Микробиота ротоглотки при ВИЧ-инфекции: тенденции и проблемы в эпоху антиретровирусной терапии


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Цель исследования. Изучение особенностей микробиоты ротоглотки и системного воспаления у больных ВИЧ-инфекцией на фоне антиретровирусной терапии (АРТ) и оценка возможности их коррекции аминодигидрофталазиндионом натрия (АДФШ). Материалы и методы. В исследование было включено 100 больных ВИЧ-инфекцией, получающих АРТ. Исследование концентрации липополисахарид-связывающего белка (LBP) проводили методом ИФА. Состав микробиоты ротоглотки определяли на бактериологическом анализаторе VITEK-2 соmpact дискодиффузионным методом, а также методом масс-спектрометрии. Пациенты были рандомизированы на 2 группы. Пациентам 1-й группы дополнительно к стандартной АРТ назначали сублингвальные таблетки АДФШ. Эффективность терапии оценивали через 4 нед. по результатам динамики концентрации LBP и изменения состава микрофлоры ротоглотки. Результаты. У подавляющего большинства больных наблюдался избыточный рост условно-патогенных микроорганизмов, в том числе Staphylococcus aureus и дрожжеподобных грибов рода Candida. При добавлении к стандартной АРТ иммуномодулятора с противовоспалительным эффектом АДФNa отмечено более быстрое снижение концентрации уровня LBP в крови и числа потенциальных патогенов в микробиоте ротоглотки. Заключение. Курсовой прием препарата АДФNa способствует снижению активности эндотоксинемии и нормализации микробиоты ротоглотки.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Анна Николаевна Матузкова

ФБУН «Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии» Роспотребнадзора

Email: matuzkova@yandex.ru
врач-инфекционист поликлинического отделения Южного окружного центра по профилактике и борьбе со СПИДом

Наталья Юрьевна Пшеничная

ФГБУ «Национальный исследовательский медицинский центр фтизиопульмонологии и инфекционных заболеваний» Минздрава России

Email: natalia-pshenichnaya@yandex.ru
д.м.н., профессор, руководитель международного отдела по организации оказания медицинской помощи; ведущий научный сотрудник центральной научно-исследовательской лаборатории

Анна Валентиновна Алешукина

ФБУН «Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии» Роспотребнадзора

д.м.н., старший научный сотрудник, заведующая лабораторией вирусологии, микробиологии и молекулярно-биологических методов исследований

Антонина Алексеевна Рындич

ФБУН «Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии» Роспотребнадзора

Email: hivrost@mail.ru
к.м.н., начальник Южного окружного центра по профилактике и борьбе со СПИДом

Александр Георгиевич Суладзе

ФБУН «Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии» Роспотребнадзора

Email: hivrost@mail.ru
к.м.н., врач-инфекционист Южного окружного центра по профилактике и борьбе со СПИДом

Татьяна Ивановна Твердохлебова

ФБУН «Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии» Роспотребнадзора

д.м.н., доцент, директор

Андрей Сергеевич Журавлев

ФГБОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Email: Andrew0898@yandex.ru
студент Центра инновационных образовательных программ (ЦИОП) «Медицина будущего»

Денис Владимировнич Донцов

ФГБОУ ВПО «Ростовский государственный медицинский университет» Минздрава России

Email: d-_dontcov@mail.ru
д.м.н., профессор, доцент кафедры инфекционных болезней

Список литературы

  1. Ghannoum M. A., Mukherjee P. K., Jurevic R. J., Retuerto M., Brown R. E., Sikaroodi M., Webster-Cyriaque J., Gillevet P. M. Metabolomics reveals differential levels of oral metabolites in HIV-infected patients: toward novel diagnostic targets. Omics А Journal of Integrative Biology. 2013; 17(1): 5-15. DOI: 10.1089/ omi.2011.0035.
  2. Shiboski C. H., Patton L.L., Webster Cyriaque J.Y., Greenspan D., Traboulsi R.S., Ghannoum M., Jurevic R., Phelan JA., Reznik D., Greenspan J.S. The Oral HIV/AIDS Research Alliance: updated case definitions of oral disease endpoints. J. Ога1 Pathol. Med. 2009; 38(6): 481-8. doi: 10.1111/j.1600-0714.2009.00749.x.
  3. Dandekar S., George M.D., Baumler A.J. Th17 cells, HIV and the gut mucosal barrier. Current Gpinion in HIV and AIDS 2010; 5(2): 173-8. doi: 10.1097/COH.0b013e328335eda3.
  4. Sankaran S., George M.D., Reay E., Guadalupe M., Flamm J., Prindiville T., Dandekar S. Rapid onset of intestinal epithelial barrier dysfunction in primary human immunodeficiency virus infection is driven by an imbalance between immune response and mucosal repair and regeneration. J. Virol. 2008; 82 (1): 538-45. doi: 10.1128/JVI.01449-07.
  5. George M. D. Verhoeven D., Sankaran S., Glavan T., Reay E., Dandekar S. Heightened cytotoxic responses and impaired biogenesis contribute to early pathogenesis in the oral mucosa of simian immunodeficiency virus-infected rhesus macaques. Clin. Vaccine Immunol. 2009; 16(2): 277-81. DOI: 10.1128/ CVI.00265-08
  6. Крюков А.И., Кунельская Н.Л., Гуров А.В., Изотова Г.Н., Старостина А.Е., Лапченко А.С. Клиникомикробиологическая характеристика дисбиотических изменений слизистой оболочки полости рта и ротоглотки. Медицинский совет 2016; (6): 32-5
  7. Alexopoulou L., Kontoyiannis D. Contribution of microbial-associated molecules in innate mucosal responses. Cellular and molecular life sciences: CMLS 2005; 62(12): 1349-358. doi: 10.1007/s00018-005-5039-x
  8. Beck J. M., Beck J.M., Schloss P.D., Venkataraman A., Twigg I.H., Jablonski K.A., Bushman F.D. Multicenter comparison of lung and oral microbiomes of HIV-infected and HIV-uninfected individuals. Am. J. Respirat. Crit. Care Med. 2015; 192(11): 1335-44. doi: 10.1164/rccm.201501-0128OC
  9. Kistler J. O., Arirachakaran P., Poovorawan Y., Dahl6n G., Wade W.G. The oral microbiome in human immunodeficiency virus (HIV)-positive individuals. J. Med. Microbiol. 2015; 64(9): 1094-101. doi: 10.1099/jmm.0.000128.
  10. Saxena D., Li Y., Yang L., Pei Z, Poles M., Abrams W.R., Malamud D. Human microbiome and HIV/AIDS. Curr. HIV AIDS Rep. 2012; 9(1): 44-51. doi: 10.1007/s11904-011-0103-7.
  11. Mukherjee P.K., Chandra J., Retuerto M., Sikaroodi M., Brown R.E., Jurevic R., Salata R.A., Lederman M.M., Gillevet P.M., Ghannoum M.A. Oral mycobiome analysis of HIV-infected patients: identification of Pichia as an antagonist of opportunistic fungi. PLoS Fathogens 2014; 10(3): e1003996. doi: 10.1371/journal.ppat.1003996.
  12. Hegde M.C., Kumar A., Bhat G., Sreedharan S. Oral microflora: a comparative study in HIV and normal patients. Indian J. Otolaryngol. 2014; 66(1): 126-32. doi: 10.1007/s12070-011-0370-z.
  13. Dang A. T., Cotton S., Sankaran-Walters S., Li C., Lee C.M., Dandekar S., Paster B.J., George M.D. Evidence of an increased pathogenic footprint in the lingual microbiome of untreated HIV infected patients. BMC Microbiol. 2012; 12(1): 153. doi: 10.1186/1471-2180-12-153.
  14. Shiboski C. H., Lee A., Chen H., Webster-Cyriaque J., Seaman T., Landovitz R.J., John M., Reilly N., Naini L., Palefsky J., Jacobson M.A. Human papillomavirus infection in the oral cavity of HIV patients is not reduced by initiating antiretroviral therapy. AIDS (London, England). 2016; 30(10): 1573. doi: 10.1097/QAD. 0000000000001072.
  15. Noguera-Julian M. Guillen Y., Peterson J., Reznik D., Harris E.V., Joseph S. J. Oral microbiome in HIV-associated periodontitis. Medicine 2017; 96(12): e5821. DOI: 10.1097/ MD.0000000000005821.
  16. Liljestrand J. M., Paju S., Buhlin K., Persson G.R., Sarna S., Nieminen M.S. Lipopolysaccharide, a possible molecular mediator between periodontitis and coronary artery disease. J. ain. Рeriodontol. 2017; 44(8): 784-92. DOI: 10.1111/ jcpe.12751.
  17. Lew W.Y.W., Bayna E., Molle E. D., Dalton N.D., Lai N.C., Bhargava V., Mendiola V., Clopton P., Tang T. Recurrent exposure to subclinical lipopolysaccharide increases mortality and induces cardiac fibrosis in mice. PloS Ош 2013; 8(4): e61057. doi: 10.1371/journal.pone.0061057
  18. Бусленко А.О., Пшеничная Н.Ю., Алешукина А.В. Изменение состава микрофлоры кишечника при экспериментальной клебсиеллезной инфекции у лабораторных мышей и ее терапии различными иммуномодулирующими препаратами. Врач-аспирант 2015; 71(4.1): 139-44.
  19. Покровский А.В., Мхитарова Л.А., Царев В.Н. Прогностическое значение провоспалительных цитокинов при ингаляционном применении галавита в комплексном лечения ХОБ. Вестник Дагестанской государственной медицинской академии 2014; 1(10): 19-23
  20. Бусленко А.О., Алешукина А.В., Пшеничная Н.Ю. Хуказова С.А., Костенко О.Д., Гопаца Г.В., Малышева М.И.Местный цитокиновый профиль у взрослых пациентов с острыми кишечными инфекциями и его коррекция с применением иммуномодулирующей терапии. Эпидемиол. инфекц. болезни. Актуал. вопр. 2017; (4): 58-64
  21. Бусленко А.О., Пшеничная Н.Ю., Алешукина А.В., Усаткин А.В., Костенко О.Д., Хуказова С.А., Диденко И.В., Усаткина Т.В. Острые кишечные инфекции у взрослых: оценка состояния интестинальной микрофлоры и эффективности аминодигидрофталазиндиона натрия в составе их комплексной терапии. Эпидемиол. инфекц. болезни. Актуал. вопр. 2016; (4): 57-64
  22. Матузкова А.Н., Пшеничная Н.Ю., Суладзе А.Г., Досягаева Л.И., Твердохлебова Т.И., Яговкин Э.А. Клинико-диагностическое значение оценки показателей системного воспаления у больных с ВИЧ-инфекцией. ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии 2018; 10(3): 64-71
  23. Джораева С.К., Гончаренко В.В., Щеголева Е.В., Щербакова Ю.В., Безрученко А.А. Состав и функции микробиоценозов различных биотопов макроорганизма и клиническая значимость их нарушений. Дерматология и венерология 2015; (2): 5-19

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах