The state of immune system after post-traumatic spleen surgicery

Cover Page

Cite item

Full Text

Open Access Open Access
Restricted Access Access granted
Restricted Access Subscription or Fee Access

Abstract

A study has been performed on detection of character and degree of disorders of cellular and humoral immunity in patients who underwent radical or organ-saving surgical operations on spleen after trauma. We have established that after radical and organ-saving post-traumatic spleen surgery the secondary immune deficiency develops, manifesting by disturbances of processes of activation, proliferation and differentiation of immune cells, and by disorders in immune system regulation. The most prominent disorders of cellular and humoral immunity develop after radical splenectomy. Detecting of secondary immune deficiency in patients who underwent immunocompromising spleen surgery allows to preform groups of patients who need constant immune monitoring, and, if necessary, to make immune correction of post-splenectomy disorders in these patients.

About the authors

I. Е. Pavlova

Russian Research Institute of hematology and transfusiology

Author for correspondence.
Email: shabanov@mail.rcom.ru
Russian Federation, St. Petersburg

L. N. Bubnova

Russian Research Institute of hematology and transfusiology

Email: shabanov@mail.rcom.ru
Russian Federation, St. Petersburg

V. D. Kargin

Russian Research Institute of hematology and transfusiology

Email: shabanov@mail.rcom.ru
Russian Federation, St. Petersburg

References

  1. Бабаев Э. С., Поддубный И. В. Новый подход к лечению наследственного сфероцитоза у детей // Гематол. и трансфузиол. 2001. № 5. С. 18-20.
  2. Донюш Е. К, Быкова Л. П., Хаспекова С. Г. и др. Использование эндоваскулярной окклюзии селезенки в лечении детей с хронической аутоиммунной тромбоцитопенической пурпурой, резистентных к консервативной терапии // Гематол. и трансфузиол. 2001. № 4. С. 34-37.
  3. Кашкин К. П. Иммунная система: морфофункциональная организация периферических лимфоидных органов И Мед. иммунол. 1999. Т. 1.№ 1-2. С. 11-16.
  4. Макаренкова В. П., Кост Н. В., Щурин М. Р. Система дендритных клеток: роль в индукции иммунитета и в патогенезе инфекционных, аутоиммунных и онкологических заболеваний // Иммунол. 2001. № 3. С. 24-32.
  5. Макаров А. А., Цыпин А. Б., Сускова В. С. и др. Спленотерапия природными цитокинами гнойно-септических и аутоиммунных заболеваний И Мед. иммунол. 2000. Т. 2. № 2. С. 224.
  6. Нурмашев Б. К., Сексенбаев Б. Д., Цой И. Г. Иммунологическая активность перфузата ксеноселезенки // Аллергол. и иммунол. 2001. Т. 2. № 2. С. 79.
  7. Обухова Е. В., Санникова А. А., Стяжкина С. Н. и др. Оценка влияния нового иммуномодулятора Спленопида на состояние иммунитета и фагоцитоза у реконвалесцентов геморрагической лихорадки с почечным синдромом // Цитокины и воспаление. 2002. Т. 1. № 2. С.122-123.
  8. Стиллман Р. М. Селезенка//Хирургия / СПб.: Изд-во СПбМАПО, 1995. С. 151-164.
  9. Bradley Т., Smoot Е., Graham D. Overwhelming postsplenectomy sepsis in a patient with burns: a case report and a rational approach to treatment // J. Bum Care Rehabil. 1995. № 16. P. 525-530.
  10. Carbonelly-Tatay F., Balsalobre B. Humoral immunity following splenectomy in adults II Rev. Clin. Esp. 1992. Vol. 190. № 9. P. 447-449.
  11. Corti G., Paradisi E Patogenetic mechanisms responsible for producing a stcondary immuno-deficiency state /I J, Chemother. 1994. Vol. 3. № 3. P. 6-10.
  12. Demeter J., Bohm U., Paloczi D. Immunoglobulin profiles and antibacterial antibody levels in 50 patients a long time after posttraumatic splenectomy // J. Clin. Lab. Immunol. 1990. Vol. 33. № l.P. 7-9.
  13. Hathaway J., Harley R., Self S. Immunological function in post-traumatic splenosis // J. Clin. Immunol. Immunopathol. 1995. Vol. 74. № 2. P. 143-150.
  14. Hebert J., Reilly M., Yuenger K. Augmentation of alveolar macrophage phagocytic activiti by granulocyte colony stimulating factor and IL-1: influence of splenectomy // J. Trauma. 1994. Vol. 37. № 6. P. 909-912.
  15. Henneking K., Muller C., Franke F. Follow-up of heterotopic autotransplantation of splenic tissue after traumatic splenic rupture in childhood II J. Chirurg. 1994. Vol. 65. № 5. P. 457^168.
  16. Kakuda D., Finley K., Maruyama M. Stress differentially induces cationic amino acid transporter gene expression // Biochim. Biophys. Acta. 1998. Vol. 11. № 1414 (1-2). P. 75-84.
  17. Li Volti S., Sciotto A., Fisichella M. Immune responses to administration of a vaccine against Haemophilus influenzae type В in splenectomized and non-plenectomized patients II J. Infect. 1999. Vol. 39. № l.P. 38-41.
  18. McCarthy J., Redmond P., Duggan S. Characterization of defects in murine peritoneal macrophage function in the early postsplenectomy period // J. Immunol. 1995. Vol. 155. № 1. P. 387-396.
  19. Miniello S., Jirillo E., Urgesi G. Thl-Th2 cytokine correlates in splenectomized patients I/ Chir. Itai. 1999. Vol. 53. № 3. P. 215-219.
  20. Nisevich L., Abaiyldanjva K., Kosideeva S. Humoral antiviral immunity in children with hematologic neoplasm // J. Vopr. Virusol. 1995. Vol. 40. №4. P. 177-181.
  21. Remkova A. Perioperative care by internists in splenectomy // Bratisl. Lee. Listy. 1998. Vol. 99. № 6. P. 291-295.
  22. Schwarz R., Hiserodt J. Effects of splenectomy on the development of tumor-specific immunity //J. Parasitol. 1990. № 3. P. 35-44.
  23. Shimazu T., Tabata T., Tanaka H. Immunologic alterations after splenectomy for trauma // J. Parasitol. 1994. Vol. 80. № 4. P. 558-562.
  24. Slovut D., Benedetti E., Matas A. Babesiosis and hemophagocytic syndrome in an asplenic renal transplant recipient // J. Transplantation. 1996. Vol. 62. № 4. P. 537-539.
  25. Struchko G. Chenges in the neuromediator system of the thymus in rats after splenectomy // Morfologia. 1998. Vol. 113. № 1. P. 105-108.
  26. Szendroi T, Mico I., Hajdu Z. Splenic autotrans¬plantation after abdominal trauma in childhood // Acta Chir. Hung. 1997. Vol. 36. № 1. P. 349-351.
  27. Thomson R., Conrad D., Antoszewska H. Cytomegalovirus retinitis, human immunodeficiency virus antibody positivity and normal T helper cell numbers // J. Infect. 1998. Vol. 37. № 2. P. 186-188.
  28. Tripp R., Topham D.. WatsonS. Bone marrow can function as a lymphoid organ during a primary immune response under conditions of disrupted lymphocyte trafficking // J. Immunol. 1997. Vol. 15. № 158. P. 3716-3720.
  29. Yamaguchi Y, Goto M., Makino Y. Prolonged survival of rat hepatic allografts pretreated with a single donor-specific blood transfusion: the dis¬tribution of donor cells expressing class 1 MHC antigens in recipient// J. Surg. Res. 1996. Vol. 61. № 1. P. 23-29.
  30. Yanagisava K., Kamiyama T. In vitro activation of mouse spleen cells by a lysate of Theileria sergenti-infected bovine red blood cells H J. Vet. Parasitol. 1997. Vol. 68. № 3. P. 241-249.
  31. Wolf H., Eibl M., Georgi E. Long-term decrease of CD4XD45RA* T cells and impaired primary immune response after post-traumatic splenectomy // Br. J. Haematol. 1999. Vol. 107. № 1. P. 55-68.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2006 Eco-Vector


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 74760 от 29.12.2018 г.