Approval of the method of electrophoretic separation and identification of some urine proteins in rats with toxic nephropathy

Full Text

Введение

Ранняя диагностика поражения почек представляет собой одну из важных задач токсикологии. Нефротоксичность химических веществ и лекарственных препаратов проявляется в способности вызывать структурные и функциональные нарушения почек. Фуросемид, ванкомицин и гентамицин являются наиболее часто назначаемыми нефротоксичными препаратами пациентам, находящимся в критическом состоянии в результате развития острого повреждения почек [1]. Нефротоксичность аминогликозидных антибиотиков, в особенности неомицина и гентамицина, проявляется повреждением различных структур нефрона почек [2]. Передозировка аминогликозидами, оказывающими мембранотоксическое действие в митохондриях и лизосомах нефротелиоцитов, приводит к накоплению ламеллярных включений внутри лизосом, а затем разрушению клеток почечных канальцев. Нефротоксичные вещества или лекарственные препараты повреждают клетки почек, такая ситуация может разрешиться восстановлением их целостности, гибелью или апоптозом. Молекулярными «свидетелями» токсического воздействия могут быть некоторые белки, попадающие в мочу. Недавнее изучение пептидома мочи человека позволило идентифицировать 561 плазменный и 1461 мочевой эндогенный пептид. Только 90 пептидов были обнаружены как в моче, так и в плазме. При этом при сравнении этих общих пептидов не выявлено значимой корреляции между плазменными и мочевыми пептидами, за исключением фрагментов коллагена в моче из-за потенциального селективного исключения этих RGD-пептидов из канальцевой реабсорбции. Большинство же плазменных пептидов не обнаружено в моче из-за их канальцевой реабсорбции [3]. Однако бóльшая часть других мочевых пептидов на самом деле имеет истинно почечное происхождение и может быть использована в качестве биомаркеров нефротоксичности.

Целью настоящей работы была апробация методического подхода определения некоторых белковых маркеров в моче крыс методом электрофоретического разделения с последующей масс-спектрометрической идентификацией как метода ранней диагностики токсической нефропатии. В задачи исследования входили: оценка воспроизводимости метода разделения белков, сравнение белковых профилей мочи в норме и при введении крысам гентамицина сульфата (ГС), определение динамики содержания некоторых белков в моче крыс, а также проведение биохимического и морфологического исследования почек.

Материалы и методы исследования

Эксперименты на животных выполняли в соответствии с требованиями этического обращения с лабораторными животными [4] и протоколом № НИР-102-NT/16 (22.11.2016) отдела доклинических исследований в ФГБУ «НИИ гриппа им. А.А. Смородинцева» Минздрава России. Аутбредные крысы массой тела 200–220 г (возраст — 18 нед.), полученные из филиала «Столбовая» ФГБУН «Научный центр биомедицинских технологий Федерального медико-биологического агентства», были разделены по 6 особей каждого пола на группы: группу контроля (6 самцов и 6 самок интактных крыс) и опытную группу (6 самцов и 6 самок крыс, получавших нефротоксин). Моделировали экспериментальное отравление животных аминогликозидным антибиотиком ГС (Sigma-Aldrich, G1264, CAS Number 1405-41-0), который в токсических дозах является прямым нефротоксином (60 мг/кг внутримышечно 5 дней подряд). На 15-е сутки выполняли запланированную эвтаназию животных под наркозом (ксилазин, 10 мг/кг + тилетамин-золазепам, 50 мг/кг) путем тотального забора крови при декапитации. Почки из забрюшинного пространства выделяли при вскрытии для биохимического и патоморфологического исследования.

Анализ мочи. Суточную мочу собирали в день 0 до введения ГС, на 3, 7 и 14-е сутки от начала введения ГС в обменных клетках Tecniplast Gazzada (Италия) с добавлением в качестве ингибитора протеолиза консерванта ProClin-300 (5 мкл на 10 мл мочи). Консервант не влиял на аналитические характеристики методов, использованных в анализе мочи. В моче определяли содержание общего белка (по связыванию пирогаллолового красного), креатинина (методом Яффе) и рассчитывали соотношения белок – креатинин (мг/г креатинина) на анализаторе UriСКАН-БК (ООО «Эйлитон», Россия); оценивали уровень лейкоцитов — микроскопически с подсчетом числа клеток в слайд-планшетах при их суправитальной окраске [5].

Электрофоретическое разделение. Образцы мочи по 5 мкл смешивали с буфером Лэммли и проводили термическую денатурацию в присутствии бета-меркаптоэтанола. Образцы в объеме 10 мкл наносили в лунки полиакриламидного геля (ПААГ, 12 % разделяющего геля и 5 % концентрирующего). Электрофоретическое разделение белков выполняли согласно [6] при 220 В и 25 мА в ячейке Mini-PROTEAN Tetra Vertical Electrophoresis. Гели окрашивали коллоидным раствором Кумасси, получали изображения на системе документирования гелей ChemiDoc MP System (BioRad, США). Относительную концентрацию белковых фракций в геле рассчитывали в процентах, считая интенсивность окраски совокупности всех выявленных полос за 100 %, и соотносили с общим содержанием белка в моче. Вариабельность электрофоретических анализов оценивали путем расчета стандартного отклонения и коэффициента вариации показателей интенсивности белковых полос на электрофореграмме в восьми повторностях. После окрашивания получали изображения на системе документирования гелей ChemiDoc MP System. Денситометрический анализ белковых фракций проводили с использованием программы ImmageLab. Детекцию белковых полос осуществляли в автоматическом режиме. Молекулярный вес по величине пробега определяли с помощью стандартных маркеров молекулярных масс (Bio-Rad). Далее оценивали процентное соотношение белковых полос в образце белков мочи крыс в восьми повторностях по интенсивности белкового пятна на ПААГ (Volume).

Масс-спектрометрическая идентификация белков. Метод применяли для идентификации белков мочи крыс. Выбранные окрашенные зоны ПААГ вырезали и проводили ферментативный гидролиз белков в геле трипсином [7]. Образцы смешивали с матрицей HCCA (Bruker), наносили на мишень GroundSteel и высушивали. Спектры триптических пептидов регистрировали на MALDI-TOF/TOF-масс-спектрометре ultrafleXtreme (Bruker). На каждый масс-спектр суммировали 3000 импульсов лазера. Белки идентифицировали в программе Biotools при обращении к базе данных Mascot (matrixscience.com). Погрешность ограничивали 20 ppm (мг/л). Идентификацию считали достоверной, если величина Score превышала пороговое значение (p < 0,05).

Определение липидов. На 15-е сутки эксперимента из контрольных и опытных групп крыс получали гомогенаты сырой ткани почек 1 : 20 (масса/объем) в 100 % изопропаноле в гомогенизаторе Поттера при температуре тающего льда. Гомогенаты центрифугировали при 10 000 g 5 мин и в супернатанте определяли уровень общего холестерина (Fluitest CHO, Analyticon), триацилглицеридов (Fluitest TRI, Analyticon) и общих фосфолипидов (DiaSys Phospholipids FS) на автоматическом биохимическом анализаторе KeyLab (BPC+Biosed s.r.l., Италия).

Гистологическое исследование. Для патоморфологического исследования после запланированной эвтаназии животных в конце эксперимента (на 15-е сутки) из правой и левой почек брали биоптат длиной 8 мм и диаметром 1 мм с помощью иглы для биопсии, кассетировали и фиксировали в 10 % нейтральном забуференном растворе формалина не менее 48 ч. Затем выполняли стандартную проводку и заливку в парафиновые блоки, из которых получали срезы толщиной 5 мкм [8]. Гистологические препараты окрашивали гематоксилином и эозином и исследовали под светооптическим микроскопом Leica DM1000. Микрофотографии получали с помощью камеры и программы ADF Image Capture (версия х64, 4.7.14011).

Оценка воспроизводимости. Для определения воспроизводимости проводили внутри- и межсерийную оценку коэффициента вариации при разделении в восьми повторностях образцов мочи. Получив данные всех восьми повторностей, мы рассчитали стандартное отклонение и коэффициент вариации. Совокупную величину погрешности вычисляли исходя из влияния степени чистоты посуды и реактивов, точности дозирования пипеткой, параметров приборов (ГОСТ Р 53133.1-2008. Технологии лабораторные клинические. Контроль качества клинических лабораторных исследований. Часть 1. Пределы допускаемых погрешностей результатов измерения аналитов в клинико-диагностических лабораториях).

Статистическая обработка данных. Данные обрабатывали с использованием пакета статистических программ GraphPad Prism 6.0 (США). Для регистрируемых количественных переменных рассчитывали параметры описательной статистики. Данные представлены в виде среднего значения (Mean) и его ошибки (±SEM), 95 % доверительного интервала (95 % ДИ). Отличия между выборками оценивали с помощью непараметрического критерия Краскела – Уоллиса и Данна для множественных сравнений и считали значимыми при уровне р < 0,05. В итоговых таблицах при сравнении групп между собой под средними значениями и их ошибками приведены величины уровня значимости, обозначаемые как р_0–14 — уровень значимости между сроками воздействия на сутки 0 и 14-е сутки, р_7–14 — уровень значимости между 7-ми и 14-ми сутками.

Результаты и обсуждение

На обзорных электрофореграммах белковых фракций мочи при разделении в ПААГ в денатурирующих условиях были выделены потенциально интересующие нас зоны, соответствующие белкам с различными молекулярными массами. Схема расположения зон представлена на рис. 1.

 

Рис. 1. Определяемые зоны типовой ПААГ-электрофореграммы белков мочи крыс (M — самцы и F — самки) и их молекулярные массы (кДа). МM — маркер молекулярных масс (Bio-Rad). * обозначен характерный для самцов предшественник альфа-2-уроглобулина или главный мочевой белок; # — порядковый номер пробы

Fig. 1. The determined zones of the PAGE-electrophoregrams of rat urine proteins (M — males and F — females) and their molecular weights (kDa). MM is a molecular weight marker (Bio-Rad). * the alpha-2u-globulin precursor or major urinary protein characteristic of males is indicated; # — number of sample

 

Величина внутрисерийного коэффициента вариации для разделения белков методом электрофореза составляла от 5,9 % (при значительных количествах белка в моче) до 11,3 % (при низком содержании белка в моче). Межсерийный коэффициент вариации составлял в среднем 7,9 %, что приемлемо для аналитических методов клинической лабораторной диагностики.

Наличие белка в моче у «здоровых» крыс считается нормальным, причем у самцов уровень протеинурии выше, чем у самок. Исследование белков мочи «здоровых» крыс из контрольных групп показало различия в доминировании определенных белков у самцов и самок, связанные с их биологическими функциями. Половые различия проявлялись в превалировании у самцов в моче предшественника альфа-2-уроглобулина как мажорного белкового компонента с молекулярной массой 19 кДа (обозначено * на рис. 1). Данный белок синтезируется в печени крыс самцов и выполняет функцию феромонсвязывающего белка, гидрофобный «карман» молекул которого связывает низкомолекулярные пахучие вещества (1-хлордекан и 2-метил-N-фенил-2-пропенамид) и играет роль своеобразного «депо». Неселективное связывание этим белком лимонен-1,2-эпоксида объясняет развитие гиалиновокапельной дистрофии нефротелия канальцев почек самцов крыс при отравлении лимоненом [9, 10]. Мы достоверно идентифицировали белок как предшественник альфа-2-уроглобулина (Rattus norvegicus), фрагмент его масс-спектра представлен на рис. 2.

 

Рис. 2. Фрагмент масс-спектра триптических пептидов (сверху), по которому достоверно идентифицировали белок — предшественник альфа-2-уроглобулина (Rattus norvegicus), Score = 135 (пороговое значение 92). Отмечены ионы и соответствующие им номера аминокислотных остатков. Предполагаемые последовательности пептидов, а также их масса и погрешность представлены снизу

Fig. 2. Fragment of the mass spectrum of tryptic peptides (top), which reliably identified the protein alpha-2u globulin precursor (Rattus norvegicus), Score = 135 (threshold value 92). Ions and the corresponding numbers of amino acid residues are noted. The estimated sequences of the peptides, as well as their mass and error are presented below

 

У «здоровых» самок крыс в моче основным компонентом белкового профиля мочи являются легкие цепи иммуноглобулина G с молекулярной массой 28 кДа, который синтезируется плазматическими клетками. Белок был достоверно идентифицирован как легкие цепи иммуноглобулинов (каппа) (Rattus norvegicus). Масс-спектр белка с выявленными пептидами представлен на рис. 3, а. Для повышения достоверности идентификации зарегистрировали спектр фрагментации иона 1004.52, который также принадлежал легким цепям иммуноглобулинов. Результаты идентификации иллюстрирует рис. 3, b. Данный белок представляет собой аналог белка Бенс-Джонса у человека, который появляется в больших количествах в моче при множественной миеломе и относится к классу парапротеинов.

 

Рис. 3. Фрагмент масс-спектра триптических пептидов, по которому достоверно идентифицировали легкие цепи иммуноглобулинов (каппа) (Rattus norvegicus), Score = 78 (пороговое значение — 72) (а). Отмечены ионы и соответствующие им номера аминокислотных остатков. В таблице представлены предполагаемые последовательности пептидов, а также их масса и погрешность. Спектр фрагментации иона 1004.52 достоверно идентифицирован как легкие цепи иммуноглобулинов (каппа) (Rattus norvegicus), Score = 46 (порог 42), последовательность WKIDGTER (b)

Fig. 3. Fragment of the mass spectrum of tryptic peptides by which the Ig kappa chain (Rattus norvegicus) protein was reliably identified, Score = 78 (threshold value 72). Ions and the corresponding numbers of amino acid residues are noted (а). The table shows the expected sequences of the peptides, as well as their mass and error. The fragmentation spectrum of ion 1004.52, reliably identified as Ig kappa chain (Rattus norvegicus), Score = 46 (threshold 42), sequence WKIDGTER (b)

 

Суточный объем мочи (диурез) от момента начала введения нефротоксина до 14-х суток имел тенденцию к снижению как проявление формирования олигурической фазы острого повреждения почек. Результаты определения общего белка, величины суточного диуреза и соотношения белок – креатинин при воздействии ГС на крыс представлены в табл. 1. Общее выделение белка с мочой крыс за сутки в различные временные интервалы после введения нефротоксина для самцов на день 0 составило 14,4 ± 3,1 мг/сут (95 % ДИ 6,3–22,5 мг/сут), на 3-и сутки — 23,3 ± 2,3 мг/сут (95 % ДИ 17,5–29,2 мг/сут), на 7-е сутки — 13,9 ± 0,9 мг/сут (95 % ДИ 11,6–16,1 мг/сут), на 14-е сутки — 26,3 ± 3,3 мг/сут (95 % ДИ 17,9–34,6 мг/сут); уровень значимости р = 0,0055 по критерию Краскела – Уоллиса; при множественном сравнении по критерию Данна достоверных различий между сравниваемыми сроками воздействия не установлено, за исключением на день 0 и 14-е сутки (р = 0,0292). У самок выделение белка с мочой крыс за сутки на день 0 составило 4,0 ± 0,4 мг/сут (95 % ДИ 2,9–5,1 мг/сут), на 3-и сутки — 15,0 ± 2,4 мг/сут (95 % ДИ 8,9–21,0 мг/сут), на 7-е сутки — 2,4 ± 0,4 мг/сут (95 % ДИ 1,4–3,4 мг/сут), на 14-е сутки — 16,9 ± 1,5 мг/сут (95 % ДИ 13,1–20,7 мг/сут); уровень значимости р = 0,0003 по критерию Краскела – Уоллиса; при множественном сравнении по критерию Данна достоверные различия установлены между сроками 3-и и 7-е сутки (р = 0,0042) и 7-е и 14-е сутки (р = 0,0017). Соотношение белок – креатинин, нормализованное в отношении влияния колебаний диуреза, у самцов крыс статистически отличалось на 14-е сутки в 2 раза по сравнению с сутками 0 (р = 0,01), а у самок — на 14-е сутки в 5,5 раза по сравнению с 0 сутками (р = 0,0012) и 7-ми сутками (р = 0,01).

 

Таблица 1 / Table 1

Содержание общего белка, величина диуреза и соотношение белок – креатинин в моче крыс на 0, 3, 7 и 14-е сутки токсической нефропатии (n = 6, Mean ± SEM)

The total protein, urine volume and protein-to-creatinine ratio (P/C-ratio) in rat urine samples at 0, 3, 7 and 14^th days of toxic nephropathy (n = 6, Mean ± SEM)

Показатель	Сроки, сут	Самцы	Самки
Общий белок мочи, мг/дл	0	108,6 ± 25,5	48,0 ± 12,3
	3-и	185,5 ± 7,4	118,8 ± 15,6
	7-е	133,8 ± 30,5	28,1 ± 6,1
	14-е	279,8 ± 29,8 р0–14 = 0,0023 р7–14 = 0,0174	194,3 ± 14,9 р0–14 = 0,0057 р7–14 = 0,0005
Объем суточной мочи, мл/сут	0	16,3 ± 3,4	11,5 ± 2,9
	3-и	12,5 ± 0,9	13,7 ± 2,7
	7-е	11,8 ± 1,4	10,2 ± 1,8
	14-е	9,5 ± 0,8	9,2 ± 1,3
Соотношение белок – креатинин, мг/г	0	1145,0 ± 232,4	358,7 ± 40,6
	3-и	1985,0 ± 205,3	1189,0 ± 177,4
	7-е	1655,0 ± 372,1	390,2 ± 41,8
	14-е	2289,0 ± 193,1 р0–14 = 0,0101	1976,0 ± 240,5 р0–14 = 0,0012 р7–14 = 0,0101

 

При моделировании токсической нефропатии в моче были идентифицированы и количественно определены некоторые белки, появление которых в ранние сроки можно рассматривать в качестве маркеров нефротоксичности и свидетельствует о возможной их локализации в ткани почек крыс или происхождении. В составе белков мочи крыс-самцов отмечали сильно выраженные разнонаправленные изменения в дни эксперимента, в том числе за счет высокого фонового уровня белка в суточной моче, а также появления простатспецифических антигенов, спермальных ферментов, что не позволило оценить динамику этих белков, вероятно, из-за токсического действия гентамицина, в том числе на функцию половых органов крыс-самцов, либо изменения их полового поведения. У самок с низким уровнем белка в суточной моче до воздействия токсином (0 день) была установлена следующая динамика белкового профиля (табл. 2). Белок аминопептидаза М (зона #1¹, лейцинаминопептидаза) и предшественник уромодулина (зона #2, предшественник белка Тамма – Хорсфалла [11]) достоверно идентифицированы и количественно определялись в моче только на 14-е сутки после введения нефротоксина. Концентрация сывороточного трансферрина (зона #3) и альбумина (зона #4) прогрессивно увеличивалась к 14-м суткам эксперимента. Альфа-1-антитрипсин (зона #5, синтезируется в печени) и предшественник альфа-1-кислого гликопротеина (зона #6, предшественник орозомукоида, который синтезируется в ответ на воспаление тканей) в существенных концентрациях в моче также появлялись ко второй неделе опыта. Максимум уровня легких цепей иммуноглобулинов и бета-2-микроглобулина (входит в состав главного комплекса гистосовместимости) в моче приходился на 3-и и 14-е сутки эксперимента. Некоторое снижение уровня этих двух белков на 7-е сутки опыта связывали с развитием полиурии в данный период и очень низким уровнем общего белка в образцах мочи. Данные белки в норме присутствуют в незначительных концентрациях и активно реабсорбируются эпителием проксимальных канальцев почек. При воздействии нефротоксина ГС функция реабсорбции существенно нарушалась, что приводило к выделению данных белков с мочой в больших количествах.

 

Таблица 2 / Table 2

Относительное содержание некоторых идентифицированных белков мочи крыс (%), рассчитанное денситометрически на Gel Doc™ EZ

The relative concentration of some identified rat urine proteins (%) calculated by densitometry on Gel Doc™ EZ

Номер зоны	Белок1	Молекулярная масса, кДа2	Самка F#8, сутки				Самка F#9, сутки				Самка F#10, сутки
			0	3-и	7-е	14-е	0	3-и	7-е	14-е	0	3-и	7-е	14-е
–	Общий белок в образце, мг/дл	–	21,6	88,5	6,13	160	40,6	137	25,3	185	47,1	130	28,2	180
0	Агрегаты белков, %	> 250	2,85	2,14	3,29	1,20	3,36	1,55	2,50	2,81	1,68	1,99	1,48	4,75
1	Аминопептидаза М, %	138	0	0	0	0,64	0	0	0	1,23	0	0	0	0,88
2	Уромодулина предшественник, %	97	0	0	0	0,74	0	0	0	0,79	0	0	0	0,65
3	Трансферрин сывороточный, %	78	2,56	1,41	1,85	1,59	2,18	1,24	2,74	2,41	1,93	1,18	2,19	1,48
4	Альбумин сывороточный, %	62	4,80	5,50	8,69	29,01	6,29	5,47	17,20	26,79	8,85	8,84	11,58	32,87
5	Альфа-1-антитрипсин, %	52	1,00	1,92	2,03	4,66	0,73	1,48	2,72	5,40	1,59	1,12	2,21	4,95
6	Альфа-1-кислого гликопротеина предшественник, %	45	0	0	0	1.13	0	0	0	1,34	0	1,64	0,67	0,90
7	Легкие цепи иммуноглобулинов (каппа), %	27	50,98	45,51	46,89	33,35	27,24	33,38	36,80	28,49	33,58	43,68	0	25,75
8	Неустановленный пептид 2, %	20	17,16	13,68	15,23	6,30	25,08	17,53	16,93	11,34	24,42	15,70	38,47	9,16
9	Неустановленный пептид 1, %	16	16,46	21,21	22,03	14,18	27,94	27,03	21,10	12,10	25,16	21,92	21,73	12,00
10	Бета-2-микроглобулин, %	14	4,19	8,63	0	7,20	7,18	12,32	0	7,31	2,78	3,92	21,67	6,60

Примечание: ¹ предполагаемый белок, совпадающий по молекулярной массе на электрофореграмме, ранее идентифицированный масс-спектрометрически по электрофорезу крысиной мочи; ² молекулярная масса зоны на электрофореграмме мочи крыс при воздействии гентамицином; ^# — порядковый номер пробы.

 

Данные о концентрации некоторых белков в моче крыс, определенные денситометрически, приведены для наглядной демонстрации ее изменения при экспериментальном воздействии нефротоксических веществ в табл. 2. Такой анализ может быть применен только при условии сравнения содержания белков в интактных и экспериментальных группах крыс, поскольку, несмотря на то что интенсивность окрашивания Кумасси пропорциональна концентрации белка, она не одинаково эффективна для различных белков. Для точного определения концентрации белка денситометрически необходимы стандарты для каждого отдельного белка, что существенно усложняет анализ и не является целью настоящего исследования.

В данной работе мы предлагаем использовать метод электрофоретического разделения белков с последующей масс-спектрометрической идентификацией для изучения профиля и динамики содержания некоторых белков в моче крыс при исследовании влияния нефротоксических веществ.

Следует отметить, что наряду с протеинурией у крыс отмечали увеличение количества лейкоцитов (рис. 4), что может косвенно отражаться на интерпретации результатов определения легких цепей иммуноглобулинов методом PAGE-MALDI-TOF/TOF. Более четкую динамику лейкоцитурии отмечали у самцов крыс, где точки увеличения приходились на 7-е и 14-е сутки опыта (р = 0,0017 по критерию Краскела – Уоллиса). Результаты множественных сравнений по критерию Данна у самцов показали достоверные различия между значениями в день 0 и на 14-е сутки, а также между 3-ми и 14-ми сутками эксперимента. У самок лейкоцитурия клинически значимо увеличивалась только на 14-е сутки (р = 0,0029 по критерию Краскела – Уоллиса) и достоверные различия отмечены по сравнению с днем 0, 3-ми и 7-ми сутками опыта по критерию Данна.

 

Рис. 4. Динамика лейкоцитурии у крыс, получавших гентамицина сульфат (a — самцы, b — самки крыс)

Fig. 4. Dynamics of leukocyturia in rats treated with gentamicin sulfate (a — males, b — female rats)

 

Для гентамицина характерно нарушение липидного обмена в почках [2]. При помощи биохимического исследования уровня липидов в гомогенатах почечной ткани крыс были выявлены различия в уровне общего холестерина (у самцов) и триацилглицеридов жирных кислот (у самок) при воздействии гентамицина. Результаты представлены в табл. 3. Однако мы не обнаружили достоверного повышения уровня фосфолипидов, которое описывают зарубежные авторы [12], вероятно, из-за сильной внутригрупповой дисперсии, так как в нашем в опыте были использованы нелинейные животные.

 

Таблица 3 / Table 3

Содержание липидов в гомогенатах почечной ткани крыс при воздействии гентамицина сульфата (n = 6, Mean ± SEM)

Lipid contents in rat kidney tissue homogenates exposed to gentamicin sulfate (n = 6, Mean ± SEM)

Показатели	Самцы	Самки
Общий холестерин, ммоль/г: – контрольная группа; – группа гентамицина сульфата 60 мг/кг	9,63 ± 0,23 11,93 ± 0,45, р = 0,0236	11,85 ± 0,50 11,82 ± 0,56
Триацилглицериды, ммоль/г: – контрольная группа; – группа гентамицина сульфата 60 мг/кг	5,53 ± 0,69 8,53 ± 0,76	5,48 ± 0,44 9,53 ± 0,65, р = 0,0291
Фосфолипиды общ., ммоль/г: – контрольная группа; – группа гентамицина сульфата 60 мг/кг	47,20 ± 1,48 48,97 ± 1,05	47,12 ± 1,58 50,77 ± 1,34

 

Наиболее достоверно токсическое повреждение почек в клинике устанавливают при гистологическом изучении нефробиопсийного материала. При патоморфологическом исследовании биоптатов почек крыс были выявлены умеренная средне- и мелкокапельная жировая дистрофия нефротелия проксимальных канальцев, гиперхроматоз ядер и цилиндры в просветах канальцев преимущественно в корковом слое почек у самцов и самок в одинаковой степени. Среди других признаков нефротоксичности отмечали активацию интерстициальных клеток, умеренную инфильтрацию лейкоцитами коркового вещества почек. Изменения со стороны клубочков обнаружены не были. Данные представлены на рис. 5.

 

Рис. 5. Патоморфологические изменения в почке у самцов (а) и самок (b) крыс после воздействия гентамицином. * жировая дистрофия нефроэпителия; # лейкоцитарная инфильтрация интерстиция. Парафиновые срезы, окраска гематоксилином и эозином, увеличение ×400

Fig. 5. Pathomorphological changes in the kidney in male (а) and female (b) rats after exposure to gentamicin. * fatty degeneration of the nephroepithelium; # leukocyte infiltration of interstitium. Paraffin sections, hematoxylin and eosin staining, x400 magnification

 

Заключение

Обнаружены половые различия в составе белков мочи крыс самцов и самок. Анализ результатов электрофореза мочи здоровых крыс показал, что в моче самцов доминирующим белком является предшественник альфа-2-уроглобулина, относящийся к основным белкам млекопитающих, в моче самок — легкие цепи иммуноглобулинов. Клинического значения предшественник альфа-2-уроглобулина для диагностики нефротоксичности у человека не имеет, так как не синтезируется в организме человека, но играет роль в патогенезе токсической нефропатии у грызунов.

Введение ГС в качестве эталонного прямого нефротоксина, моделирующего токсическую нефропатию в эксперименте и поражающего нефротелий проксимальных канальцев, приводило к повышению уровня лейкоцитов и выделению белка с мочой (рутинные показатели для оценки нефротоксичности и повреждения почек), увеличению содержания липидов в ткани почек (общего холестерина у самцов и триацилглицеридов жирных кислот у самок). Данные биохимического анализа мочи подтверждены результатами гистологического исследования биоптатов почек. Патоморфологические изменения не имели половых различий.

С помощью технологии исследования белковых фракций мочи методом их электрофоретического разделения в ПААГ с последующей идентификацией времяпролетной масс-спектрометрии была установлена динамика определенных фракций некоторых белков, которые могут выступать в качестве маркеров нефротоксичности при изучении механизмов токсичности новых веществ и прогнозировании риска нефротоксичности лекарственных препаратов.

Из-за сильной внутригрупповой дисперсии и фонового высокого уровня общего белка в моче крыс-самцов не удалось проанализировать динамику некоторых белковых маркеров, главным образом по причине появления спермальных и простатических белков в моче при нахождении крыс в обменных клетках. Вероятно, что при катетеризации мочевого пузыря возможно получение более чистых образцов мочи для исследования, но при проведении доклинических исследований нефротоксичности вследствие инвазивности и травматичности процедуры это сделать затруднительно. В противоположность этому в моче крыс-самок содержание общего белка на день 0 и у интактных животных достаточно низкое, а белковый спектр ограничивается легкими цепями иммуноглобулина. При воздействии на самок ГС в моче были идентифицированы следующие белки: аминопептидаза М (0,6–1,2 %), альбумин (4,8–32,6 %), трансферрин (0,1–4,5 %), альфа-1-антитрипсин (0,1–10,0 %), прекурсор альфа-1-кислого гликопротеина (0,2–2,5 %), прекурсор уромодулина (1,1–1,5 %), бета-2-микроглобулин (0,9–16,9 %) и ряд других, включая два неустановленных пептида с молекулярной массой 16 и 20 кДа. Выявленные белковые маркеры в моче крыс-самок при воздействии ГС свидетельствовали о нарушении реабсорбционной способности канальцевого эпителия, что соотносилось с величиной лейкоцитурии, уровнем липидов в ткани почек и патоморфологическими признаками поражения канальцев.

По результатам оценки прецизионности метода разделения белков мочи крыс при помощи электрофореза в ПААГ было обнаружено увеличение содержания общего белка при патологии: коэффициент вариации (CV) существенно снижался, достигая значения 5 %; общая аналитическая погрешность (Δ_{анализа}) метода электрофоретического разделения белков мочи составила 14,53 %.

Таким образом, метод электрофоретического разделения белков в ПААГ с последующей MALDI-масс-спектрометрической идентификацией белков применим для исследования нефротоксичности и характеризуется приемлемым уровнем общей аналитической погрешности. Предпочтительно исследовать мочу крыс-самок из-за низкого содержания белков в норме. Повышение уровня некоторых белков в моче крыс соотносилось с величиной лейкоцитурии и гистопатологическими изменениями.

Дополнительная информация

Финансирование. Исследование не имело финансовой поддержки.

Соблюдение этических норм. Выполнение исследования одобрено протоколом этического комитета № НИР-102-NT/16 (22.11.2016) отдела доклинических исследований в ФГБУ «НИИ гриппа им. А.А. Смородинцева» Минздрава России.

Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Примечание:

¹ # — порядковый номер пробы.

Список сокращений

ГС — гентамицина сульфат; ПААГ — полиакриламидный гель; MALDI-TOF/TOF — матрично-активированная лазерная десорбция/ионизация с времяпролетной масс-спектрометрией.

About the authors

Konstantin V. Sivak

Smorodintsev Research Institute of Influenza

Author for correspondence.
Email: kvsivak@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-4064-5033
SPIN-code: 7426-8322
Scopus Author ID: 35269910300

PhD in Biology, Head of the Department of Preclinical Trials

Russian Federation, St. Petersburg

Yana A. Zabrodskaya

Smorodintsev Research Institute of Influenza; Petersburg Nuclear Physics Institute named by B.P. Konstantinov of NRC “Kurchatov Institute”; Peter the Great Saint Petersburg Polytechnic University

Email: zabryaka@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-2012-9461

PhD in Physic, Researcher of the Department of Molecular Biology of Viruses

Russian Federation, St. Petersburg

Olga A. Dobrovolskaya

Smorodintsev Research Institute of Influenza

Email: dobrovolskaya.od@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-0857-4733

Researcher of the Laboratory of Genetic Engineering and Recombinant Protein Expression

Russian Federation, St. Petersburg

References

Supplementary files