COVID-19 и риск реактивации герпесвирусной инфекции


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Цель исследования. Изучение особенностей эпидемического процесса инфекций, вызванных вирусами простого герпеса 1-го и 2-го типов (ВПГ-1, ВПГ-2), Эпштейна-Барр (ВЭБ), цитомегаловирусом (ЦМВ), вирусом герпеса человека 6-го типа (ВГЧ-6) на фоне развития пандемии COVID-19. Материалы и методы. Проведен ретроспективный анализ заболеваемости COVID-19 и регистрируемыми герпесвирусными инфекциями. На наличие маркеров инфицирования вирусами герпеса обследовано 92 донора крови и 95 пациентов с COVID-19 без дыхательной недостаточности. Результаты. Выявлен более ранний и продолжительный подъем заболеваемости инфекционным мононуклеозом в 2020 г. по сравнению с 2019 г.; отсутствие достоверных различий между группами пациентов и доноров по частоте выявления IgG к ВПГ-1 (88-91,6%), ВПГ-2 (20-20,7%), ВЭБ (98,9-100%), ЦМВ (82,1-83,7%), ВГЧ-6 (48,4-51,%); низкоавидных IgG к ВПГ(6,5-8,4%), ВЭБ (2,2-6,3%) и ЦМВ (0-1,1%); IgM к ВПГ-1 (0%), ВПГ-2 (0-1,1%), ЦМВ (0-2,2%) и ВГЧ-6 (5,4-8,4%). Маркеры реактивации ВЭБ-инфекции (IgM VCA и IgG EA при наличии IgG VCA и IgG EBNA) достоверно чаще выявляли в группе пациентов - 70,5 и 56,8% (против 0 и 2,2% у доноров) (p < 0,05). Заключение. SARS- CoV-2 является триггерным фактором, запускающим в организме человека механизм перехода ВЭБ от фазы латенции к литической репродукции, а пациенты с COVID-19 представляют группу риска по реактивации хронической ВЭБ-инфекции.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Татьяна Валерьевна Соломай

Межрегиональное управление № 1 ФМБА России; НИИ вакцин и сывороток им. И.И Мечникова Минобрнауки России

Email: solomay@rambler.ru
к.м.н., заместитель руководителя; старший научный сотрудник, лаборатория эпидемиологического анализа и мониторинга инфекционных заболеваний

Татьяна Анатольевна Семененко

Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи Минздрава России; Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)

Email: semenenko@gamaleya.org
д.м.н., профессор, руководитель отдела эпидемиологии; профессор, кафедра инфектологии и вирусологии

Елена Ивановна Исаева

Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи Минздрава России

Email: immunol.lab@mail.ru
к.б.н., ведущий научный сотрудник, лаборатория иммунологии, НИИ вирусологии им. Д.И. Ивановского

Елизавета Николаевна Ветрова

Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи Минздрава России

научный сотрудник, лаборатория иммунологии, НИИ вирусологии им. Д.И. Ивановского

Алена Игоревна Чернышова

Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи Минздрава России

младший научный сотрудник, лаборатория иммунологии, НИИ вирусологии им. Д.И. Ивановского

Элина Владимировна Роменская

Главный военный клинический госпиталь им. Н.Н. Бурденко Минобороны России

Email: elinaromenskaya@yandex.ru
врач -эпидемиолог, филиал № 8

Наталия Владимировна Каражас

Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи Минздрава России

Email: karazhas@inbox.ru
д.б.н., профессор, заведующая лабораторией эпидемиологии оппортунистических инфекций

Список литературы

  1. Johnson R.W., Bouhassira D., Kassianos G., Leplfege A., Schmader K.E., Weinke T. The impact of herpes zoster and post-herpetic neuralgia on quality-of-life. BMC Med. 2010; (8): 37. doi: 10.1186/1741-7015-8-37
  2. Damm O., Witte J., Wetzka S., Prosser C., Braun S., Welte R., Greiner W. Epidemiology and economic burden of measles, mumps, pertussis, and varicella in Germany: a systematic review. Int. J. Public. Health 2016; 61(7): 847-60. doi: 10.1007/s00038-016-0842-8
  3. Ablashi D., Agut H., Alvarez-Lafuente R., Clark D.A., Dewhurst S., DiLuca D. et al. Classification of HHV-6A and HHV-6B as distinct viruses. Arch. Virol. 2014; 159(5): 863-70. doi: 10.1007/s00705-013-1902-5
  4. Мелехина Е.В., Лысенкова М.Ю., Свитич О.А., Музыка А.Д., Каражас Н.В., Рыбалкина Т.Н. и др. Особенности течения инфекции ВГЧ-6А и ВГЧ-6В у детей, проживающих в Московском регионе. Эпидемиол. инфекц. болезни. Актуал. вопр. 2018; (2): 42-9. doi: 10.18565/epidem.2018.2.42-9
  5. Соломай Т.В., Семененко Т.А., Каражас Н.В., Рыбалкина Т.Н., Корниенко М.Н., Бошьян Р.Е. и др. Оценка риска инфицирования герпесвирусами при переливании донорской крови и ее компонентов. Анализ риска здоровью 2020; (2): 135-42 doi: 10.21668/health. risk/2020.2.15.eng
  6. Соломай Т.В., Семененко Т.А. Вирусные гепатиты В, Сиинфекционный мононуклеоз: эпидемиологическое сходство и различия. Вопросы вирусологии 2020; 65(1): 27-34 doi: https://doi.org/10.36233/0507-4088-2020-65-1-27-34
  7. Sharifipour S., Davoodi Rad K. Seroprevalence of Epstein-Barr virus among children and adults in Tehran, Iran. New Microbes New Infect. 2020; 34: 100641. doi: 10.1016/j.nmni.2019.100641
  8. Cui J., Yan W., Xu S., Wang Q., Zhang W., Liu W., Ni A. Anti-Epstein-Barr virus antibodies in Beijing during 2013-2017: What we have found in the different patients. PLoS One 2018; 13(3): e0193171. doi: 10.1371/journal. pone.0193171
  9. Beader N., Kolarid B., Slacanac D., Tabain I., Vilibid-Cavlek T. Seroepidemiological Study of Epstein-Barr Virus in Different Population Groups in Croatia. Isr. Med. Assoc. J. 2018; 20(2): 86-90.
  10. Smatti M.K., Yassine H.M., Abu Odeh R., Al Marawani A., Taleb S.A., Althani A.A., Nasrallah G.K. Prevalence and molecular profiling of Epstein-Barr virus (EBV) among healthy blood donors from different nationalities in Qatar. PLoS One 2017; 12(12): e0189033. doi: 10.1371/journal. pone.0189033
  11. Соломай Т.В., Семененко Т.А., Каражас Н.В., Рыбалкина Т.Н., Веселовский П.А., Пульнова Н.Л. и др. Особенности изменения показателей иммунного статуса лиц с активными и латентными формами герпесвирусных инфекций. Пермский медицинский журнал 2021; 38 (1): 46-63. doi: 10.17816/ pmj38146%63
  12. Wang F., Nie J., Wang H., Zhao Q., Xiong Y., Deng L. et al. Characteristics of Peripheral Lymphocyte Subset Alterationin COVID-19 Pneumonia. J. Infect. Dis. 2020; 221(11): 1762-9. doi: 10.1093/infdis/jiaa150
  13. Matsubara H., Konishi T., Saito K., Naito A., Sugisawa J., Nakayama S. et al. Zoster duplex in a patient with influenza a and bacterial superinfection. J. Dermatol. 2020; 47(1): e32-e33. doi: 10.1111/1346-8138.15099
  14. Pereiro T., Lourido T., Ricoy J., Valdes L. Influenza Virus, Herpes Simplex Virus and Methicillin-Resistant Staphylococcus arneus in an Immunocompetent Patient. Arch. Bronconeumol. 2018; 54(3): 159-60. doi: 10.1016/j. arbres.2017.07.005
  15. Li C., Li Y., Yang Y., Wang J., Zhu C., Tang S. et al. The Detection and Characterization of Simplex Virus Type 1 in Confirmed Cases. Sci. Rep. 2019; 9(1): 12785. doi: 10.1038/ s41598-019-48994-5
  16. Rathore S.K., Dwibedi B., Pati S.S., Panda S., Panda M., Sabat J., Kar S.K. An Investigation on the Coinfection Measles and HSV-1 in Hospitalized Acute Encephalitis Syndrome Patients in Eastern India. Neurol. India 2019; 67(5): 1358-9. doi: 10.4103/0028-3886.271247
  17. Anaedobe C.G., Ajani T.A. Co Simplex Virus Type 2 and HIV Infections among Pregnant Women in Ibadan, Nigeria. J. Glob. Infect. Dis. 2019; 11(1): 19-24. doi: 10.4103/jgid.jgid_56_18
  18. Ferreira A.C., Romao T.T., Macedo Y.S., Pupe C., Nascimento O.J.M.; Fellow of the American Academy of Neurology (FAAN). COVID-19 and Herpes zoster coinfection presenting with trigeminalneuropathy. Eur J. Neurol. 2020; 27(9): 1748-50. doi: 10.1111/ene.14361.
  19. Tartari F., Spadotto A., Zengarini C., Zanoni R., Guglielmo A., Adorno A. et al. Herpes zoster in COVID-19-positive patients. In. J. Dermatol. 2020; 59(8): 1028-9. doi: 10.1111/ijd.15001
  20. Elsaie M.L., Youssef E.A., Nada H.A. Herpes zoster might be an indicator for latent COVID-19 infection. Dermatol. Ther. 2020; 33(4): e13666. doi: 10.1111/dth.13666
  21. Le Balc’h P., Pinceaux K., Pronier C., Seguin P., Tadi6 J.M., Reizine F. Herpes simplex virus and cytomegalovirus reactivations among severe COVID-19 patients. Crit. Care 2020; 24(1): 530. doi: 10.1186/s13054-020-03252-3
  22. Sinadinos A., Shelswell J. Oral ulceration and blistering in patients with COVID-19. Evid. Based. Dent. 2020; 21(2): 49. doi: 10.1038/s41432-020-0100-z
  23. Bond P. Ethnicity and the relationship between covid-19 and the herpes simplex viruses. Med. Hypotheses 2021; 146: 110447. doi: 10.1016/j.mehy.2020.110447
  24. Amorim Dos Santos J., Normando A.G.C., Carvalho da Silva R.L., De Paula R.M., Cembranel A.C. et al. Oral mucosal lesions in a COVID-19 patient: New signs or secondary manifestations? Int. J. Infect. Dis. 2020; 97: 326-8. doi: 10.1016/j.ijid.2020.06.012
  25. Xu R., Zhou Y., Cai L., Wang L., Han J., Yang X. et al. Co-reactivation of the human herpesvirus alpha subfamily (herpes simplex virus-1 and varicella zoster virus) in a critically ill patient with COVID-19. Br. J. Dermatol. 2020; 183(6): 1145-7. doi: 10.1111/bjd.19484
  26. Cao X., Zhang X., Meng W., Zheng H. Herpes Zoster and Postherpetic Neuralgia in an Elderly Patient with Critical COVID-19: A Case Report. J. Pain. Res. 2020; 13: 2361-5. doi: 10.2147/JPR.S274199
  27. Dursun R., Temiz S.A. The clinics of HHV-6 infection in COVID-19 pandemic: Pityriasisrosea and Kawasaki disease. Dermatol. Ther. 2020; 33(4): e13730. doi: 10.1111/dth.13730
  28. Brambilla L., Maronese C.A., Tourlaki A., Veraldi S. Herpes zoster following COVID-19: a report of three cases. Eur. J. Dermatol. 2020; 30(6): 754-6. doi: 10.1684/ejd.2020.3924
  29. Kadambari S., Klenerman P., Pollard A.J. Why the elderly appear to be more severely affected by COVID-19: The potential role of immunosenescence and CMV. Rev. Med. Virol. 2020; 30(5): e2144. doi: 10.1002/rmv.2144
  30. Amaral PH., Ferreira B.M., Roll S., Neves P.D., Pivetta L,G,, Mohrbacher S. et al. COVID-19 and Cytomegalovirus Co-infection: A Challenging Case of a Critically Ill Patient with Gastrointestinal Symptoms. Eur. J. Case Rep. Intern. Med. 2020; 7(10): 001911. doi: 10.12890/2020_001911
  31. Garcia-Martinez F.J., Moreno-Artero E., Jahnke S. SARS-CoV-2 and EBV. Med. Clin. (Engl). 2020; 155(7): 319-20. doi: 10.1016/j.medcle.2020.06.010
  32. Соломай Т.В., Филатов Н.Н. Сезонность инфекции, вызванной вирусом Эпштейна-Барр. Журнал инфектологии 2020; 12(4): 93-100. doi: 10.22625/2072-67322020-12-4-93-100
  33. Huang W., Berube J., McNamara M., Saksena S., Hartman M., Arshad T. et al. Lymphocyte subset counts in COVID-19 Patients: a meta-analysis. Cytometrya 2020; 97(8): 772- 6. doi: 10.1002/cyto.a.24172
  34. Mehta S.K., Bloom D.C., Plante I., Stowe R., Feiveson A.H., Renner A. et al. Reactivation of Latent Epstein-Barr Virus: A Comparison after Exposure to Gamma, Proton, Carbon, and Iron Radiation. Int. J. Mol. Sci. 2018;b19( 10): pii: E2961. doi: 10.3390/ijms19102961
  35. Баженова Л.Г., Ботвиньева И.А., Ренге Л.В., Полукаров А.Н. Динамика распространенности TORCHинфекций у беременных. Оценка риска первичного инфицирования плода. Мать и дитя в Кузбассе 2012; (1): 22-6.
  36. Островская О.В., Власова М.А., Наговицына Е.Б., Морозова О.И., Ивахнишина Н.М. Распространенность TORCH-инфекций у женщин Приамурья. Бюллетень физиологии и патологии дыхания 2008; 30: 72-7
  37. Herrera-Ortiz A., Conde-Glez C.J., Vergara-Ortega D.N., Garcia-Cisneros Olamendi-Portugal M.L., Sinchez-Alemin M.A. Avidity of antibodies against HSV-2 and risk to neonatal transmission among Mexican pregnant women. Infect. Dis. Obstet. Gynecol. 2013; 140-2. doi: 10.1155/2013/140142
  38. Reward E.E., Muo S.O., Orabueze I.N.A., Ike A.C. Seroprevalence of herpes simplex virus types 1 and 2 in Nigeria: a systematic review and meta-analyses. Pathog. Glob. Health 2019; 113(5): 229-37. doi: 10.1080/20477724.2019.1678938
  39. Dargham S.R., Nasrallah G.K., Al-Absi E.S., Mohammed L.I., Al-Disi R.S., Nofal M.Y., Abu-Raddad L.J. Herpes Simplex Virus Type 2 Seroprevalence Among Different National Populations of Middle East and North African Men. Sex. Transm. Dis. 2018; 45(7): 482-87. doi: 10.1097/OLQ.0000000000000791
  40. Beader N., Kolarid B., Slacanac D., Tabain I., Vilibid-Cavlek T. Seroepidemiological Study of Epstein-Barr virus in Different Population Groups in Croatia. Isr. Med. Assoc. J. 2018; 20 (2): 86-90.
  41. Fourcade G., Germi R., Guerber F., Lupo J., Baccard M., Seigneurin A. et al. Evolution of EBV seroprevalence and primary infection age in a French hospital and a city laboratory network, 2000-2016. PLoS One 2017; 12(4): e0175574. doi: 10.1371/journal.pone.0175574
  42. Lachmann R., Loenenbach A., Waterboer T., Brenner N., Pawlita M., Michel A. et al. Cytomegalovirus (CMV) in the adult population of Germany. PLoS One 2018; 13(7): e0200267. doi: 10.1371/journal.pone.0200267
  43. Cannon M.J., Schmid D.S., Hyde T.B. Review of cytomegalovirus seroprevalence and demographic characteristics associated with infection. Rev. Med.Virol. 2010; 20(4): 202-13. doi: 10.1002/rmv.655
  44. Aimola G., Beythien G., Aswad A., Kaufer B.B. Current understanding of herpesvirus 6 (HHV-6) chromosomal integration. Antiviral Res. 2020; 176: 104720. doi: 10.1016/j. antiviral.2020.104720
  45. Drago F., Ciccarese G., Rebora A., Parodi A. Human herpesvirus-6, -7, and Epstein-Barr virus reactivation in pityriasisrosea during COVID-19. J. Med. Virol. 2021; 93(4): 1850-1. doi: 10.1002/jmv.26549
  46. Paolucci S., Cassaniti I., Novazzi F., Fiorina L., Piralla A., Comolli G. et al. DNA increase in COVID-19 patients with impaired lymphocyte subpopulation count. Int. J. Infect. Dis. 2020; 104: 315-9. doi: 10.1016/j.ijid.2020.12.051

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО «Бионика Медиа», 2021