STUDY OF PHENOLCARBONIC ACIDS OF SALIX TRIANDRA L. TENDRILS GROWING IN THE NORTH CAUCASUS

Full Text

Известно, что фенолкарбоновые кислоты содержатся как в свободном состоянии, так и в виде гликозидов практически в каждом растении. В группе фенолкарбоновых кислот ряд ученых выделяют гидроксикоричные кислоты. Среди гидроксикоричных кислот наиболее распространены кофейная кислота и ее производные: коричная, п-кумаровая, розмариновая, хлорогеновая, неохлорогеновая, синаповая, феруловая и др. Фенолкарбоновые кислоты обладают выраженным фармакологическим действием и могут иметь значение как самостоятельные биологически активные вещества. Салициловая, хлорогеновая, кофейная и галловая кислоты обладают антимикробным и фунгистатическим действием, производные кофейной кислоты проявляют желчегонную активность. Экспериментально установлено, что галловая, ванилиновая, кофейная, п-оксибензойная кислоты являются эффективными перехватчиками свободных радикалов, оказывая антиоксидантное действие [1]. Кислота феруловая проявляет церебро- и кардиопротекторное действие. Также установлено, что кислота галловая обладает выраженной иммуномодулирующей активностью, так как индуцирует выработку оксида азота для макрофагов, потенцирует выработку интерферона и способствует активации иммунокомпетентных клеток [3]. В связи с этим несомненный интерес представляет поиск растений отечественной флоры с высоким содержанием фенолкарбоновых кислот (ФК). Одним из перспективных растений является ива (Salix L.), различные виды которой отличаются высоким содержанием фенольных соединений. Цель настоящей работы - определение качественного состава и количественного содержания фенолкарбоновых кислот в побегах ивы трехтычинковой (Salix triandra L.). Данный вид имеет широкий ареал произрастания, успешно подвергается вегетативному размножению и обеспечивает быстрый и высокий прирост фитомассы [4]. Образцы побегов ивы трехтычинковой были заготовлены в Ставропольском крае в окрестностях г. Пятигорска на берегу реки Подкумок в конце мая - июне 2013 года. В качестве сырья заготавливали только молодые (текущего года) облиственные, неодревесневшие побеги. В дальнейшем проводили сравнение содержания ФК в облиственных побегах, а также в листьях и побегах по отдельности. Качественный состав ФК изучали методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ). Исследование проводили на высокоэффективном жидкостном хроматографе фирмы «Gilston», модель 305 (Франция), оснащенном ручным инжектором «Rheodyne» 7125 (США). Компьютерную обработку результатов исследования проводили с помощью программы Мультихром для Windows. Условия анализа: неподвижная фаза - металлическая колонка размером 4,6 × 250 мм KromasilC18, размер частиц 5 микрон; подвижная фаза: метанол-вода-кислота о-фосфорная концентрированная, в соотношении 400:600:5; температура 20 °С; скорость подачи элюента 0,8 мл/мин; продолжительность анализа 60 мин; детектирование с помощью УФ-детектора «Gilston» UV/VIS (модель 151) при длине волны 254 нм. Пробоподготовка: аналитическую пробу сырья измельчали до размера частиц, проходящих сквозь сито с отверстиями диаметром 2 мм (по ГОСТ 214-83). Около 1,0 г сырья (точная навеска) помещали в коническую колбу вместимостью 100 мл, прибавляли 30 мл спирта этилового 70%, присоединяли к обратному холодильнику и нагревали на кипящей водяной бане в течение 1 часа с момента закипания спиртоводной смеси в колбе. После охлаждения смесь фильтровали через бумажный фильтр в мерную колбу объемом 50 мл и доводили спиртом этиловым 70% до метки. Параллельно готовили серию 0,05% растворов сравнения в спирте этиловом 70%: кислоты галловой, кислоты кофейной, кислоты хлорогеновой, кислоты неохлорогеновой, кислоты коричной, кислоты цикориевой, кислоты феруловой. В колонку хроматографа попеременно вводили по 50 мкл испытуемых извлечений и растворов сравнения и хроматографировали в вышеприведенных условиях. Идентификацию веществ проводили по времени удерживания. Количественное определение суммы ФК проводили экстракционно-спектрофотометрическим методом. Он используется в случае высокого содержания в сырье флавоноидов. Сущность методики заключается в избирательной экстракции ФК в этилацетат. Сначала получают суммарное водно-спиртовое извлечение, которое затем упаривается до водного остатка. Затем создается кислое значение рН, при котором ФК переходят в протонированную форму и экстрагируются органическим растворителем, а флавоноиды остаются в водном слое. Указанные условия признаны оптимальными для разделения этих групп соединений. Методика была успешно апробирована при разделении рутина и кислоты кофейной [5]. Около 1,0 г измельченного сырья (точная навеска) помещали в колбу со шлифом вместимостью 250 мл, приливали 20 мл спирта этилового 70%, присоединяли к обратному холодильнику и нагревали на кипящей водяной бане в течение 30 минут с момента закипания спирта этилового в колбе. Экстракцию повторяли трижды в описанных выше условиях. После охлаждения полученные извлечения фильтровали через бумажный фильтр и упаривали до 20 мл водного остатка. Остаток переносили в мерную колбу вместимостью 50 мл и доводили раствором кислот с рН 2,0 до метки (раствор А). Экстрагировали 5 мл раствора А (Vx) в делительной воронке четырьмя порциями этилацетата по 10 мл (каждая экстракция длилась 5 минут). Этилацетатное извлечение фильтровали через безводный натрия сульфат в мерную колбу вместимостью 50 мл и доводили этилацетатом до метки (раствор Б). Измеряли оптическую плотность раствора Б на спектрофотометре СФ-2000 при длине волны 325 нм. Содержание суммы ФК пересчитывали на доминирующий компонент - кислоту хлорогеновую. Количественное содержание суммы ФК в % рассчитывали по формуле (1): где: А - оптическая плотность испытуемого раствора, Еуд - удельный показатель поглощения кислоты хлорогеновой (504,4); Vх - объем аликвоты раствора А, мл; аx - масса сырья, г; Вл - массовая доля влаги, %. Примечание: раствор кислот с рН 2,0 готовили следующим образом. 0,62 г кислоты борной растворяли в мерной колбе (вместимостью 1 л) в 125 мл воды очищенной при нагревании, охлаждали и прибавляли 0,65 мл кислоты ортофосфорной концентрированной и 0,58 мл кислоты уксусной ледяной, доводили водой очищенной до метки, перемешивали. В таблице 1 приведены результаты качественного определения фенолкарбоновых кислот методом ВЭЖХ. Таблица 1 - Идентификация фенолкарбоновых кислот в образцах сырья ивы трехтычинковой (метод ВЭЖХ) Наименование стандартного образца Анализируемые образцы сырья Побеги с листьями Листья Побеги без листьев время, мин площадь пика, mV∙сек конц, % время, мин площадь пика, mV∙сек конц, % время, мин площадь пика, mV∙сек конц, % 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 галловая 3,86 1572,05 5,52 3,56 2178,30 4,76 3,99 1855,1 14,17 хлорогеновая 5,12 676,23 2,37 4,86 2126,44 4,64 5,28 588,10 4,49 неохлорогеновая 8,05 1106,49 3,89 7,65 1467,05 3,20 8,28 1056,3 8,07 цикориевая 9,24 784,06 2,75 8,92 1125,99 2,46 9,46 298,32 2,28 Продолжение таблицы 1. 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 феруловая 11,20 1013,56 3,56 11,30 849,21 1,85 11,49 94,56 0,72 коричная 24,33 1896,12 6,66 23,32 1835,93 4,01 24,85 3,59 0,03 Итого, % 24,75 20,92 29,76 Итого, % (без кислоты галловой) 19,23 16,16 15,59 Примечание: в таблице приведены % от суммы всех БАВ, извлекаемых спиртом 70% и имеющих полосу поглощения в области 254 нм Во всех изученных образцах были обнаружены галловая кислота и пять гидроксикоричных кислот. Наибольшее их содержание (29,8%) от суммы всех БАВ, извлекаемых спиртом 70% и имеющих полосу поглощения в области 254 нм, находится в побегах без листьев. При этом в побегах без листьев содержится наибольшее количество галловой кислоты. Без учета кислоты галловой почти сопоставимые количества суммы гидроксикоричных кислот оказались в образцах побегов без листьев и в листьях (15,6 и 16,2% соответственно), а наибольшее их содержание оказалось в образцах побегов с листьями (около 19%). Результаты количественного определения суммы фенолокислот в изучаемых объектах с помощью экстракционно-фотометрического метода представлены в таблице 2. Таблица 2 - Определение суммы фенолкарбоновых кислот экстракционноспектрофотометрическим методом Взято сырья, г Оптическая плотность Найдено ФК, % Метрологические характеристики Побеги с листьями, Вл=8,99% 0,995 0,382 0,418 Хср = 0,434% S = 0,01272 Sx = 0,005192 Δx = 0,01334 ε = ±3,08% X±Δx = 0,43±0,01% 0,957 0,391 0,445 1,028 0,423 0,448 1,115 0,450 0,440 0,988 0,381 0,420 1,013 0,402 0,432 Побеги без листьев, Вл=7,99% 1,240 0,456 0,396 Хср = 0,401% S = 0,01704 Sx = 0,006975 Δx = 0,017875 ε = ±4,43% X±Δx=0,40±0,02% 0,958 0,340 0,388 1,120 0,422 0,382 1,021 0,395 0,417 1,011 0,387 0,413 0,915 0,360 0,424 Листья, Вл=5,97% 1,015 0,423 0,439 Хср = 0,471% S = 0,02426 Sx = 0,009902 Δx = 0,025448 ε = ±5,41% X±Δx = 0,47±0,03% 1,112 0,506 0,480 1,211 0,561 0,489 1,036 0,436 0,444 1,078 0,483 0,472 1,248 0,591 0,499 Содержание суммы фенолкарбоновых кислот (в пересчете на кислоту хлорогеновую) оказалось наибольшим в образцах листьев ивы трехтычинковой и составило 0,47%. Наименьшее содержание суммы ФК найдено в побегах без листьев - около 0,40%. Выводы Таким образом, определен качественный состав и количественное содержание фенолкарбоновых кислот в побегах ивы трехтычинковой. Обнаружено 6 индивидуальных соединений (галловая, хлорогеновая. неохлорогеновая, цикориевая, коричная и феруловая кислоты). Методом экстракционной спектрофотометрии определено суммарное содержание фенолкарбоновых кислот, которое оказалось наибольшим в листьях ивы трехтычинковой (около 0,47%), а наименьшим - в побегах без листьев (около 0,40%). Обнаруженные фенолкарбоновые кислоты обладают многогранной фармакологической активностью и могут вносить существенный вклад в суммарный фармакологический эффект побегов ивы трехтычинковой. Также полученные данные расширяют сведения о химическом составе изучаемого растительного сырья. Ранее подтверждено наличие фенолкарбоновых кислот в побегах 4 видов ивы, произрастающих на Северном Кавказе [6], которое оказалось в пределах 0,76 - 1,21%. В связи с этим необходимо дальнейшее изучение различных представителей рода Salix L. для расширения сырьевой базы растений отечественной флоры, содержащих фенолкарбоновые кислоты.

About the authors

E. G Sannikova

Pyatigorsk Medical and Pharmaceutical Institute - a branch of Volgograd State Medical University, Pyatigorsk

Email: Je-Je4ka2012@yandex.ru

O. I Popova

Pyatigorsk Medical and Pharmaceutical Institute - a branch of Volgograd State Medical University, Pyatigorsk

E. V Kompantseva

Pyatigorsk Medical and Pharmaceutical Institute - a branch of Volgograd State Medical University, Pyatigorsk

Email: dskompanceva@mail.ru

O. O Frolova

Pyatigorsk Medical and Pharmaceutical Institute - a branch of Volgograd State Medical University, Pyatigorsk

Email: oxifarm@mail.ru

References

Supplementary files