Корреляция морфометрических и биохимических показателей регенерирующих тканей ожоговых ран кожи крыс при оценке репаративных свойств 2-этил-6-метил-3-гидроксипиридиния N-ацетил-6-аминогексаноата

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Обоснование. Аминогексановая кислота и ее производные — перспективные репаранты. Изучено влияние одного из производных аминогексановой кислоты на заживление экспериментальных термических ожогов кожи.

Цель — изучить взаимосвязь между морфометрическими и биохимическими показателями в ходе эксперимента по оценке эффективности использования 2 % мази с 2-этил-6-метил-3-гидроксипиридиния N-ацетил-6-аминогексаноатом для лечения ожогов кожи крыс.

Материалы и методы. Термический ожог кожи III степени площадью 225 мм2 моделировали у 63 белых нелинейных половозрелых самок крыс под общей анестезией препаратом Золетил 100. Крысы были разделены на три группы в зависимости от местного воздействия на область ожога: в контрольной группе 1 имитировали аппликации без нанесения веществ, в контрольной группе 2 наносили мазевую основу (полиэтиленгликоль), в опытной — 2 % мазь с 2-этил-6-метил-3-гидроксипиридиния N-ацетил-6-аминогексаноатом. Аппликации мази, мазевой основы и их имитации выполняли со вторых суток до завершения эксперимента. В контрольные сроки (7, 14 и 21-е сутки эксперимента) проводили морфометрические исследования ран кожи и определение биохимических показателей в гомогенатах регенерирующих тканей ран.

Результаты. У крыс опытной группы в фазу воспаления эффективность регенерации, подтвержденная динамикой площади раневых дефектов, в бóльшей степени коррелировала с шириной лейкоцитарного вала и толщиной грануляционной ткани, которые, в свою очередь, зависели от уровней фактора некроза опухоли альфа и фактора роста эндотелия сосудов соответственно. В фазу пролиферации площадь раневых дефектов в значительной степени коррелировала с протяженностью эпителиального клина и количеством фибробластов в поле зрения, которые, соответственно, зависели от уровней трансформирующего фактора роста бета и основного фактора роста фибробластов.

Выводы. Результаты корреляционного анализа свидетельствуют, что репаративный эффект местного воздействия 2 % мази с 2-этил-6-метил-3-гидроксипиридиния N-ацетил-6-аминогексаноатом обеспечивается активацией продукции факторов роста, стимулирующих пролиферацию капилляров и фибробластов — компонентов грануляционной ткани, активное формирование которой индуцирует репарацию эпидермиса, что подтверждается планиметрическими данными.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Марина Анатольевна Петровcкая

Тверской государственный медицинский университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: solm1990@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1193-1778
SPIN-код: 5512-7253

аспирант, ассистент кафедры биологии

Россия, Тверь

Маргарита Борисовна Петрова

Тверской государственный медицинский университет

Email: pmargo-2612@mail.ru
ORCID iD: 0009-0004-7620-5958
SPIN-код: 4310-3839

д-р биол. наук, профессор, заведующая кафедрой биологии

Россия, Тверь

Елена Николаевна Егорова

Тверской государственный медицинский университет

Email: enegor@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-4323-5286
SPIN-код: 5805-8780

д-р мед. наук, доцент, заведующая кафедрой биохимии с курсом клинической лабораторной диагностики

Россия, Тверь

Елена Вячеславовна Андрианова

Тверской государственный медицинский университет

Email: andrianovaalenav@mail.ru
ORCID iD: 0009-0000-5825-7317
SPIN-код: 3946-9969

канд. биол. наук, ассистент кафедры биохимии с курсом клинической лабораторной диагностики

Россия, Тверь

Список литературы

  1. Калинин Р.Е., Сучков И.А., Мжаванадзе Н.Д. и др. Регенеративные технологии в лечении синдрома диабетической стопы // Гены и клетки. 2017. Т. 12, № 1. C. 15–26. EDN: YUPZOV doi: 10.23868/201703002
  2. Фаязов А.Д., Туляганов Д.Б., Камилов У.Р., Рузимуратов Д.А. Современные методы местного лечения ожоговых ран // Вестник экстренной медицины. 2019. Т. 12, № 1. С. 43–47. EDN: DTFIUN
  3. Имашева А.К., Лазько М.В. Особенности регенераторных процессов кожи при термических ожогах // Фундаментальные исследования. 2009. № 5. C. 22–24. EDN: KXPXUN
  4. Катаев В.А., Марков И.А. Перспектива использования новых ранозаживляющих медицинских средств для лечения ран и ожогов. В кн.: Сборник научных трудов 4-го съезда комбустиологов России. 2013. № 49–50. С. 102–104. EDN: ZAGLPF
  5. Наумкина В.В. Опыт лечения ожоговых ран повязками хитопран. В кн.: Материалы Всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Термические поражения и их последствия». 2016. № 56–57. С. 137–138.
  6. Островский Н.В., Балянина И.Б. Местные консервативные лечения ожоговых ран с применением биоматериалов, разработанных саратовскими учеными. В кн.: Современные аспекты лечения термической травмы: материалы научно-практической конференции с международным участием, посвященной 70-летию первого ожогового центра России, Санкт-Петербург, 23–24 июня 2016 года. ГБУ Санкт-Петербургский НИИ скорой помощи им. И.И. Джанелидзе. 2016. С. 74–75. EDN: WIITQV
  7. Алексеева Н.Т. Морфологические особенности раневого процесса в коже при региональном лечебном воздействии: дис. ... д-ра мед. наук. Оренбург, 2015.
  8. Li Y., Xu D.B., Wang H.J. Effects of hydrogen sulfide on the secretion of cytokines in macrophages of deep partial-thickness burn wound in rats // Zhonghua Shao Shang Za Zhi. 2016. Vol. 32, N 7. P. 408–412. doi: 10.3760/cma.j.issn.1009-2587.2016.07.005
  9. Dikici S., Yar M., Bullock A.J., et al. Developing wound dressings using 2-deoxy-D-ribose to induce angiogenesis as a backdoor route for stimulating the production of vascular endothelial growth factor // Int J Mol Sci. 2021. Vol. 22, N 21. P. 11437. doi: 10.3390/ijms222111437
  10. Elbialy Z.I., Assar D.H., Abdelnaby A., et al. Healing potential of Spirulina platensis for skin wounds by modulating bFGF, VEGF, TGF-ß1 and α-SMA genes expression targeting angiogenesis and scar tissue formation in the rat model // Biomed Pharmacother. 2021. Vol. 137, N 1. doi: 10.1016/j.biopha.2021.111349
  11. Макаревич П.И., Ефименко А.Ю., Ткачук В.А. Биохимическая регуляция регенеративных процессов факторами роста и цитокинами: основные механизмы и значимость для регенеративной медицины // Биохимия. 2020. Т. 85, № 1. С. 15–33. EDN: OPVJOE doi: 10.31857/S0320972520010029
  12. Gan D., Su Q., Su H., et al. Burn ointment promotes cutaneous wound healing by modulating the PI3K/AKT/mTOR signaling pathway // Front Pharmacol. 2021. Vol. 12. P. 631102. doi: 10.3389/fphar.2021.631102
  13. Пахомов Д.В., Блинова Е.В., Шимановский Д.Н. и др. Доказательные аспекты стимулирования заживления неосложненной раны при локальном применении серебряной соли ацексамовой кислоты // Оперативная хирургия и клиническая анатомия. 2020. Т. 4, № 1. С. 19–25. EDN: SPMTIJ doi: 10.17116/operhirurg2020401119
  14. Андрианова Е.В. Биохимические аспекты прорегенераторного действия нового производного N-ацетил-6-аминогексановой кислоты: дис. ... канд. биол. наук. Тверь, 2023. 139 с. EDN: JQFLEA
  15. Перетягин С.П., Мартусевич А.К., Гришина А.А. и др. Лабораторные животные в экспериментальной медицине. Нижний Новгород: Нижегородский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии, 2011. 300 c. EDN: SIXODX
  16. Огнева Е.С., Савченко Е.С., Табоякова Л.А. Анестезия самок мышей при хирургической трансплантации эмбрионов // Биомедицина. 2021. Т. 17, № S3. С. 64–69. EDN: GQUYTV doi: 10.33647/2713-0428-17-3E-64-69
  17. Файн А.М., Петухова М.Н., Мигулева И.Ю., Савотченко А.М. Сравнительная оценка двух схем внутримышечного наркоза у лабораторных крыс в эксперименте // Вопросы реконструктивной и пластической хирургии. 2019. Т. 22, № 2. С. 53–61. EDN: OTJJTX doi: 10.17223/1814147/69/07
  18. Петровская М.А. Доклиническая оценка эффективности репаративных свойств 2-этил-6-метил-3-гидроксипиридиния N-ацетил-6-аминогексаноата // Тверской медицинский журнал. 2023. № 6. С. 49–52. EDN: MQWKYI
  19. Пахомова А.Е., Пахомова Ю.В., Пахомова Е.Е. Новый способ экспериментального моделирования термических ожогов кожи у лабораторных животных, отвечающий принципам Good Laboratory Practice (надлежащей лабораторной практики) // Медицина и образование в Сибири. 2015. № 3. C. 97–100. EDN: VXOLBT
  20. Семченко В.В., Барашкова С.А., Ноздрин В.И., Артемьев В.Н. Гистологическая техника: учебное пособие для студентов медицинских вузов. 3-е изд. Омск; Орел: Омская областная типография, 2006.
  21. Петровская М.А., Петрова М.Б., Андрианова Е.В., Егорова Е.Н. Особенности морфологии фаз регенерации и динамика уровней факторов роста при применении 2-этил-6-метил-3-гидроксипиридиния N-ацетил-6-аминогексаноата для репарации термических ожогов кожи крыс // Медицинский академический журнал. 2023. Т. 23, № 3. С. 21–29. EDN: MJGYMP doi: 10.17816/MAJ606647
  22. Петровская М.А., Петрова М.Б., Андрианова Е.В., Егорова Е.Н. Динамика уровней цитокинов в регенерирующих тканях термических ожогов кожи крыс при применении мази с новым производным N-ацетиламиногексановой кислоты // Гены и клетки. 2022. Т. 17, № 3. С. 178–179. EDN: CJOMZS
  23. Омельяненко Н.П., Слуцкий Л.И. Соединительная ткань (гистофизиология и биохимия). Москва: Известия, 2009. EDN: QKSAIH
  24. El Ayadi A., Jay J.W., Prasai A. Current approaches targeting the wound healing phases to attenuate fibrosis and scarring // Int J Mol Sci. 2020. Vol. 21, N 3. P. 1105. doi: 10.3390/ijms21031105
  25. Ahn H.N., Kang H.S., Park S.J., et al. Safety and efficacy of basic fibroblast growth factors for deep second-degree burn patients // Burns. 2020. Vol. 46, N 8. P. 1857–1866. doi: 10.1016/j.burns.2020.06.019
  26. Otani Y., Komura M., Komura H., et al. Optimal amount of basic fibroblast growth factor in gelatin sponges incorporating β-tricalcium phosphate with chondrocytes // Tissue Eng Part A. 2015. Vol. 21, N 3–4. P. 627–636. doi: 10.1089/ten.TEA.2013.0655
  27. Chakrabarti S., Mazumder B., Rajkonwar J., et al. bFGF and collagen matrix hydrogel attenuates burn wound inflammation through activation of ERK and TRK pathway // Sci Rep. 2021. Vol. 11, N 1. P. 3357. doi: 10.1038/s41598-021-82888-9
  28. Tran-Nguyen T.M., Le K.T., Nguyen L.T., et al. Third-degree burn mouse treatment using recombinant human fibroblast growth factor 2 // Growth Factors. 2020. Vol. 38, N 5–6. P. 282–290. doi: 10.1080/08977194.2021.1967342
  29. Nagaraja S., Chen L., DiPietro L.A., et al. Predictive approach identifies molecular targets and interventions to restore angiogenesis in wounds with delayed healing // Front Physiol. 2019. Vol. 10. P. 636. doi: 10.3389/fphys.2019.00636
  30. Rahman M.S., Islam R., Rana M.M., et al. Characterization of burn wound healing gel prepared from human amniotic membrane and aloe vera extract // BMC Complement Altern Med. 2019. Vol. 19. P. 115. doi: 10.1186/s12906-019-2525-5
  31. Образцова А.Е., Ноздреватых А.А. Морфофункциональные особенности репаративного процесса при заживлении кожных ран с учетом возможных рубцовых деформаций (обзор литературы) // Вестник новых медицинских технологий. Электронное издание. 2021. № 1. C. 98–107. EDN: DNUEYX doi: 10.24412/2075-4094-2021-1-3-3

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Динамика сокращения площади дефектов кожи крыс в процессе регенерации термического ожога. * Различие статистически значимо (р < 0,05) между показателем у животных опытной группы и контрольных групп 1 и 2

Скачать (141KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Морфологическая картина грануляционной ткани у крыс контрольной группы 1 (а) и опытной группы (b) на 7-е сутки. Гематоксилин и эозин. ×400

Скачать (201KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Морфологическая картина области поражения у крыс контрольной группы 1 (а) и опытной группы (b) на 14-е сутки наблюдения. Гематоксилин и эозин. ×400

Скачать (229KB)
Метаданные

© Эко-Вектор, 2024


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 74760 от 29.12.2018 г.