Роль растворимых молекул иммунных контрольных точек при злокачественных заболеваниях системы крови (обзор литературы)

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Введение. Сигнальные пути иммунных контрольных точек (ИКТ) задействованы в регуляции функций Т-лимфоцитов и NK-клеток, играющих ключевую роль в противоопухолевом и противовирусном контроле.

Целью нашего исследования являлся систематический анализ сведений, представленных в современной литературе, посвященной роли растворимых молекул ИКТ в развитии гематологических неоплазий.

Материал и методы. В обзор включены данные зарубежных и отечественных статей, опубликованных в PubMed за последние 15 лет, которые посвящены роли растворимых молекул ИКТ в патогенезе злокачественных заболеваний системы крови.

Результаты. Развитие лимфоидных и миелоидных неоплазий сопровождается повышением уровня ряда растворимых иммунорегуляторных молекул (белок программируемой клеточной гибели 1 (PD-1) и его лиганды PD-L1 и PD-L2, антиген цитотоксических лимфоцитов 4 (CTLA-4), домен иммуноглобулина Т-клеток и домен 3 муцина (TIM-3), костимулирующие молекулы sCD86, sCD40), что ассоциировано с неблагоприятным прогнозом, меньшей продолжительностью общей и беспрогрессивной выживаемости пациентов. Установленные закономерности подтверждают патогенетическую роль перечисленных растворимых молекул ИКТ в развитии злокачественных заболеваний системы крови, а также их значимость в качестве предикторов ответа на терапию и стратификации на группы риска.

Заключение. Представленный анализ демонстрирует значимую патогенетическую и прогностическую роль ИКТ при гематологических неоплазиях лимфоидной и миелоидной природы.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Татьяна Валентиновна Глазанова

Российский Научно-исследовательский институт гематологии и трансфузиологии Федерального медико-биологического агентства

Автор, ответственный за переписку.
Email: tatyana-glazanova@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-1022-8127

главный научный сотрудник, доктор медицинских наук

Россия, 191024, Санкт-Петербург, ул. 2-я Советская, д. 16

Ирина Евгеньевна Павлова

Российский Научно-исследовательский институт гематологии и трансфузиологии Федерального медико-биологического агентства

Email: pavlova@niigt.ru
ORCID iD: 0000-0001-7756-4902

главный научный сотрудник, доктор медицинских наук

Россия, 191024, Санкт-Петербург, ул. 2-я Советская, д. 16

Елена Витальевна Кузьмич

Российский Научно-исследовательский институт гематологии и трансфузиологии Федерального медико-биологического агентства

Email: yelenakuzmich@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-0489-1763

ведущий научный сотрудник, кандидат биологических наук

Россия, 191024, Санкт-Петербург, ул. 2-я Советская, д. 16

Николай Евгеньевич Кушлинский

Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина

Email: kne3108@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-3898-4127

научный руководитель лаборатории, доктор медицинских наук, профессор, академик РАН

Россия, 115522, Москва, Каширское шоссе, 24

Список литературы

  1. Рукавицын О.А. Гематология. Национальное руководство, 2-е издание. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2024; 920. [Rukavitsyn O.A. Hematology. National Guide, 2nd edition. GEOTAR-Media, 2024; 920 (in Russian)].
  2. Rau F.C., Dieter J., Luo Z., Priest S., Baumgarth N. B7-1/2 (CD80/CD86) direct signaling to B cells enhances IgG secretion. J. Immunol. 2009; 183 (12): 7661–71. doi: 10.4049/jimmunol.0803783
  3. Hock B., Patton W.N., Budhia S., Mannari D., Roberts P., McKenzie J.L. Human plasma contains a soluble form of CD86 which is present at elevated levels in some leukaemia patients. Leukemia. 2002; 16 (5): 865–73. https://doi.org/10.1038/sj.leu.2402466
  4. Contin C., Pitard V., Delmas Y., Pelletier N., Defrance T., Moreau J.-F., Merville P., Déchanet-Merville J. Potential role of soluble CD40 in the humoral immune response impairment of uraemic patients. Immonology. 2003; 110: 131–40. https://doi.org/10.1046/j.1365-2567.2003.01716.x)
  5. Wagner A.H., Klersy A., Sultan C.S., Hecker M. Potential role of soluble CD40 receptor in chronic inflammatory diseases. Biochemical Pharmacology. 2023; 217: 115858. https://doi.org/10.1016/j.bcp.2023.115858
  6. Hock B., McKenzie J.L., Patton N.W., Drayson M., Taylor K., Wakeman C. Circulating levels and clinical significance of soluble CD40 in patients with hematologic malignancies. Cancer. 2006; 106 (10): 2148–57. doi: 10.1002/cncr.21816
  7. Landeira-Viñuela A., Arias-Hidalgo C., Juanes-Velasco P., Alcoceba M., Navarro-Bailón A., Pedreira C., Lecrevisse Q., Diaz-Muñoz L., Sánchez-Santos J., Hernández A., Garcia-Vaquero M., Góngora R., De Las Rivas J., González M., Orfao A., Fuentes M. Unravelling soluble immune checkpoints in chronic lymphocytic leukemia: Physiological immunomodulators or immune dysfunction. Front. Immunol. 2022; 13. doi: 10.3389/fimmu.2022.965905
  8. Mortensen J., Hansen I.M., Clausen M.R., Bjerre M., Amore F. Elevated Pre-Therapeutic Serum Levels of Soluble Programmed Death 1 Protein (sPD-1) Identify DLBCL Patients with Adverse Prognostic Features. Blood. 2017; 130 (1): 4148. doi: 10.1182/blood.V130.Suppl_1.4148.4148
  9. Rossille D., Gressier M., Damotte D., Maucort-Boulch D., Pangault C., Semana G., Le Gouill S., Haioun C., Tarte K., Lamy T., Milpied N., Fest T. High level of soluble programmed cell death ligand 1 in blood impacts overall survival in aggressive diffuse large B-cell lymphoma: results from a French multicenter clinical trial. Leukemia. 2014; 28 (12): 2367–75. doi: 10.1038/leu.2014.137.
  10. Vajavaara H., Mortensen J.B., Leivonen S.K., Hansen I.M., Ludvigsen M., Holte H., Jørgensen J., Bjerre M., d’Amore F., Leppä S. Soluble PD-1 But not PD-L1 Levels Predict Poor Outcome in Patients With High-Risk Diffuse Large B-Cell Lymphoma. Cancers (Basel). 2021; 13 (3): 398. doi: 10.3390/cancers13030398
  11. El-Ghammaz A., Gadallah H.A., Kamal G., Maher M.M., Mohamad M.A. Impact of serum soluble programed death ligand 1 on end of treatment metabolic response of diffuse large B cell lymphoma patients. Clin Exp Med. 2018; 18: 505–12. doi: 10.1007/s10238-018-0506-5
  12. Mortensen J., Monrad I., Enemark M., Ludvigsen M., Kamper P., Bjerre M., d’Amore F. Soluble programmed cell death protein 1 (sPD-1) and the soluble programmed cell death ligands 1 and 2 (sPD-L1 and sPD-L2) in lymphoid malignancies. Eur J. Haematol. 2021; 107 (1): 81–91. doi: 10.1111/ejh.13621
  13. Ask E.H., Tschan-Plessl A., Gjerdingen T.J., Sætersmoen M.L., Hoel H.J., Wiiger M.T., Olweus J., Wahlin B., Lingjærde O.C., Horowitz A., Cashen A., Watkins M., Fehniger T., Holte H., Kolstad A., Malmberg K.-J. A Systemic Protein Deviation Score Linked to PD-1+ CD8+ T Cell Expansion That Predicts Overall Survival in Diffuse Large B Cell Lymphoma. Clinical and translational article. 2021; 2 (2): 180–95. E5. https://doi.org/10.1016/j.medj.2020.10.006
  14. Iguchi-Manaka A., Okumura G., Kojima H., Cho Y., Hirochika R., Bando H., Sato T., Yoshikawa H., Hara H., Shibuya A., Shibuya K. Increased Soluble CD155 in the Serum of Cancer Patients. PLoS ONE. 2016; 11 (4): e0152982. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0152982
  15. Azzazi M., Hegab H., El-Ghammaz A., Saber H., Afifi Y. Impact of serum soluble CD155 level at diagnosis on interim response to CHOP with or without rituximab in diffuse large B cell lymphoma. Clin Exp Med. 2022; 22: 173–81. https://doi.org/10.1007/s10238-021-00741-9
  16. Guo X., Wang J., Jin J., Chen H., Zhen Z., Jiang W., Lin T., Huang H., Xia Z., Sun X. High serum level of soluble programmed death ligand 1 is associated with a poor prognosis in Hodgkin lymphoma. Transl Oncol. 2018; 11 (3): 779–85. doi: 10.1016/j.tranon.2018.03.012
  17. Бессмельцев С.С., Сидоркевич С.В. Федеральное руководство по гематологии. М.: СИМК, 2024; 2: 572. [Bessmeltsev S.S., Sidorkevich S.V. Federal Guide to Hematology. M: SIMK, 2024; 2: 572 (in Russian)]
  18. Hock B., Drayson M., Patton W.N., Taylor K., Kerr L., McKenzie J.L. Circulating levels and clinical significance of soluble CD86 in myeloma patients. Br. J. Haematol. 2006; 133: 165–72.
  19. Ishibashi M., Kinoshita R., Inokuchi K., Handa H., Sasaki M., Komatsu N., Imai Y., Hiroike N., Tanaka J., Tanosaki S., Ito S., Sunakawa M., Asayama T., Kuribayashi-hamada Y., Morita R., Tamura H. Serum soluble CD86, still a prognostic factor in the novel agent era in multiple myeloma patients, is produced by myeloma cells with high CD86 variant 3 expression. 2019. Blood. 2019; 134 (1): 436.1 https://doi.org/10.1182/blood-2019-124635
  20. Kinoshita R., Ishibashi M., Handa H., Sasaki M., Imai Y., Tanaka N., Ito S., Sunakawa M., Kaito Y., Asayama T., Komatsu N., Tanaka J., Odajima T., Sugimori H., Yamaguchi H., Inokuchi K., Tamura H. The levels of serum soluble CD86 are correlated with the expression of CD86 variant 3 gene and are prognostic indicators in patients with myeloma. Experimental Hematology. 2023; 121: 38–47. E2. https://doi.org/10.1016/j.exphem.2023.01.006
  21. Wang L., Wang H., Chen H., Wang W.D., Chen X.Q., Geng Q.R., Xia Z.J., Lu Y. Serum levels of soluble programmed death ligand 1 predict treatment response and progression free survival in multiple myeloma. Oncotarget. 2015; 6 (38): 41228–36. doi: 10.18632/oncotarget.5682
  22. Huang S.Y., Lin H.H., Lin C.-W., Li C.C., Yao M., Tang J.L., Hou H.A., Tsay W., Chou S.J., Cheng C.L., Tien H.F. Soluble PD-L1: a biomarker to predict progression of autologous transplantation in patients with multiple myeloma. Oncotarget. 2016; 7 (38): 62490–502. doi: 10.18632/oncotarget.11519
  23. Ho A.W., Leleu X., Hatjiharissi E., Tournilhac O., Xu L., O’Connor K., Manning R., Santos D., Chemaly M., Branagan A., Hunter Z., Patterson C., Anderson K., Treon S. A novel functional role for soluble CD27 in the pathogenesis of Waldenstrom’s Macroglobulinemia. Blood. 2005; 106 (11): 4701. https://doi.org/10.1182/blood.V106.11.4701.4701
  24. Hargreaves P., Al-Shamkhani А. Soluble CD30 binds to CD153 with high affinity and blocks transmembrane signaling by CD30. Eur J. Immunol. 2002; 32 (1): 163–73. doi: 10.1002/1521-4141(200201)32:1
  25. Pornkuna R., Nishioka C., Takemoto S. What is the Role of Soluble Cytokine Receptors in Adult T-cell Leukemia/Lymphoma? J Hematol Thrombo Dis. 2014; 2 (5): 1000154. doi: 10.4172/2329-8790.1000154
  26. Shigeki T. Possible stimulatory immune checkpoint molecules releasing allows adult T-cell leukemia/lymphoma development. Annals of Oncology. 2016; 27 (7): VII85. https://doi.org/10.1093/annonc/mdw521.046
  27. Wang H., Wang L., Liu W.-J., Xia Z.-J., Huang H.-Q., Jiang W.-Q., Li Z.-M., Lu Y. High post-treatment serum levels of soluble programmed cell death ligand 1 predict early relapse and poor prognosis in extranodal NK/T cell lymphoma patients. Oncotarget. 2016; 7 (22): 33035–45. doi: 10.18632/oncotarget.8847
  28. Ward F., Dahal L.N., Wijesekera S.K., Abdul-Jawad S.K., Kaewarpai T., Xu H., Vickers M.A., Barker R.N.. The soluble isoform of CTLA-4 as a regulator of T-cell responses. Eur J. Immunol. 2013; 43 (5): 1274–85. doi: 10.1002/eji.201242529
  29. Ward F., Dahal L.N., Khanolkar R.C., Shankar S.P., Barker R.N. Targeting the alternatively spliced soluble isoform of CTLA-4: prospects for immunotherapy? Immunotherapy. 2014; 6 (10): 1073–84. doi: 10.2217/imt.14.73
  30. Hayashi H., Chamoto K., Hatae R., Kurosaki T., Togashi Y., Fukuoka K., Goto M., Chiba Y., Tomida S., Ota T., Haratani K., Takahama T., Tanizaki J., Yoshida T., Iwasa T., Tanaka K., Takeda M., Hirano T., Yoshida H., Ozasa H., Sakamori Y., Sakai K., Higuchi K., Uga H., Suminaka C., Hirai T., Nishio K., Nakagawa K., Honjo T. Soluble immune checkpoint factors reflect exhaustion of antitumor immunity and response to PD-1 blockade. The Journal of Clinical Investigation. 2024; 134 (7): e168318. https://doi.org/10.1172/JCI168318
  31. Sun T., Hu Z., Shen H., Lin D. Genetic polymorphisms in cytotoxic T-lymphocyte antigen 4 and cancer: the dialectical nature of subtle human immune dysregulation. Cancer Res. 2009; 69: 6011–4. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-09-0176
  32. Simone R., Tenca C., Fais F., Luciani M., De Rossi G., Pesce G., Bagnasco M., Saverino D. A soluble form of CTLA-4 is present in paediatric patients with acute lymphoblastic leukaemia and correlates with CD1d+ expression. PLoS One. 2012; 7 (9): e44654 https://doi.org/10.1371/journal.pone.0044654
  33. Fais F., Tenca C., Cimino G., Coletti V., Zanardi S., Bagnara D., Saverino D., Zarcone D., De Rossi G., Ciccone E., Grossi C.E. CD1d expression on B-precursor acute lymphoblastic leukemia subsets with poor prognosis. Leukemia. 2005; 19 (4): 551–6. doi: 10.1038/sj.leu.2403671
  34. Бессмельцев С.С., Сидоркевич С.В. Федеральное руководство по гематологии. М.: СИМК, 2024; 1: 572. [Bessmeltsev S.S., Sidorkevich S.V. Federal Guide to Hematology. M: SIMK, 2024; 1: 572 (in Russian)]
  35. Kikushige Y., Miyamoto T., Yuda J., Jabbarzadeh-Tabrizi S., Shima T., Takayanagi S., Niiro H., Yurino A., Miyawaki K., Takenaka K., Iwasaki H., Akashi K. A TIM-3/Gal-9 autocrine stimulatory loop drives self-renewal of human myeloid leukemia stem cells and leukemic progression. Cell Stem Cell. 2015; 17 (3): 341–52. doi: 10.1016/j.stem.2015.07.011
  36. Bailly C., Thuru X., Goossens L., Goossens J.F. Biochemical Soluble TIM-3 as a biomarker of progression and therapeutic response in cancers and other of human diseases. Pharmacology. 2023; 209: 115445. doi: 10.1016/j.bcp.2023.115445
  37. Gonçalves Silva I., Yasinska I., Sakhnevych S., Fiedler W., Wellbrock J., Bardelli M., Varani L., Hussain R., Siligardi G., Ceccone G., Berger S., Ushkaryov Y., Gibbs B., Fasler-Kan E., Sumbayev V. The Tim-3-galectin-9 secretory pathway is involved in the immune escape of human acute myeloid leukemia cells. EBioMedicine. 2017; 22: 44–57. https://doi.org/10.1016/j.ebiom.2017.07.018
  38. Hock B., McKenzie J., Patton W., Haring L., Yang Y., Shen Y. The clinical significance of soluble CD86 levels in patients with acute myeloid leukemia and myelodysplastic syndrome. Cancer. 2003; 98 (8): 1681–8. https://doi.org/10.1002/cncr.11693
  39. Aref S., El Agdar M., El Sebaie A., Abouzeid T., Sabry M., Ibrahim L. Prognostic Value of CD200 Expression and Soluble CTLA-4 Concentrations in Intermediate and High-Risk Myelodysplastic Syndrome Patients. Asian Pacific J. of Cancer Prevention. 2020; 21: 2225–30. doi: 10.31557/APJCP.2020.21.8.2225

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ИД "Русский врач", 2024