СТРЕСС-ИНДУЦИРОВАННАЯ АТРОФИЯ ТИМУСА И ТУЧНЫЕ КЛЕТКИ
- Авторы: Полевщиков АВ1, Гусельникова ВВ1
-
Учреждения:
- ФГБНУ «Институт экспериментальной медицины»
- Выпуск: Том 19, № 1S (2019)
- Страницы: 98-100
- Раздел: Статьи
- Статья опубликована: 15.12.2019
- URL: https://journals.eco-vector.com/MAJ/article/view/19345
- ID: 19345
Цитировать
Полный текст
Аннотация
В работе с использованием гистологических методов оценивали динамику популяции тучных клеток тимуса в ответ на введение белым беспородным мышам гидрокортизона. Установлено, что через 48 ч после введения гормона число тучных клеток возрастает в 10 раз, при этом появляются клетки на всех стадиях созревания. Параллельно повышается уровень дегрануляции тучных клеток. Предполагается созревание тучных клеток в пределах органа и их участие в регуляции клеточной миграции и ремоделировании матрикса тимуса при стрессе.
Ключевые слова
Полный текст
Введение. Наличие контактов тучныхклеток и нервных терминалей, а также существование популяции тучных клеток (ТК) в тимусе позволяют ставить вопрос о роли нейро-мастоцитарных взаимодействий в иммунофизиологии тимуса в норме и в процессе стресс-индуцированной атрофии (акцидентальной трансформации) этого органа. Данные о внутритимической локализации ТК были получены еще в 1930-е годы и в дальнейшем многократно подтверждены [1], однако морфологические свидетельства контактов ТК тимуса и катехоламинэргических нервных терминалей были получены относительно недавно [4]. В ответ на иммобилизационный стресс анализировалась динамика числа ТК тимуса и уровня их дегрануляции, но результаты были неоднозначными [3]. Однако многие аспекты нейро-мастоцитарных взаимодействий в тимусе в норме и при стрессе остаются неясными. Поэтому целью работы было изучение динамики ТК тимуса и степени их зрелости в ответ на введение гидрокортизона (ГК) экспериментальным животным. Материалы и методы. Материалом для исследования служил тимус самцов белых нелинейных мышей (возраст 3-4 мес, n = 30). Для индукции акцидентальной трансформации тимуса экспериментальным животным однократно внутрибрюшинно вводили раствор гидрокортизона (Gedeon Richter, Венгрия) в дозе 125 мг/кг веса. Животных выводили из эксперимента путем цервикальной дислокации через 12, 24, 48, 72, 96 и 192 ч после инъекции. В качестве контроля использовали интактных мышей (n = 5). Образцы тимуса фиксировали смесью спирт-формалин-уксусная кислота. На ротационном микротоме (Leica RM 2125RT) изготавливали срезы толщиной 5 мкм. Для выявления тучных клеток использовали раствор толуидинового синего (LabPoint, Россия). Для выявления ТК разных стадий зрелости срезы окрашивали раствором альцианового синего G - сафранина O по методике [5]. Для идентификации фибронектина использовали кроличьи поликлональные антитела (Abcam, Великобритания). Для флуоресцентного выявления связавшихся первичных антител использовали HRP Conjugate (Spring Bioscience, США) и козьи антитела против HRP, конъюгированные с флюорохромом Cy3 (Jackson ImmunoResearch, США). Результаты и их обсуждение. Полученные данные об изменениях структуры тимуса в ходе акцидентальной трансформации согласуются с имеющимися в литературе сведениями [2]. На сроках 12-24 ч после введения ГК в кортексе тимуса отмечено обилие апоптотических телец. Через 48 ч после введения ГК корковое вещество тимуса было полностью очищено от них, при этом плотность клеток в кортексе была значительно ниже, чем в медулле. Применение окраски анилиновым синим позволило выявить увеличение плотности соединительной ткани в кортексе тимуса через 48 ч после введения ГК по сравнению с контролем. Через 192 ч после введения ГК общая морфология тимуса соответствовала интактным животным. Результаты выявления фибронектина в тимусе мыши подтвердили данные о существенном увеличении плотности соединительной ткани в кортексе через 48 ч после введения ГК. Через 48 ч после введения ГК отмечается существенное увеличение количества ТК в тимусе, которое более чем в 10 раз превышает значение контроля. В дальнейшем количество ТК в тимусе постепенно снижается через 72 ч и 96 ч после введения ГК и в точке 196 ч достоверно не отличается от значений контроля. Количественная оценка степени дегрануляционной активности в ходе акцидентальной трансформации выявила увеличение индекса дегрануляции ТК в тимусе на всех исследованных сроках после введения ГК, что может быть свидетельством функциональной вовлеченности ТК в процесс акцидентальной трансформации тимуса. В тимусе мышей через 48, 72 и 96 ч после введения ГК было отмечено наличие ТК всех стадий созревания, неравномерно распределенных по компартментам органа: Самые незрелые (гранулы которых окрашены альциановым синим) клетки преобладали в мозговом и корковом веществе тимуса, в то время как более зрелые формы тучных клеток преобладали в составе соединительнотканного компартмента органа. Наибольшее количество самых незрелых ТК и ТК промежуточной степени зрелости было отмечено в тимусе через 48 ч после введения ГК. По мере восстановления тимуса (72-96 ч после введения ГК) доля незрелых и созревающих ТК в тимусе постепенно уменьшалась на фоне увеличения доли самых зрелых ТК. В точке 192 ч, как и в тимусе животных контрольной группы, все выявленные ТК характеризовались наличием исключительно зрелых гранул. Результаты свидетельствуют о том, что появление новых ТК в тимусе в ходе акцидентальной трансформации связано с их созреванием in situ. В ходе созревания после акцидентальной трансформации ТК перемещаются из мозгового вещества тимической дольки и глубоких слоев кортекса к соединительно-тканным междольковым трабекулам и капсуле, где устанавливают связи с катехоламиэргическими нервными терминалями. Не исключено, что дегрануляция ТК тимуса в ходе стресс-индуцированной атрофии может быть вызвана передачей сигнала от нервных терминалей и играет важную роль в экстратимической миграции клеток в ходе ранних стадий ответной реакции на стресс.×
Об авторах
А В Полевщиков
ФГБНУ «Институт экспериментальной медицины»
В В Гусельникова
ФГБНУ «Институт экспериментальной медицины»
Список литературы
- Кемилева З. Вилочковая железа. - М.: Медицина, 1984. - 105 с.
- Старская И.С., Полевщиков А.В. Морфологические аспекты атрофии тимуса при стрессе // Иммунология. - 2013. - Т. 34. - № 5. - С. 271-277.
- Юшков Б.Г., Черешнев В.А., Климин В.Г., Арташян О.С. Тучные клетки: физиология и патофизиология. - М: Медицина. - 2011. - 237 с.
- Gusel’nikova VV, Sukhorukova EG, Fedorova EA, et al. A Method for the Simultaneous Detection of Mast Cells and Nerve Terminals in the Thymus in Laboratory Mammals. Neuroscience and Behavioral Physiology. 2015:45(4):371-374.
- Röhlich P., Csaba G. Alcian blue-safranine staining and ultrastructure of rat mast cell granules during degranulation. Acta Biol Acad Sci Hung. 1972;23(1):83-89.
Дополнительные файлы
![](/img/style/loading.gif)