Малозатратное устройство для измерения TEER при культивировании эпителиальных/эндотелиальных клеток на вставках.
- Авторы: Воронкина И.В.1, Смагина Л.В.2, Иванова А.А.1, Салль Т.С.2, Адамьян Ю.Э.3
-
Учреждения:
- Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Институт экспериментальной медицины»
- Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Институт экспериментальной медицины»,
- Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования «Санкт-Петербургский политехнический университет Петра Великого».
- Раздел: Новые технологии
- URL: https://journals.eco-vector.com/MAJ/article/view/633247
- DOI: https://doi.org/10.17816/MAJ633247
- ID: 633247
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Актуальность. Барьерные свойства эпителиальных и эндотелиальных клеток обычно изучают in vitro при культивировании клеток на сетчатых вставках в культуральных планшетах, при этом необходимо оценивать состояние монослоя клеток на мембране вставок перед проведением эксперимента. Обычно анализ плотности монослоя проводят по прохождению флуоресцентной метки через вставку с клетками или измеряя трансэндотелиальное сопротивление (TEER) клеточного слоя. Во многих исследованиях применяют параллельно оба метода оценки целостности монослоя в зависимости от цели исследования. Метод с применением TEER позволяет также регистрировать ранние изменения состояния монослоя при действии различных веществ.
Цель данной работы - продемонстрировать возможность измерений TEER с применением предлагаемого устройства (кондуктометра), изготовленного из доступных компонентов, на примере клеток эндотелиального/эпителиального происхождения.
Материалы и методы исследования. Представлено устройство (кондуктометр) для измерения TEER, созданное на основе легко доступных компонентов. Устройство было проверено при культивировании двух клеточных линий – гибридома эндотелиального происхождения Ea.hy926 и аденокарцинома ободочной кишки человека Caco-2. Клетки линии Caco-2 культивировали в течение 22 суток, а клетки линии Ea.hy926 - в течение 7 суток. Целостность клеточного монослоя и плотность межклеточных контактов оценивали по величине TEER, определяемую с помощью предлагаемого кондуктометра, а также по проницаемости монослоя клеток для флуоресцеина/меченого флуоресцеином декстрана.
Результаты. Приведены результаты измерений TEER с помощью предлагаемого устройства и проницаемости монослоя клеток для Na флуоресцеина/меченого флуоресцеином декстрана при культивировании клеток Caco-2 и EA.hy926. Для клеток Caco-2 с момента начала измерений значение TEER постепенно увеличивалось, достигая максимальных значений к 20-21 суткам, после чего немного снижалось. Значения проницаемости снижались по мере культивирования клеток, что указывало на образование плотных контактов. Для клеток EA.hy926 подъем значений TEER происходил на третьи сутки, на 7 сутки начиналось снижение. Полученные нами с помощью предложенного устройства результаты TEER и проницаемости имеют сильную обратную корреляцию и хорошо согласуются.
Заключение. Представленное устройство, выполненное на базе простых и доступных компонентов, аналогично коммерчески доступным приборам и может быть использовано для изучения целостности и плотности монослоя при культивировании эпителиальных/эндотелиальных клеток, изучения процессов транс/парацеллюлярного транспорта при действии различных веществ, а также при экспериментах с ко-культивированием различных клеточных линий.
Полный текст
![Доступ закрыт](https://journals.eco-vector.com/lib/pkp/templates/images/icons/text_lock.png)
Об авторах
Ирина Владимировна Воронкина
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Институт экспериментальной медицины»
Email: voronirina@list.ru
ORCID iD: 0000-0003-0078-4442
SPIN-код: 2336-4158
Scopus Author ID: 6602535489
кандидат биологических наук, старший научный сотрудник, отдел биохимии
Россия, Россия, Санкт-Петербург, улица Академика Павлова, 12ДЛариса Владимировна Смагина
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Институт экспериментальной медицины»,
Email: smagina.la.vl@gmail.com
SPIN-код: 8605-7671
научный сотрудник, отдел биохимии
Россия, Россия, Санкт-Петербург, улица Академика Павлова, 12ДАнна Андреевна Иванова
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Институт экспериментальной медицины»
Автор, ответственный за переписку.
Email: anna.ivantcova@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-8673-9628
SPIN-код: 5306-1995
научный сотрудник отдела биохимии
Россия, 197022, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, 12Татьяна Сергеевна Салль
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Институт экспериментальной медицины»,
Email: miss_taty@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5890-5641
SPIN-код: 4172-6277
научный сотрудник отдела биохимии
Россия, 197022, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, 12Юрий Эдуардович Адамьян
Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования «Санкт-Петербургский политехнический университет Петра Великого».
Email: wiradam@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0003-3410-1005
SPIN-код: 2739-8689
кандидат технических наук, доцент, Высшая школа высоковольтной энергетики
Россия, ул. Политехническая, д. 29 литера Б, Санкт-Петербург, 195251Список литературы
- EVOM™ MANUAL FOR TEER MEASUREMENT. [дата обращения: 3.03.2023] Доступ по ссылке: https://www.wpiinc.com/evm-mt-03-01-evomtm-manual-for-teer-measurement.html
- Raut, B. Chen, L.-J., Hori, T. et al.. An Open-Source Add-On EVOM® Device for Real-Time Transepithelial/Endothelial Electrical Resistance Measurements in Multiple Transwell Samples // Micromachines. 2021. Vol.12. P.282. doi.org/10.3390/mi12030282
- CELLZCOPE The Automatic Cell Monitoring System. [дата обращения: 20.04.2023] Доступ по ссылке:https://www.nanoanalytics.com/en/products/cellzscope.html
- REMS Autosampler [дата обращения: 08.07.2023] Доступ по ссылке: https://www.yumpu.com/en/document/view/34494981/rems-autosampler-instruction-manual-world-precision-instruments/48
- Theile, M., Wiora, L., Russ, D., Reuter, et al., A simple approach to perform TEER measurements using a self-made volt-amperemeter with programmable output frequency. JoVE (Journal of Visualized Experiments). 2019: 152, e60087. doi: 10.3791/60087
- Rajabzadeh, M., Ungethum, J., Herkle, A., et al. A PCB-Based 24-Ch. MEA-EIS Allowing Fast Measurement of TEER. IEEE Sensors Journal. 2021. Vol. 21, N 12. P. 13048–13059. doi: 10.1109/jsen.2021.3067823
- D. Bouis, G.A. Hospers, C. Meijer, et al. Endothelium in vitro: a review of human vascular endothelial cell lines for blood vessel-related research. Angiogenesis. 2001.Vol.4 , N 2. P. 91-102.
- Lisec, B. , Bozic, T. , Santek, I. Characterization of two distinct immortalized endothelial cell lines, EA.hy926 and HMEC-1, for in vitro studies: exploring the impact of calcium electroporation, Ca2+ signaling and transcriptomic profiles. Cell Communication and Signaling . 2024. Vol. 22, N 1. P. 118. doi: 10.1186/s12964-024-01503-2
- Транова Ю. С., Слепнев А. А., Черных И. В., и др. Методика тестирования лекарственных средств на принадлежность к субстратам и ингибиторам белка-транспортера BCRP на клетках линии Caco-2. Разработка и регистрация лекарственных средств. 2023. Т. 12, № 2. С. 87-94. doi.org/10.33380/2305-2066-2023-12-2-87-94.
- Yutaka Konishi, Keiko Hagiwara, Makoto Shimizu. Transepithelial Transport of Fluorescein in Caco-2 Cell Monolayers and Use of Such Transport in In Vitro Evaluation of Phenolic Acid Availability. Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry. 2002. Vol. 66, N 11. P. 2449-2457. doi: 10.1271/bbb.66.2449.
- Prachi Shekhawat, Milind Bagul, Diptee Edwankar, et al. Enhanced dissolution/caco-2 permeability, pharmacokinetic and pharmacodynamic performance of re-dispersible eprosartan mesylate nanopowder. European Journal of Pharmaceutical Sciences. 2019. Vol. 132, P. 72-85. doi.org/10.1016/j.ejps.2019.02.021.
- Щулькин АВ, Транова ЮС, Абаленихина ЮВ, и др. Клетки линии Сaco-2 как модель для изучения абсорбции лекарственных веществ. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2022. Т. 10. С. 63-69. doi.org/10.31146/1682-8658-ecg-206-10-63-69.
- Hubatsch, I., Ragnarsson, E. G. E., Artursson, P. Determination of drug permeability and prediction of drug absorption in Caco-2 monolayers. Nature Protocols. 2007. Vol.2, N 9. P. 2111–2119. doi: 10.1038/nprot.2007.303.
- Poenar, D. P., Yang, G., Wan, W. K. & Feng, S.: Low-Cost Method and Biochip for Measuring the Trans-Epithelial Electrical Resistance (TEER) of Esophageal Epithelium. Materials (Basel). 2020. Vol. 13, N 10. P. 2354. doi: 10.3390/ma13102354
- Srinivasan, B. Kolli, A. R., Esch, M. B., et al. TEER measurement techniques for in vitro barrier model systems. Journal of Laboratory Automation. 2015. Vol. 20, N 2. P. 107–126. doi: 10.1177/2211068214561025.
- Wuttimongkolchai, N., Kanlaya, R., Nanthawuttiphan, S., et al. Chlorogenic acid enhances endothelial barrier function and promotes endothelial tube formation: a proteomics approach and functional validation. Biomedicine & Pharmacotherapy. 2022. N 153, P. 113471. doi.org/10.1016/j.biopha.2022.113471
- Velandia-Romero, M. L., Calderón-Peláez, M. A., Balbás-Tepedino, A., et al. Extracellular vesicles of U937 macrophage cell line infected with DENV-2 induce activation in endothelial cells EA.hy926. PLoS One, 2020. Vol. 15, N 1. P. e0227030.
Дополнительные файлы
![](/img/style/loading.gif)