Заживление индуцированного раневого повреждения кожи под влиянием аутологичных клеток стромально-васкулярной фракции

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

В условиях эксперимента на морских свинках изучали течение репаративной регенерации кожи после нанесения лоскутной раны под влиянием клеточной суспензии из аутологичной стромально-васкулярной фракции. Использовали методы клинического наблюдения, светооптических исследований биопсийного материала, макро- и микроскопической морфометрии. Клеточный материал получали путем липосакции из области холки животного. Аутологичную жировую ткань использовали для приготовления клеточной суспензии, содержащей совокупность клеток (фибробласты, перициты, акрофаги, жировые клетки, эндотелиальные клетки), составляющих стромально-васкулярную фракцию. Полученные данные свидетельствуют о том, что применение клеточного продукта приводит к более быстрому (по сравнению с контролем) заживлению дефекта, формированию регенерата, морфологически сходного с окружающей интактной кожей. В структуре регенерата микроскопически обнаруживали восстановление структурных зон кожи: эпидермиса, дермы и подкожной жировой клетчатки. В центральной части регенерата сохранялся небольшой участок рубцовой структуры, площадь которого достоверно меньше, чем у контрольных аналогов. Сделан вывод о том, что применение клеточных продуктов усиливает процессы репаративной регенерации и является эффективным способом воздействия при лечении кожных ран.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Н. А. Слесаренко

Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА имени К.И. Скрябина

Email: borhunova@mail.ru

доктор биологических наук

Россия, Москва, ул. Академика Скрябина, 23

Е. Н. Борхунова

Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА имени К.И. Скрябина

Автор, ответственный за переписку.
Email: borhunova@mail.ru

доктор биологических наук

Россия, Москва, ул. Академика Скрябина, 23

Н. В. Вологжанина

Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА имени К.И. Скрябина

Email: borhunova@mail.ru

кандидат биологических наук

Россия, Москва, ул. Академика Скрябина, 23

Список литературы

  1. Владимирская Е.Б. Биологические основы и перспективы терапии стволовыми клетками. – М.: Медпрактика, 2005. – 241 c.
  2. Гаряев П.П. Стволовые клетки и их применение // Медицина. – 2009. – №11. – С. 5.
  3. Власов В.В., Медведев С.П., Шевченко А.И., Сухих Г.Т., Закиян С.М. Индуцированные плюрипотентные стволовые клетки. Изд-е 2-е. – Новосибирск: Изд-во РАН, 2014. – 376 с.
  4. Калинина Н. И., Сысоева В. Ю., Рубина К. А. Мезенхимальные стволовые клетки в процессах роста и репарации тканей // J. Acta Naturae. – 2011. – Т.3. – №4. – C. 32.
  5. Мезен Н. И., Квачева З. Б., Сычик Л.М. Стволовые клетки: Уч.-метод. пособие. – Минск: БГМУ, 2014. – 62 с.
  6. Старцева О.И., Мельников Д.В., Захаренко А.С., Кириллова К.А., Иванов С.И., Пищикова Е.Д., Даштоян Г.Э. Мезенхимальные стволовые клетки жировой ткани: современный взгляд, актуальность и перспективы применения в пластической хирургии // Исследования и практика в медицине. – 2016. – Т.3. – №3. – С.68-75.
  7. Miranville A., Heeschen C., Sengenes C., Curat C.A., Busse R., Bouloumie A. Improvement of postnatal neovascularization by human adipose tissue-derived stem cells // Circulation. – 2004. – V.110. – №3. – P.349-355.
  8. Planat-Benard V., Silvestre J.S., Cousin B., Andre M., Nibbelink M., Tamarat R., Clergue M., Manneville C., Saillan- Barreau C., Duriez M., Tedgui A., Levy B., Penicaud L., Casteilla L. Plasticity of human adipose lineage cells toward endothelial cells: Physiological and therapeutic perspectives // Circulation. – 2004. – V.109. – № 5. – P.656-663.
  9. Matsumoto D., Sato K., Gonda K., Takaki Y., Shigeura T., Sato T., Aiba-Kojima E., Iizuka F., Inoue K., Suga H., Yoshimura K. Cell-assisted lipotransfer: Supportive use of human adiposederived cells for soft tissue augmentation with lipoinjection // Tissue Engineering. – 2006. – №.12. – Р.3375-3382.
  10. Lendeckel S., Jodicke A., Christophis P., Heidinger K., Wolff J., Fraser J.K., Hedrick M.H., Berthold L., Howaldt H.P. Autologous stem cells (adipose) and fibrin glue used to treat widespread traumatic calvarial defects: Case report // J.Cranio-Мaxillofac Surgtry. – 2004. – V.32. – N. 6. – P.370-373.
  11. Yoshimura K., Sato K., Aoi N., Kurita M., Inoue K., Suga H., Eto H., Kato H., Hirohi T., Harii K. Cell-assisted lipotransfer for facial lipoatrophy: Efficacy of clinical use of adiposederived stem cells // Dermatologic Surgery. – 2008. – V.34. – N5. – P.1178-1185.
  12. Kim W.S., Park B.S., Sung J.H. Wound healing effect of adipose-derived stem cells: a critical role of secretory factors on human dermal fibroblasts// J. Dermatology Sci. – 2007. – V.48. – P.15-24.
  13. Ebrahimian T., Pouzoulet F., Squiban C. Cell therapy based on adipose tissue-derived stromal cells promotes physiological and pathological wound healing // J. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. – 2009. – V.29. – P.503-510.
  14. Kim W.S., Park B.S., Park S.H., Kim H.K., Sung J.H. Antiwrinkle effect of adipose-derived stem cell: activation of dermal fibroblast by secretory factors // J. Dermatology Sci. – 2009. – V.53. – N2. – P.96-102.
  15. Rigotti G., Marchi A., Galie` M. Clinical treatment of radiotherapy tissue damage by lipoaspirate transplant: a healing process mediated by adiposederived adult stem cells //J. Plastic Reconstructive Surgery. – 2007. – V.119. – P.1409-1422.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Макроскопическая характеристика кожи на разных этапах репарации: А – сразу после нанесения, Б – в контрольной группе через 30 сут, В – в опытной группе через 30 сут.

3. Рис. 2. Микроорганизация регенерата кожи у животных контрольной группы: А – 7 сут: 1 – струп, 2 – эпителий, 3 – грануляционная ткань с широкопетлистой сетью капилляров, 4 – грануляции с признаками созревания, 5 – скелетная мышца. Б – 30 сут: 1 – эпителий, 2 – рубцовая ткань в состоянии ремоделирования («втянутая» часть рубца), 3 – периферическая часть рубца.

4. Рис. 3. Микроорганизация регенерата кожи у животных опытной группы: А – 7 сут: 1 – струп, 2 – эпидермальный пласт, 3 – белая жировая ткань, 4 – грануляционная ткань; Б – 30 сут: 1 – эпителий, 2 – рубцовоизмененная кожа, 3 – соединительнотканная часть регенерата, сходная с окружающей дермой, 4 – подкожная жировая клетчатка.


© Российская академия наук, 2019