообразие репертуара антигенных рецепторов определяется V(D)J-рекомбинациями в созревающих Т- и В-клетках.

Целью данной работы является обзор данных научной литературы о роли хромосомных V(D)J-рекомбинаций клеток иммунной системы в механизмах противоопухолевого иммунитета.

Материал и методы. Этот обзор представляет данные об основных механизмах противоопухолевого иммунитета и о роли реаранжировки генов Т- и В-клеточных рецепторов в его формировании.

Результаты. Из представленного анализа литературных источников следует, что канцерогенез сопровождается супрессией противоопухолевой активности иммунной системы, в результате чего у больных со злокачественными новообразованиями наблюдаются иммунодеффицитные состояния.

Побочными продуктами хромосомных V(D)J-рекомбинаций являются эксцизионные кольца ДНК TREC и KREC. Их количественный анализ у онкологических больных позволяет определить наличие иммунодефицита, а также оценить эффективность формирования противоопухолевого иммунитета.

Также отмечается, что у онкобольных с иммунодефицитом следует рассмотреть возможность применения персонифицированных методов иммуностимуляции, что позволит улучшить контроль над злокачественным процессом.

Выводы. В обзоре отражены механизмы реагирования иммунной системы на канцерогенез. Рассмотрены основные этапы взаимодействия опухолевого антигена с иммунной системой пациента. Описаны методы оценки состоятельности противоопухолевого иммунитета.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Александр Валерьевич Султанбаев

ГАУЗ «Республиканский клинический онкологический диспансер» МЗ РБ

Автор, ответственный за переписку.
Email: rkodrb@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-0996-5995

кандидат медицинских наук, заведующий отделом противоопухолевой лекарственной терапии ГАУЗ «Республиканский клинический онкологический диспансер» Министерства здравоохранения Республики Башкортостан

Россия, Уфа, ул. проспект Октября, 450054

Шамиль Исмагилович Мусин

ГАУЗ «Республиканский клинический онкологический диспансер» МЗ РБ

Email: musin_shamil@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1185-977X

кандидат медицинских наук, заведующий хирургическим отделением №6 ГАУЗ «Республиканский клинический онкологический диспансер» Министерства здравоохранения Республики Башкортостан

Россия, Уфа, ул. проспект Октября, 73/1, 450054

Константин Викторович Меньшиков

ГАУЗ «Республиканский клинический онкологический диспансер» МЗ РБ

Email: kmenshikov80@bk.ru
ORCID iD: 0000-0003-3734-2779

кандидат медицинских наук, доцент кафедры онкологии с курсами онкологии и патологической анатомии ИДПО, федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Башкирский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации, врач-онколог отдела химиотерапии ГАУЗ Республиканского клинического онкологического диспансера МЗ РБ

Россия, Уфа, ул. проспект Октября, 73/1, 450054

Адель Альбертович Измайлов

ГАУЗ «Республиканский клинический онкологический диспансер» МЗ РБ

Email: izmailov75@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-8461-9243

доктор медицинских наук, главный врач ГАУЗ Республиканского клинического онкологического диспансера МЗ РБ

Россия, Уфа, ул. проспект Октября, 73/1, 450054

Айнур Фанутович Насретдинов

ГАУЗ «Республиканский клинический онкологический диспансер» МЗ РБ

Email: rkodrb@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-8340-7962

врач-онколог заведующий отделением противоопухолевой лекарственной терапии №2 ГАУЗ «Республиканский клинический онкологический диспансер» Министерства здравоохранения Республики Башкортостан

Россия, Уфа, ул. проспект Октября, 73/1, 450054

Надежда Ивановна Султанбаева

ГАУЗ «Республиканский клинический онкологический диспансер» МЗ РБ

Email: nd.sultan@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0001-5926-0446

врач-онколог отделения противоопухолевой лекарственной терапии №1 ГАУЗ «Республиканский онкологический диспансер» Минздрава РБ

Россия, Уфа, ул. проспект Октября, 73/1, 450054

Ирина Асхатовна Меньшикова

ГБОУ «Башкирский государственный медицинский университет» МЗ РФ

Email: imenshikova@bk.ru
ORCID iD: 0000-0002-8665-8895

кандидат медицинских наук, доцент, доцент кафедры биологической химии, ФГБОУ ВО «Башкирский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Россия, Уфа, ул. Ленина, д. 3, 450008

Илья Валерьевич Тимофеев

Автономная некоммерческая организация «Бюро по изучению рака»

Email: tsimafeyeu@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-7357-0392

Директор Бюро по изучению рака, член Международного комитета Американского общества клинической онкологии (ASCO), член Научного совета Колледжа Европейской школы онкологии (ESO)

Россия, Москва, переулок Маяковского, 2, 109147

Данила Олегович Липатов

ГБОУ «Башкирский государственный медицинский университет» МЗ РФ

Email: lipatov911@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-3193-9008

студент лечебного факультета; ФГБОУ ВО «Башкирский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Россия, Уфа, ул. Ленина, д. 3, 450008

Михаил Валерьевич Султанбаев

ГБОУ «Башкирский государственный медицинский университет» МЗ РФ

Email: mihail@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-2222-4940

кандидат химических наук, Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Башкирский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Россия, Уфа, ул. Ленина, д. 3, 450008

Олег Николаевич Липатов

ГБОУ «Башкирский государственный медицинский университет» МЗ РФ

Email: lipatovoleg@bk.ru

доктор медицинских наук, профессор, заведующий курсом онкологии и патологической анатомии ИПО ФГБОУ ВО «Башкирский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Россия, Уфа, ул. Ленина, д. 3, 450008

Дмитрий Анатольевич Кудлай

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова» Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет), ФГБУ «Государственный научный центр «Институт иммунологии» Федерального медико-биологического агентства, Российская Федерация

Email: d624254@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-1878-4467

доктор медицинских наук, член-корреспондент РАН, профессор кафедры фармакологии Института Фармации ФГАОУ ВО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет), ведущий научный сотрудник лаб. персонализированной медицины и молекулярной иммунологии ФГБУ “ГНЦ Институт иммунологии” ФМБА России

Россия, Москва, Трубецкая, 8, 119435; Москва, Каширское шоссе, д. 24, 115522

Список литературы

  1. Насретдинов А.Ф., Султанбаева Н.И., Мусин Ш.И., Меньшиков К.В., Султанбаев А.В. Уровень опухоль-инфильтрирующих лимфоцитов и PD-статус как возможные прогностические маркеры выживаемости и эффективности терапии при трижды негативном раке молочной железы. Опухоли женской репродуктивной системы. 2020; 16 (1): 65–70. doi: 10.17650/1994-4098-2020-16-1-65-70 [Nasretdinov A.F., Sultanbaeva N.I., Musin S.I., Pushkarev A.V., Menshikov K.V., Pushkarev V.A., Sultanbaev A.V. Level of tumor-infiltrating lymphocytes and PD status as potential prognostic markers of survival and therapy effectiveness in triple-negative breast cancer. Tumors of female reproductive system. 2020; 16 (1): 65–70. doi: 10.17650/1994-4098-2020-16-1-65-70 (in Russian)].
  2. Шубина И.Ж., Сергеев А.В., Мамедова Л.Т., Соколов Н.Ю., Киселевский М.В. Современные представления о противоопухолевом иммунитете. Российский биотерапевтический журнал. 2015; 14 (3): 19–28. DOI: https: //doi.org/10.17650/1726-9784-2015-14-3-19-28 [Shubina I.Z., Sergeev A.V., Mamedova L.T., Sokolov N.Yu., Kiselevsky M.V. Сurrent understanding of antitumor immunity. Russian J. of Biotherapy. 2015; 14 (3): 19–28. DOI: https: //doi.org/10.17650/1726-9784-2015-14-3-19-28 (in Russian)].
  3. Wu Y., Biswas D., Swanton C. Impact of cancer evolution on immune surveillance and checkpoint inhibitor response. Semin. Cancer. Biol. 2022; 84: 89–102. doi: 10.1016/j.semcancer.2021.02.013
  4. Wolf Y., Samuels Y. Intratumor Heterogeneity and Antitumor Immunity Shape One Another Bidirectionally. Clin. Cancer Res. 2022; 28 (14): 2994–3001. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-21-1355
  5. De Visser K.E., Joyce J.A. The evolving tumor microenvironment: From cancer initiation to metastatic outgrowth. Cancer Cell. 2023; 41 (3): 374–403. doi: 10.1016/j.ccell.2023.02.016
  6. Farmer H., McCabe N., Lord C.J., Tutt A.N., Johnson D.A., Richardson T.B., Santarosa M., Dillon K.J., Hickson I., Knights C., Martin N.M., Jackson S.P., Smith G.C., Ashworth A. Targeting the DNA repair defect in BRCA mutant cells as a therapeutic strategy. Nature. 2005; 434 (7035): 917–21. doi: 10.1038/nature03445
  7. Tang Q., Chen Y., Li X., Long S., Shi Y., Yu Y., Wu W., Han L., Wang S. The role of PD-1/PD-L1 and application of immune-checkpoint inhibitors in human cancers. Front. Immunol. 2022; 13: 964442. doi: 10.3389/fimmu.2022.964442
  8. Zhang H., Liu L., Liu J., Dang P., Hu S., Yuan W., Sun Z., Liu Y., Wang C. Roles of tumor-associated macrophages in anti-PD-1/PD-L1 immunotherapy for solid cancers. Mol. Cancer. 2023; 22 (1): 58. doi: 10.1186/s12943-023-01725-x
  9. Sultanbaev A.V., Musin S., Menshikov K., Sultanbaeva N., Nasretdinov A., Menshikova I., Sultanbaev M., Kudlay D., Prodeus A. 58P Quantitative indicators of TREC and KREC excision rings in breast cancer. ESMO Open. 2023; 8 (1). doi: 10.1016/j.esmoop.2023.101282
  10. Thommen D.S., Schumacher T.N. T Cell Dysfunction in Cancer. Cancer Cell. 2018; 33 (4): 547–62. doi: 10.1016/j.ccell.2018.03.012
  11. Bone G., Lauder I. Cellular immunity, peripheral blood lymphocyte count and pathological staging of tumours in the gastrointestinal tract. Br. J. Cancer. 1974; 30 (3): 215–21. doi: 10.1038/bjc.1974.184
  12. Gabrilovich D.I., Ostrand-Rosenberg S., Bronte V. Coordinated regulation of myeloid cells by tumours. Nat. Rev. Immunol. 2012; 12 (4): 253–68. doi: 10.1038/nri3175
  13. Allen B.M., Hiam K.J., Burnett C.E., Venida A., DeBarge R., Tenvooren I., Marquez D.M., Cho N.W., Carmi Y., Spitzer M.H. Systemic dysfunction and plasticity of the immune macroenvironment in cancer models. Nat. Med. 2020; 26 (7): 1125–34. doi: 10.1038/s41591-020-0892-6
  14. Borg C., Ray-Coquard I., Philip I., Clapisson G., Bendriss-Vermare N., Menetrier-Caux C., Sebban C., Biron P., Blay J.Y. CD4 lymphopenia as a risk factor for febrile neutropenia and early death after cytotoxic chemotherapy in adult patients with cancer. Cancer. 2004; 101 (11): 2675–80. doi: 10.1002/cncr.20688
  15. Ray-Coquard I., Borg C., Bachelot T., Sebban C., Philip I., Clapisson G., Le Cesne A., Biron P., Chauvin F., Blay J.Y.; ELYPSE study group. Baseline and early lymphopenia predict for the risk of febrile neutropenia after chemotherapy. Br. J. Cancer. 2003; 88 (2): 181–6. doi: 10.1038/sj.bjc.6600724
  16. Péron J., Cropet C., Tredan O., Bachelot T., Ray-Coquard I., Clapisson G., Chabaud S., Philip I., Borg C., Cassier P., Labidi Galy I., Sebban C., Perol D., Biron P., Caux C., Menetrier-Caux C., Blay J.Y. CD4 lymphopenia to identify end-of-life metastatic cancer patients. Eur. J. Cancer. 2013; 49 (5): 1080–9. doi: 10.1016/j.ejca.2012.11.003
  17. Ray-Coquard I., Cropet C., Van Glabbeke M., Sebban C., Le Cesne A., Judson I., Tredan O., Verweij J., Biron P., Labidi I., Guastalla J.P., Bachelot T., Perol D., Chabaud S., Hogendoorn P.C., Cassier P., Dufresne A., Blay J.Y.; European Organization for Research and Treatment of Cancer Soft Tissue and Bone Sarcoma Group. Lymphopenia as a prognostic factor for overall survival in advanced carcinomas, sarcomas, and lymphomas. Cancer Res. 2009; 69 (13): 5383–91. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-08-3845
  18. Trédan O., Manuel M., Clapisson G., Bachelot T., Chabaud S., Bardin-dit-Courageot C., Rigal C., Biota C., Bajard A., Pasqual N., Blay J.Y., Caux C., Ménétrier-Caux C. Patients with metastatic breast cancer leading to CD4+ T cell lymphopaenia have poor outcome. Eur. J. Cancer. 2013; 49 (7): 1673–82. doi: 10.1016/j.ejca.2012.11.028
  19. Bagchi S., Yuan R., Engleman E.G. Immune Checkpoint Inhibitors for the Treatment of Cancer: Clinical Impact and Mechanisms of Response and Resistance. Annu. Rev. Pathol. 2021; 16: 223–49. doi: 10.1146/annurev-pathol-042020-042741
  20. Sakamuri D., Glitza I.C., Betancourt Cuellar S.L., Subbiah V., Fu S., Tsimberidou A.M., Wheler J.J., Hong D.S., Naing A., Falchook G.S., Fanale M.A., Cabanillas M.E., Janku F. Phase I Dose-Escalation Study of Anti-CTLA-4 Antibody Ipilimumab and Lenalidomide in Patients with Advanced Cancers. Mol. Cancer Ther. 2018; 17 (3): 671–6. doi: 10.1158/1535-7163.MCT-17-0673
  21. Simmons D., Lang E. The Most Recent Oncologic Emergency: What Emergency Physicians Need to Know About the Potential Complications of Immune Checkpoint Inhibitors. Cureus. 2017; 9 (10): 1774. doi: 10.7759/cureus.1774
  22. Дмитриевская М.И., Ибрагимова Д.Н., Усеинова А.Н., Ребик А.А. Роль ингибиторов иммунных контрольных точек в реализации противоракового иммунитета. Крымский журнал экспериментальной и клинической медицины. 2021; 11 (3): 93–9. doi: 10.37279/2224-6444-2021-11-3-93-99 [Dmitrievskaja M.I., Ibragimova D.N., Useinova A.N., Rebik A.A. The role of immune checkpoint inhibitors in antitumoral immunity. Crimea J. of Experimental and Clinical Medicine. 2021; 11 (3): 93–9. doi: 10.37279/2224-6444-2021-11-3-93-99 (in Russian)].
  23. Лепик К.В. Ингибиторы иммунных контрольных точек в терапии лимфом. Клиническая онкогематология. 2018; 11 (4): 303–12. doi: 10.21320/2500-21392018-11-4-303-312 [Gribkova I.V. Immune checkpoint inhibitors in pediatric hematologic malignancies. Oncohematology. 2023; 18 (2): 25 34. doi: 10.21320/2500-21392018-11-4-303-312 (in Russian)].
  24. Qayoom H., Sofi S., Mir M.A. Targeting tumor microenvironment using tumor-infiltrating lymphocytes as therapeutics against tumorigenesis. Immunol. Res. 2023. doi: 10.1007/s12026-023-09376-2
  25. Farmer H., McCabe N., Lord C.J., Tutt A.N., Johnson D.A., Richardson T.B., Santarosa M., Dillon K.J., Hickson I., Knights C., Martin N.M., Jackson S.P., Smith G.C., Ashworth A. Targeting the DNA repair defect in BRCA mutant cells as a therapeutic strategy. Nature. 2005; 434 (7035): 917–21. doi: 10.1038/nature03445
  26. Саяпина М. С. Иммунорегуляторные функции ингибиторов PD-1/PD-L1 и развитие к ним резистентности. Злокачественные опухоли. 2017; 7 (2): 94–9. doi: 10.18027/2224-5057-2017-2-94-99 [Sayapina M.S. Immunoregulatory functions of PD-1/PD-L1 inhibitors and development of resistance to them. Malignant tumours. 2017; 7 (2): 94–9. doi: 10.18027/2224-5057-2017-2-94-99 (in Russian)].
  27. Boussiotis V.A. Molecular and Biochemical Aspects of the PD-1 Checkpoint Pathway. N. Engl. J. Med. 2016; 375 (18): 1767–78. doi: 10.1056/NEJMra1514296
  28. Болотина Л.В., Каприн А.Д. Иммуноонкология: новые горизонты лекарственной терапии солидных опухолей. Онкология. Журнал им. П.А. Герцена. 2017; 6 (5): 74–80. doi: 10.17116/onkolog20176574-80 [Bolotina L.V., Kaprin A.D. Immuno-oncology: new possibilities of drug therapy for solid tumors. P.A. Herzen J. of Oncology. 2017; 6 (5): 74 80. doi: 10.17116/onkolog20176574-80 (in Russian)].
  29. Южакова Д.В., Ширманова М.В., Сергеева Т.Ф., Загайнова Е.В., Лукьянов К.А. Иммунотерапия злокачественных новообразований. Современные технологии в медицине. 2016; 8 (1): 173–82. doi: 10.17691/stm2016.8.1.23 [Yuzhakova D.V., Shirmanova M.V., Sergeeva T.F., Zagaynova E.V., Lukyanov К.А. Immunotherapy of Cancer (Review). Sovremennye tehnologii v medicine. 2016; 8 (1): 173. doi: 10.17691/stm2016.8.1.23 (in Russian)].
  30. Zhang Y., Zhang Z. The history and advances in cancer immunotherapy: understanding the characteristics of tumor-infiltrating immune cells and their therapeutic implications. Cell. Mol. Immunol. 2020; 17 (8): 807–21. doi: 10.1038/s41423-020-0488-6
  31. Ott P.A., Bang Y.J., Piha-Paul S.A., Razak A.R.A., Bennouna J., Soria J.C., Rugo H.S., Cohen R.B., O’Neil B.H., Mehnert J.M., Lopez J., Doi T., van Brummelen E.M.J., Cristescu R., Yang P., Emancipator K., Stein K., Ayers M., Joe A.K., Lunceford J.K. T-Cell-Inflamed Gene-Expression Profile, Programmed Death Ligand 1 Expression, and Tumor Mutational Burden Predict Efficacy in Patients Treated With Pembrolizumab Across 20 Cancers: KEYNOTE-028. J. Clin. Oncol. 2019; 37 (4): 318–27. doi: 10.1200/JCO.2018.78.2276
  32. Qin T., Zeng Y.D., Qin G., Xu .F, Lu J.B., Fang W.F., Xue C., Zhan J.H., Zhang X.K., Zheng Q.F., Peng R.J., Yuan Z.Y., Zhang L., Wang S.S. High PD-L1 expression was associated with poor prognosis in 870 Chinese patients with breast cancer. Oncotarget. 2015; 6 (32): 33972–81. doi: 10.18632/oncotarget.5583
  33. Okiyama N., Tanaka R. Immune-related adverse events in various organs caused by immune checkpoint inhibitors. Allergology international: official J. of the Japanese Society of Allergology. 2022; 71 (2): 169–78. doi: 10.1016/j.alit.2022.01.001
  34. Yao L., Jia G., Lu L., Bao Y., Ma W. Factors affecting tumor responders and predictive biomarkers of toxicities in cancer patients treated with immune checkpoint inhibitors. Int. Immunopharmacol. 2020; 85: 106628. doi: 10.1016/j.intimp.2020.106628
  35. Tsimafeyeu I., Imyanitov E., Zavalishina L., Raskin G., Povilaitite P., Savelov N., Kharitonova E., Rumyantsev A., Pugach I., Andreeva Y., Petrov A., Frank G., Tjulandin S. Agreement between PDL1 immunohistochemistry assays and polymerase chain reaction in non-small cell lung cancer: CLOVER comparison study. Sci. Rep. 2020; 10 (1): 3928. doi: 10.1038/s41598-020-60950-2
  36. van den Bulk J., Verdegaal E.M., de Miranda N.F.. Cancer immunotherapy: broadening the scope of targetable tumours. Open Biol. 2018; 8 (6): 180037. doi: 10.1098/rsob.180037
  37. Wang Y., Liu Z.G., Yuan H., Deng W., Li J., Huang Y., Kim B.Y.S., Story M.D., Jiang W. The Reciprocity between Radiotherapy and Cancer Immunotherapy. Clin. Cancer Res. 2019; 25 (6): 1709–17. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-18-2581
  38. Yu W.D., Sun G., Li J., Xu J., Wang X. Mechanisms and therapeutic potentials of cancer immunotherapy in combination with radiotherapy and/or chemotherapy. Cancer Lett. 2019; 452: 66–70. doi: 10.1016/j.canlet.2019.02.048
  39. Volkova M., Tsimafeyeu I., Olshanskaya A., Khochenkova Y., Solomko E., Ashuba S., Khochenkov D., Matveev V. Expression of growth factors and their receptors in the primary renal cell carcinoma: new data and review. Cent. European J. Urol. 2020; 73 (4): 466–75. doi: 10.5173/ceju.0189.R1
  40. Wolf M.M., Rathmell W.K., de Cubas A.A. Immunogenicity in renal cell carcinoma: shifting focus to alternative sources of tumour-specific antigens. Nat. Rev. Nephrol. 2023. doi: 10.1038/s41581-023-00700-5.
  41. Tsimafeyeu I., Statsenko G., Vladimirova L., Besova N., Artamonova E., Raskin G., Rykov I., Mochalova A., Utyashev I., Gorbacheva S., Kazey V., Gavrilova E., Dragun N., Moiseyenko V., Tjulandin S. A phase 1b study of the allosteric extracellular FGFR2 inhibitor alofanib in patients with pretreated advanced gastric cancer. Invest. New Drugs. 2023; 41 (2): 324–32. doi: 10.1007/s10637-023-01340-z
  42. Sultanbaev A.V., Musin S., Menshikov K., Sultanbaeva N., Menshikova I., Fatikhova A., Sultanbaev M., Askarov V., Kudlay D. 99P Quantitative indicators of TREC and KREC excision rings in malignant neoplasms. ESMO Open. 2023; 8 (1): 100957. DOI: https: //DOI.org/10.1016/j.esmoop.2023.100957
  43. Gellert M. V(D)J recombination: RAG proteins, repair factors, and regulation. Annu. Rev. Biochem. 2002; 71: 101–32. doi: 10.1146/annurev.biochem.71.090501.150203
  44. Hiom K., Gellert M. A stable RAG1-RAG2-DNA complex that is active in V(D)J cleavage. Cell. 1997; 88 (1): 65–72. doi: 10.1016/s0092-8674(00)81859-0
  45. Султанбаев А.В., Мусин Ш.И., Меньшиков К.В., Билалов Ф.С., Меньшикова И.А., Султанбаева Н.И., Липатов Д.О., Аскаров В.Е., Султанбаев М.В., Насретдинов А.Ф., Батырова Э.Р. Прогностическое значение эксцизионных колец KREC и TREC при злокачественных новообразованиях. Материалы V юбилейного Международного Форума онкологии и радиологии. М., 2022; 191. [Sultanbaev A.V., Musin Sh.I., Menshikov K.V., Bilalov F.S., Menshikova I.A., Sultanbaeva N.I., Lipatov D.O., Askarov V.E., Sultanbaev M. .V., Nasretdinov A.F., Batyrova E.R. Prognostic value of KREC and TREC excision rings in malignant neoplasms. Materials of the V Anniversary International Forum of Oncology and Radiology. Moscow, 2022; 191 (in Russian)].
  46. Gordukova M., Oskorbin I., Mishukova O., Zimin S., Zinovieva N., Davydova N., Smirnova A., Nikitina I., Korsunsky I., Filipenko M., Prodeus A. Development of real-time multiplex pcr for the quantitative determination of TREC’S AND KREC’S in whole blood and in dried blood spots. Medical Immunology (Russia). 2015; 17 (5): 467. doi: 10.15789/1563-0625-2015-5-467-478
  47. Schatz D.G., Swanson P.C. V(D)J recombination: mechanisms of initiation. Annu. Rev. Genet. 2011; 45: 167–202. doi: 10.1146/annurev-genet-110410-132552
  48. Rodgers K.K. Riches in RAGs: Revealing the V(D)J Recombinase through High-Resolution Structures. Trends Biochem. Sci. 2017; 42 (1): 72–84. doi: 10.1016/j.tibs.2016.10.003
  49. Lu J., Van Laethem F., Bhattacharya A., Craveiro M., Saba I., Chu J., Love N.C., Tikhonova A., Radaev S., Sun X., Ko A., Arnon T., Shifrut E., Friedman N., Weng N.P., Singer A., Sun P.D. Molecular constraints on CDR3 for thymic selection of MHC-restricted TCRs from a random pre-selection repertoire. Nat. Commun. 2019; 10 (1): 1019. doi: 10.1038/s41467-019-08906-7
  50. Wu G.S., Culberson E.J., Allyn B.M., Bassing C.H. Poor-Quality Vβ Recombination Signal Sequences and the DNA Damage Response ATM Kinase Collaborate to Establish TCRβ Gene Repertoire and Allelic Exclusion. J. Immunol. 2022; 208 (11): 2583–92. doi: 10.4049/jimmunol.2100489
  51. Hiom K., Gellert M. Assembly of a 12/23 paired signal complex: a critical control point in V(D)J recombination. Mol. Cell. 1998; 1 (7): 1011–9. doi: 10.1016/s1097-2765(00)80101-x
  52. Swanson P.C. A RAG-1/RAG-2 tetramer supports 12/23-regulated synapsis, cleavage, and transposition of V(D)J recombination signals. Mol. Cell. Biol. 2002; 22 (22): 7790–801. doi: 10.1128/MCB.22.22.7790-7801.2002
  53. Wu G.S., Bassing C.H. Inefficient V(D)J recombination underlies monogenic T cell receptor β expression. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2020; 117 (31): 18172–4. doi: 10.1073/pnas.2010077117
  54. Давыдова Н.В., Продеус А.П., Образцов И.В., Кудлай Д.А., Корсунский И.А. Референсные значения концентрации TREC и KREC у взрослых. Врач. 2021; 32 (6): 21–8. DOI: https: //doi.org/10.29296/25877305-2021-06-05 [Davydova N.V., Prodeus A.P., Obraztsov I.V., Kudlai D.A., Korsunsky I.A. Reference values for TREC and KREC concentration in adults. Vrach (The Doctor). 2021; 32 (6): 21–8. DOI: https: //doi.org/10.29296/25877305-2021-06-05]
  55. Образцов И.В., Гордукова М.А., Цветкова Е.В., Кононова Е.В., Томилин И.Я., Кондратчик К.Л., Карелин А.Ф., Продеус А.П., Карачунский А.И., Румянцев А.Г. Эксцизионные кольца V(D)J рекомбинации B- и T-клеток как показатели иммунологической реконституции у детей с острым лимфобластным лейкозом. Вопросы гематологии/онкологии и иммунопатологии в педиатрии. 2016; 15 (4): 4250. DOI: https://doi.org/10.24287/1726-1708-2016-15-4-42-50 [Obraztsov I.V., Gordukova M.A., Tsvetkova E.V., Kononova E.V., Tomilin I.Y., Kondratchik K.L., Karelin A.F., Prodeus A.P., Karachunskiy A.I., Rumyantsev A.G. B- and T-cell V(D)J-recombination excision circles as indicators of immunological reconstitution in children with acute lymphoblastic leukemia. Pediatric Hematology/Oncology and Immunopathology. 2016; 15 (4): 42–50. DOI: https://doi.org/10.24287/1726-1708-2016-15-4-42-50 (in Russian)].
  56. Kwok J.S.Y, Cheung S.K.F., Ho J.C.Y., Tang I.W.H., Chu P.W.K., Leung E.Y.S., Lee P.P.W., Cheuk D.K.L., Lee V., Ip P., Lau Y.L. Establishing Simultaneous T Cell Receptor Excision Circles (TREC) and K-Deleting Recombination Excision Circles (KREC) Quantification Assays and Laboratory Reference Intervals in Healthy Individuals of Different Age Groups in Hong Kong. Front. Immunol. 2020; 11: 1411. doi: 10.3389/fimmu.2020.01411
  57. Образцов И.В., Гордукова М.А., Северина Н.А., Бидерман Б.В., Смирнова С.Ю., Судариков А.Б., Никитин Е.А., Румянцев А.Г. Эксцизионные кольца V(D)J-рекомбинации B- и T-клеток как прогностический маркер при В-клеточном хроническом лимфолейкозе. Клиническая онкогематология. 2017; 10 (2): 131–40. doi: 10.21320/2500-2139-2017-10-2-131-140 [Obraztsov I.V., Gordukova M.A., Severina N.A., Biderman B.V., Smirnova S.Yu., Sudarikov A.B., Nikitin E.A., Rumyantsev A.G. V(D)J Recombination Excision Circles of B- and T-cells as Prognostic Marker in B-Cell Chronic Lymphocytic Leukemia. Clinical oncohematology. 2017; 10 (2): 131–40. doi: 10.21320/2500-2139-2017-10-2-131-140 (in Russian)].
  58. Toubert A., Glauzy .S, Douay C., Clave E. Thymus and immune reconstitution after allogeneic hematopoietic stem cell transplantation in humans: never say never again. Tissue Antigens. 2012; 79 (2): 83–9. doi: 10.1111/j.1399-0039.2011.01820.x
  59. Velardi E., Clave E., Arruda L.C.M., Benini F., Locatelli F., Toubert A. The role of the thymus in allogeneic bone marrow transplantation and the recovery of the peripheral T-cell compartment. Semin. Immunopathol. 2021; 43 (1): 101–17. doi: 10.1007/s00281-020-00828-7
  60. Mensen A., Ochs C., Stroux A., Wittenbecher F., Szyska M., Imberti L., Fillatreau S., Uharek L., Arnold R., Dörken B., Thiel A., Scheibenbogen C., Na I.K. Utilization of TREC and KREC quantification for the monitoring of early T- and B-cell neogenesis in adult patients after allogeneic hematopoietic stem cell transplantation. J. Transl. Med. 2013; 11: 188. doi: 10.1186/1479-5876-11-188
  61. Корсунский И.А., Кудлай Д.А., Продеус А.П., Щербина А.Ю., Румянцев А.Г. Неонатальный скрининг на первичные иммунодефицитные состояния и Т-/В-клеточные лимфопении как основа формирования групп риска детей с врожденными патологиями. Педиатрия им. Г.Н. Сперанского. 2020; 99 (2): 8–15. doi: 10.24110/0031-403X-2020-99-2-8-15 [Korsunskiy I.A., Kudlay D.A., Prodeus A.P., Shсherbina A.Yu., Rumjancev A.G. Neonatal screening for primary immunodeficiency and Т-/B-cell lymphopenia as the basis for the formation of risk groups for children with congenital pathologies. Pediatria n.a. G.N. Speransky. 2020; 99 (2): 8–15. doi: 10.24110/0031-403X-2020-99-2-8-15 (in Russian)].
  62. Somech R., Lev A., Simon A.J., Korn D., Garty B.Z., Amariglio N., Rechavi G., Almashanu S., Zlotogora J., Etzioni A. Newborn screening for severe T and B cell immunodeficiency in Israel: a pilot study. Isr. Med. Assoc. J. 2013; 15 (8): 472–7.
  63. Drylewicz J., Vrisekoop N., Mugwagwa T., de Boer A.B., Otto S.A., Hazenberg M.D., Tesselaar K., de Boer R.J., Borghans J.A. Reconciling Longitudinal Naive T-Cell and TREC Dynamics during HIV-1 Infection. PLoS One. 2016; 11 (3): e0152513. doi: 10.1371/journal.pone.0152513
  64. Mikhael N.L., Elsorady M. Clinical significance of T cell receptor excision circle (TREC) quantitation after allogenic HSCT. Blood Res. 2019; 54(4): 274-281. doi: 10.5045/br.2019.54.4.274
  65. Morgun A., Shulzhenko N., Socorro-Silva A., Diniz R.V., Almeida D.R., Gerbase-Delima M. T cell receptor excision circles (TRECs) in relation to acute cardiac allograft rejection. J. Clin. Immunol. 2004; 24 (6): 612–6. doi: 10.1007/s10875-004-6246-1
  66. Söderström A., Vonlanthen S., Jönsson-Videsäter K., Mielke S., Lindahl H., Törlén J., Uhlin M. T cell receptor excision circles are potential predictors of survival in adult allogeneic hematopoietic stem cell transplantation recipients with acute myeloid leukemia. Front. Immunol. 2022; 13: 954716. doi: 10.3389/fimmu.2022.954716
  67. Козлов В.А., Тихонова Е.П., Савченко А.А., Кудрявцев И.В., Андронова Н.В., Анисимова Е.Н., Головкин А.С., Демина Д.В., Здзитовецкий Д.Э., Калинина Ю.С., Каспаров Э.В., Козлов И.Г., Корсунский И.А., Кудлай Д.А., Кузьмина Т.Ю., Миноранская Н.С., Продеус А.П., Старикова Э.А., Черданцев Д.В., Чесноков А.Б., Шестерня П.А., Борисов А.Г. Клиническая иммунология. Практическое пособие для инфекционистов. Красноярск: Поликор, 2021; 563. doi: 10.17513/np.518 [Kozlov V.A., Tikhonova E.P., Savchenko A.A., Kudryavtsev I.V., Andronova N.V., Anisimova E.N., Golovkin A.S., Demina D.V., Zdzitovetsky D. .E., Kalinina Yu.S., Kasparov E.V., Kozlov I.G., Korsunsky I.A., Kudlai D.A., Kuzmina T.Yu., Minoranskaya N.S., Prodeus A.P. ., Starikova E.A., Cherdantsev D.V., Chesnokov A.B., Shesternya P.A., Borisov A.G. Clinical immunology. A practical guide for infectious disease specialists. Krasnoyarsk: Polikor, 2021; 563. doi: 10.17513/np.518 (in Russian)].
  68. Motta M., Chiarini M., Ghidini C., Zanotti C., Lamorgese C., Caimi L., Rossi G., Imberti L. Quantification of newly produced B and T lymphocytes in untreated chronic lymphocytic leukemia patients. J. Transl. Med. 2010; 8: 111. doi: 10.1186/1479-5876-8-111
  69. Robert C., Lebbé C., Lesimple T., Lundström E., Nicolas V., Gavillet B., Crompton P., Baroudjian B., Routier E., Lejeune F.J. Phase I Study of Androgen Deprivation Therapy in Combination with Anti-PD-1 in Melanoma Patients Pretreated with Anti-PD-1. Clin. Cancer Res. 2023; 29 (5): 858–65. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-22-2812
  70. Wu G.S., Yang-Iott K.S., Klink M.A., Hayer K.E., Lee K.D., Bassing C.H. Poor quality Vβ recombination signal sequences stochastically enforce TCRβ allelic exclusion. J. Exp. Med. 2020; 217 (9): e20200412. doi: 10.1084/jem.20200412
  71. Tumeh P.C., Harview C.L., Yearley J.H., Shintaku I.P., Taylor E.J., Robert L., Chmielowski B., Spasic M., Henry G., Ciobanu V., West A.N., Carmona M., Kivork C., Seja E., Cherry G., Gutierrez A.J., Grogan T.R., Mateus C., Tomasic G., Glaspy J.A., Emerson R.O., Robins H., Pierce R.H., Elashoff D.A., Robert C., Ribas A. PD-1 blockade induces responses by inhibiting adaptive immune resistance. Nature. 2014; 515 (7528): 568–71. doi: 10.1038/nature13954.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах