DISTRIBUTION AND USING OF 14C - ASSIMILATES IN PLANTS WITH DIFFERENT MOPHOLOGICAL AND PHYSIOLOGICAL ORGANIZATION OF SINK-SOURCE SYSTEM

全文:

Рост растений в значительной степени определяется обменом углерода, поскольку большую долю сухого вещества растительного организма составляет именно этот элемент. Одним из главных факторов, регулирующих фотосинтетическую функцию а, следовательно, определяющим рост растений являются взаимоотношения между производящими и потребляющими ассимиляты органами. У разных морфотипов растений направленность потоков фотоассимилятов зависит от уровня их синтеза в листьях и от аттрагирующей активности отдельных органов, т.е. от донорно-акцепторных отношений. Концепция донорно-акцепторных связей во многом способствовала формированию представлений о растении как целостной системы. В процессе реализации морфогенетической программы роста и развития в растении происходит изменение соотношения экспортно-импортной функции органов, т.е. происходит перестройка донорно-акцепторных связей [11, 12]. Эти процессы, как правило, пространственно разделены, и роль связующего звена между ними выполняет транспорт [8]. Ассимиляты, образованные в процессе фотосинтеза, перемещаются к потребляющим тканям, которые связаны либо с активными ростовыми зонами или выполняют функцию запасающих органов. В результате меняется интенсивность и направленность транспорта ассимилятов. Однако влияние эпигенеза на фотосинтез не является односторонним, а во многом определяется условиями внешней среды. Подавление фотосинтеза при неблагоприятных внешних условиях ограничивает процессы роста и отложения в запас [11, 12]. В случае ингибирования транспорта ассимилятов или процессов утилизации продуктов фотосинтеза в акцепторных зонах наблюдается метаболитная репрессия фотосинтеза и как результат накопление в хлоропластах глюкозы и крахмала [4, 8, 11, 17]. В зависимости от скорости утилизации продуктов фотосинтеза в акцепторных зонах изменяется градиент концентрации осмотически активных веществ между донором и акцептором [2, 3]. В модели [16] показано, что дифференциальное развитие акцептирующих тканей зависит от общего пула резервов ассимилятов и скорости их утилизации. Чем быстрее используются ассимиляты в акцепторных зонах, тем выше вероятность их получения. Распределение и использование углерода в течение жизненного цикла исследовано в основном для культурных растений, у которых транспорт ассимилятов направлен в хозяйственно ценные органы: колосья, клубни, корнеплоды [5, 14, 9, 10]. В меньшей степени изучен этот вопрос для многолетних растений [13], особенно для видов, образующих большие клоны. Большую часть биомассы растений такой жизненной формы составляют надземные или подземные стелющиеся побеги, которые являются основным резервом углерода. Цель работы: оценить вклад отдельных органов растений в ассимиляцию углерода, исследовать динамику распределения и использования углерода у столонообразующих растений стахиса Зибольди (Stachys siboldii Mig.) и живучки ползучей (Ajuga reptans L.). МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ Исследования проводили на растениях Stachys siboldii и Ajuga reptans, выращенных в условиях коллекционного питомника. Stachys siboldii --- травянистое столонообразующее растение сем. Lamiaceae, размножается клубнями, которые формируются на столонах. В природе встречается в тропических и субтропических горных районах Китая. Как лекарственное и овощное растение выращивается в некоторых европейских странах, а также в Китае, Японии и Монголии. Ajuga reptans --- многолетнее травянистое растение со стелющимися и укореняющимися побегами сем. Lamiaceae - вид широко распространенный в Европе. В культуру введен в качестве декоративного почвопокровного растения [7]. Характерной чертой S. siboldii и A. reptans является хорошо выраженная способность к вегетативному размножению, которое у S. siboldii осуществляется за счет развития подземных диатропных, у A. reptans - надземных плагиотропных побегов. В условиях Севера семенное размножение у S. siboldii практически отсутствует, а у A. reptans играет второстепенную роль. Растения S. siеboldii выращивали из клубней при площади питания 50х50 см. Растения A. reptans выращивали из перезимовавших прикорневых розеток, которые высаживания на делянки конце апреля - начале мая. Об интенсивности ассимиляции углерода отдельными органами судили по их удельной радиоактивности после экспозиции растений в атмосфере с 14СО2. Растения S. siboldii экспонировали в атмосфере с 14СО2 в фазу бутонизации. Изучение ассимиляционной способности и распределение 14С у растений A. reptans проводили в два этапа: в первом опыте в атмосфере 14СО2 экспонировали растения, с плагиотропными побегами, во втором - молодые имматурные растения без побегов. Меченую углекислоту генерировали из Ва14СО3 при добавлении 0.1 н раствора HCl. Начальная концентрация СО2 в камере составляла 0.09%. Оба вида выдерживали в атмосфере 14СО2 в течение 20 мин. под прозрачной камерой. Пробы для анализа отбирали через 1 ч, 1, 3, 10, 30 и 40 суток после экспозиции. В каждую пробу входило 2 растения. Повторность 4-кратная. Растения разделяли по органам, фиксировали в сушильном шкафу при температуре 105oС, затем досушивали при 70oС. Удельную радиоактивность (УА) порошка определяли на альфа-бета радиометре УМФ-1500 Д (Россия) в 5-6 кратной повторности. Убыль радиоактивности из листьев в результате транспорта ассимилятов вычисляли с учетом затрат на дыхание согласно методике [4]. По величине УА и соотношению масс органов рассчитывали количество метки в растениях. Относительную радиоактивность органов рассчитывали как процент от общего количества 14С в растении и от первоначально ассимилированного количества углерода. У S. siboldii оценивали включение 14С в белки, свободные аминокислоты, сахара и остаточную фракцию [6, 18]. Для этого каждую фракцию доводили до определенного объема, из которого 0.5-1 мл вносили во флаконы со сцинтилляционной жидкостью и просчитывали на счетчике «Бета-1» (Россия), повторность пяти-шестикратная. Стандартная ошибка для радиологического анализа 5 -10%. РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ Ассимиляция 14СО2 и распределение 14С -ассимилятов в растениях S. siboldii. S. siboldii относится к растениям с высокой скоростью роста надземных и подземных органов. Ассимиляция 14СО2 происходит в основном листьями, на долю которых приходилось около 90% ассимилированного углерода. Несмотря на высокую долю стеблей, их активность в расчете на растение была довольно низкой и составляла всего около 7% от радиоактивности целого растения (рис.1), что значительно ниже, чем в злаковых травах [6, 14]. Слабая ассимиляционная способность стеблей, по-видимому, обусловлена сильной опушенностью и низким содержанием в них зеленых пигментов. Из листьев 14С быстро транспортировался в подземную часть растений, где уже через 1 ч после экспозиции в атмосфере с 14СО2 отмечалось свыше 7% метки. Интенсивный отток ассимилятов в подземные органы в первые часы после экспозиции растений в атмосфере 14СО2 наблюдалось нами и для рапонтика сафлоровидного [14]. Спустя сутки около 10% 14С- ассимилятов оттекало из листьев в стебли и подземные органы S. siboldii. Через трое суток в листовых пластинках оставалось 50% ассимилированного углерода, около 30% находилось в стеблях и свыше 20% в подземных органах. Через 30 суток при достаточно низкой удельной активности относительное содержание 14С в листьях составляло около 50% от целого растения (рис.1). Это связано с постоянным новообразованием ассимиляционной поверхности и свидетельствует о высокой аттрагирующей способности молодых листьев. В стеблях количество 14С - ассимилятов через 10 суток после экспозиции уменьшилось более чем в 3 раза (рис.1). Следовательно, у S. siboldii продукты фотосинтеза не депонируются в стеблях, как показано для некоторых растений [1, 15], а используются на формирование активно растущей надземной и подземной биомассы. Длинный световой день, характерный для условий Севера, способствовал образованию мощной надземной массы. Площадь листьев одного растения S. siboldii в фазу цветения составляла около 2 дм2. В этот же период начинался интенсивный рост подземных побегов и образование столонов, т.е. распределение 14С в системе целого растения в этот период обусловлено конкуренцией за ассимиляты формирующихся столонов, и вновь образующихся надземных боковых побегов. Сокращение длины дня и понижение температуры воздуха в первой декаде августа приводило к торможению роста надземных органов и усилению аттрагирующей способности подземных побегов, где сосредотачивалось свыше 40% 14С, из них половина находилась в столонах (рис.1). Следовательно, с ростом столонов и началом формирования клубней изменялась направленность транспорта, ассимиляты, образованные в процессе фотосинтеза, перемещались к активно растущим запасающим органам. Включение 14С в метаболиты биомассы растений S. siboldii. Фракционирование позволяет получать информацию об участии 14С в синтезе и обновлении основных компонентов биомассы. На рисунке 2 представлены данные по включению и распределению 14С в метаболиты листьев. Как видно из рисунка, через 1 ч после экспозиции, основная часть (более 50%) ассимилированного листьями углерода находилась в сахарах, значительная доля была сосредоточена в свободных аминокислотах. Через сутки доля 14С в свободных аминокислотах снижалась более чем в 3 раза и возрастала в белках. Следовательно, основная часть аминокислот, образованных в процессе фотосинтеза, в первые сутки после экспозиции растений в атмосфере 14СО2, использовалась для синтеза белка (рис. 2). На протяжении последующих суток доля 14С в аминокислотах и белках изменялась незначительно и составляла соответственно 5-8% и 35-38% от содержания 14С в листьях. Сразу после экспозиции, в сахарах сосредотачивалось свыше 50% 14С. Сахара активно транспортировались из листьев в акцепторные органы клубни. Через 10 сут. в листьях оставалось около 27% сахаров, значительная доля находилась в проводящих тканях - стеблях (37%) и в запасающих органах - клубнях (32%).Углерод постепенно включался в остаточную фракцию, состоящую в основном из структурных компонентов биомассы (деградирующие соединения белковой природы, структурные углеводы, клетчатка и т.п.) [18]. На 10 сут. доля 14С в остаточной фракции составляла до 30% от общего содержания в листьях (рис. 2). Ассимиляция 14СО2 и распределение 14С - ассимилятов в растениях A. reptans. При экспонировании в атмосфере с 14СО2 растений A. reptans (опыт 1) значительная доля около 50%, образовавшихся в процессе фотосинтеза ассимилятов, локализовалась в листьях материнской розетки (рис. 3). При этом основная часть 14СО2 ассимилировалась зрелыми листьями, удельная активность которых в 2 раза выше, чем у старых (перезимовавших) и молодых листьев. Удельная активность листьев плагиотропных побегов была на порядок ниже, чем материнской розетки, что свидетельствует об их низкой ассимиляционной способности. Однако благодаря тому, что в среднем одно растение образует до 20 побегов, образующих значительную биомассу, на их долю приходилось до 30% ассимилированного углерода от целого растения (рис.3). Доля корней в растениях A. reptans не велика (корни/побеги = 0.12), но их удельная активность сопоставима с удельной активностью листьев, что позволяет предположить наличие быстрого оттока ассимилятов в подземные органы. Доля 14С в корнях составляла 10- 15% от содержания 14С в целом растении и мало изменялась в течение эксперимента (рис.3). Плагиотропные (надземные) побеги в растениях A. reptans развиваются из почек в пазухах нижних хорошо развитых листьев розетки [7]. Для выяснения роли материнской розетки в их образовании, мы экспонировали в атмосфере с 14СО2 растения до начала формирования плагиотропных побегов (опыт 2). Согласно полученным данным, образование плагиотропных побегов происходит в основном за счет использования ассимилятов материнской розетки. В пользу такого предположения говорит тот факт, что на протяжении 50 суток, удельная активность и доля С14 в материнской розетке постепенно снижалась, в корнях изменялась незначительно, а в плагиатропных побегах возрастала с 7 до 30% (рис.3). Следует отметить, что распределение С14 - ассимилятов по плагиотропным побегам неравномерна, чем раньше был сформирован побег, тем выше его удельная активность, т.е. аттрагирующая способность этих побегов выше. Полученные данные позволяют оценить во времени убыль 14С- ассимилятов из растений S. siboldii и A. reptans в течение вегетации. За сутки растения теряли около 20% 14С. В последующие 10 суток количество 14С снижалось и через месяц в растениях оставалось 30 -35% ассимилированного углерода. Через 40 дней ассимиляты практически полностью используются растениями S. siboldii, а в растениях A. reptans остается еще свыше 30% 14С от первоначальной радиоактивности (рис. 5). Это объясняется тем, что для роста плагиотропных побегов и формирования биомассы у A. reptans требуется значительно меньше ассимилятов, чем для образования мощной биомассы у S. siboldii. Расчет показал [4], что за первые сутки на дыхание расходовалось до 16%, на транспорт около 12% ассимилированного углерода. Соотношение транспортных и дыхательных затрат составляло 0.8, т. е. доля радиоактивности приходящаяся на транспорт ассимилятов сопоставима с тратами на дыхание. ЗАКЛЮЧЕНИЕ Анализ распределения и использование ассимилированного углерода растениями Stachys siboldii и Ajuga reptans показал, что направленность транспортных потоков14С - ассмилятов связана с высокой акцептирующей активностью диатропных у S. siboldii и плагиотропных побегов у A.reptans. На их формирование используются продукты текущего фотосинтеза из листьев и ассимиляты из мест временного депонирования. Наличие высокой акцептирующей способности, вероятно связано с функциональной особенностью плагиотропных и диатропных побегов, которые выполняют основную репродуктивную функцию. Высокая скорость роста вегетативных побегов плагиотропных у A. reptans и диатропных у S. siboldii обуславливает высокую конкурентоспособность и выживаемость видов при отсутствии семенного размножения и позволяет растениям в короткий период образовывать большие клоны. Рис. 1. Распределение 14С в биомассе растений S. siboldii: а, б, в, г - листья, стебли, столоны, корни + базальная часть побега Рис. 2. Распределение 14С во фракциях листьев S. siboldii: а, б, в, г - сахара, аминокислоты, белки, остаточная фракция, % от содержания 14С в листьях Рис. 3. Распределение 14С в биомассе растений A. reptans (опыт 1): а, б, в, г - листья материнской розетки, соцветия, плагиотропные побеги (стебель+лист), корни, (доля от содержания 14С в целом растении, %) Рис. 4. Распределение 14С в биомассе растений A. reptans (опыт 2): а, б, в, г - листья материнской розетки, соцветия, плагиотропные побеги (стебель+лист), корни, (доля от содержания 14С в целом растении, %) Рис. 5. Содержание 14С в биомассе растений A. reptans (1) и S. siboldii (2) после ассимиляции в атмосфере с 14СО2 (доля от первоначальной радиоактивности,%)

作者简介

Galina Tabalenkova

Institute of Biology of Komi Scientific Centre of the Ural Branch of the RAS

Email: tabalenkova@ib.komisc.ru
Doctor of Biological Sciences, Senior Researcher at the Laboratory of Ecological Physiology of Plants Syktyvkar

参考

补充文件