Нарушение иммунной системы у пациентов, перенесших операции на селезенке в связи с ее травмой

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Проведено исследование по выявлению характера и степени тяжести нарушений со стороны клеточного и гуморального звеньев иммунной системы у больных, перенесших радикальные и органо­сберегающие операции в связи с ее травмой. Установлено, что после таких операций на селезенке развивается вторичный иммунодефицит, проявляющийся нарушениями процессов активации, проли­ферации, дифференцировки иммунокомпетентных клеток и регуляции иммунной системы. Наиболее выраженные изменения со стороны клеточного и гуморального иммунитета развиваются после ради­кальной спленэктомии. Выявление вторичного иммунодефицита у лиц, перенесших иммунокомпроме­тирующие операции на селезенке, позволяет формировать группы пациентов, нуждающихся в посто­янном иммуномониторинге, и в случае необходимости применять патогенетически обоснованную иммунокорригирующую терапию постспленэктомических нарушений.

Об авторах

И. Е. Павлова

ФГУ «Российский научно-исследовательский институт гематологии и трансфузиологии»

Автор, ответственный за переписку.
Email: shabanov@mail.rcom.ru
Россия, Санкт-Петербург

Л. Н. Бубнова

ФГУ «Российский научно-исследовательский институт гематологии и трансфузиологии»

Email: shabanov@mail.rcom.ru
Россия, Санкт-Петербург

В. Д. Каргин

ФГУ «Российский научно-исследовательский институт гематологии и трансфузиологии»

Email: shabanov@mail.rcom.ru
Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Бабаев Э. С., Поддубный И. В. Новый подход к лечению наследственного сфероцитоза у детей // Гематол. и трансфузиол. 2001. № 5. С. 18-20.
  2. Донюш Е. К, Быкова Л. П., Хаспекова С. Г. и др. Использование эндоваскулярной окклюзии селезенки в лечении детей с хронической аутоиммунной тромбоцитопенической пурпурой, резистентных к консервативной терапии // Гематол. и трансфузиол. 2001. № 4. С. 34-37.
  3. Кашкин К. П. Иммунная система: морфофункциональная организация периферических лимфоидных органов И Мед. иммунол. 1999. Т. 1.№ 1-2. С. 11-16.
  4. Макаренкова В. П., Кост Н. В., Щурин М. Р. Система дендритных клеток: роль в индукции иммунитета и в патогенезе инфекционных, аутоиммунных и онкологических заболеваний // Иммунол. 2001. № 3. С. 24-32.
  5. Макаров А. А., Цыпин А. Б., Сускова В. С. и др. Спленотерапия природными цитокинами гнойно-септических и аутоиммунных заболеваний И Мед. иммунол. 2000. Т. 2. № 2. С. 224.
  6. Нурмашев Б. К., Сексенбаев Б. Д., Цой И. Г. Иммунологическая активность перфузата ксеноселезенки // Аллергол. и иммунол. 2001. Т. 2. № 2. С. 79.
  7. Обухова Е. В., Санникова А. А., Стяжкина С. Н. и др. Оценка влияния нового иммуномодулятора Спленопида на состояние иммунитета и фагоцитоза у реконвалесцентов геморрагической лихорадки с почечным синдромом // Цитокины и воспаление. 2002. Т. 1. № 2. С.122-123.
  8. Стиллман Р. М. Селезенка//Хирургия / СПб.: Изд-во СПбМАПО, 1995. С. 151-164.
  9. Bradley Т., Smoot Е., Graham D. Overwhelming postsplenectomy sepsis in a patient with burns: a case report and a rational approach to treatment // J. Bum Care Rehabil. 1995. № 16. P. 525-530.
  10. Carbonelly-Tatay F., Balsalobre B. Humoral immunity following splenectomy in adults II Rev. Clin. Esp. 1992. Vol. 190. № 9. P. 447-449.
  11. Corti G., Paradisi E Patogenetic mechanisms responsible for producing a stcondary immuno-deficiency state /I J, Chemother. 1994. Vol. 3. № 3. P. 6-10.
  12. Demeter J., Bohm U., Paloczi D. Immunoglobulin profiles and antibacterial antibody levels in 50 patients a long time after posttraumatic splenectomy // J. Clin. Lab. Immunol. 1990. Vol. 33. № l.P. 7-9.
  13. Hathaway J., Harley R., Self S. Immunological function in post-traumatic splenosis // J. Clin. Immunol. Immunopathol. 1995. Vol. 74. № 2. P. 143-150.
  14. Hebert J., Reilly M., Yuenger K. Augmentation of alveolar macrophage phagocytic activiti by granulocyte colony stimulating factor and IL-1: influence of splenectomy // J. Trauma. 1994. Vol. 37. № 6. P. 909-912.
  15. Henneking K., Muller C., Franke F. Follow-up of heterotopic autotransplantation of splenic tissue after traumatic splenic rupture in childhood II J. Chirurg. 1994. Vol. 65. № 5. P. 457^168.
  16. Kakuda D., Finley K., Maruyama M. Stress differentially induces cationic amino acid transporter gene expression // Biochim. Biophys. Acta. 1998. Vol. 11. № 1414 (1-2). P. 75-84.
  17. Li Volti S., Sciotto A., Fisichella M. Immune responses to administration of a vaccine against Haemophilus influenzae type В in splenectomized and non-plenectomized patients II J. Infect. 1999. Vol. 39. № l.P. 38-41.
  18. McCarthy J., Redmond P., Duggan S. Characterization of defects in murine peritoneal macrophage function in the early postsplenectomy period // J. Immunol. 1995. Vol. 155. № 1. P. 387-396.
  19. Miniello S., Jirillo E., Urgesi G. Thl-Th2 cytokine correlates in splenectomized patients I/ Chir. Itai. 1999. Vol. 53. № 3. P. 215-219.
  20. Nisevich L., Abaiyldanjva K., Kosideeva S. Humoral antiviral immunity in children with hematologic neoplasm // J. Vopr. Virusol. 1995. Vol. 40. №4. P. 177-181.
  21. Remkova A. Perioperative care by internists in splenectomy // Bratisl. Lee. Listy. 1998. Vol. 99. № 6. P. 291-295.
  22. Schwarz R., Hiserodt J. Effects of splenectomy on the development of tumor-specific immunity //J. Parasitol. 1990. № 3. P. 35-44.
  23. Shimazu T., Tabata T., Tanaka H. Immunologic alterations after splenectomy for trauma // J. Parasitol. 1994. Vol. 80. № 4. P. 558-562.
  24. Slovut D., Benedetti E., Matas A. Babesiosis and hemophagocytic syndrome in an asplenic renal transplant recipient // J. Transplantation. 1996. Vol. 62. № 4. P. 537-539.
  25. Struchko G. Chenges in the neuromediator system of the thymus in rats after splenectomy // Morfologia. 1998. Vol. 113. № 1. P. 105-108.
  26. Szendroi T, Mico I., Hajdu Z. Splenic autotrans¬plantation after abdominal trauma in childhood // Acta Chir. Hung. 1997. Vol. 36. № 1. P. 349-351.
  27. Thomson R., Conrad D., Antoszewska H. Cytomegalovirus retinitis, human immunodeficiency virus antibody positivity and normal T helper cell numbers // J. Infect. 1998. Vol. 37. № 2. P. 186-188.
  28. Tripp R., Topham D.. WatsonS. Bone marrow can function as a lymphoid organ during a primary immune response under conditions of disrupted lymphocyte trafficking // J. Immunol. 1997. Vol. 15. № 158. P. 3716-3720.
  29. Yamaguchi Y, Goto M., Makino Y. Prolonged survival of rat hepatic allografts pretreated with a single donor-specific blood transfusion: the dis¬tribution of donor cells expressing class 1 MHC antigens in recipient// J. Surg. Res. 1996. Vol. 61. № 1. P. 23-29.
  30. Yanagisava K., Kamiyama T. In vitro activation of mouse spleen cells by a lysate of Theileria sergenti-infected bovine red blood cells H J. Vet. Parasitol. 1997. Vol. 68. № 3. P. 241-249.
  31. Wolf H., Eibl M., Georgi E. Long-term decrease of CD4XD45RA* T cells and impaired primary immune response after post-traumatic splenectomy // Br. J. Haematol. 1999. Vol. 107. № 1. P. 55-68.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Эко-Вектор, 2006


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 74760 от 29.12.2018 г.