Нейтрофильные гранулоциты — фагоциты, и не только
- Авторы: Алешина Г.М.1
-
Учреждения:
- Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Институт экспериментальной медицины»
- Выпуск: Том 20, № 4 (2020)
- Страницы: 5-16
- Раздел: Аналитический обзор
- Статья опубликована: 18.03.2021
- URL: https://journals.eco-vector.com/MAJ/article/view/52808
- DOI: https://doi.org/10.17816/MAJ52808
- ID: 52808
Цитировать
Аннотация
Нейтрофильные гранулоциты — одни из ключевых клеточных факторов врожденного иммунитета. В обзоре представлены данные по морфологии, особенностям миграции и утилизации нейтрофильных гранулоцитов, процессам фагоцитоза и дегрануляции, нейтрофильным внеклеточным ловушкам, пластичности нейтрофилов, их роли в системных воспалительных реакциях и регуляции адаптивного иммунитета.
Полный текст
Список сокращений
ДНК — дезоксирибонуклеиновая кислота; ММП — матриксные металлопротеиназы; НАДФН-оксидаза — никотинамидадениндинуклеотидфосфат-оксидаза; ICAM — молекулы межклеточной адгезии; IL — интерлейкин; MIP — макрофагальный ингибиторный белок; NET — нейтрофильные внеклеточные ловушки; TLR — Толл-подобный рецептор; TNFα — фактор некроза опухоли альфа.
Нейтрофильные гранулоциты (нейтрофилы) традиционно рассматривают как одну из первых линий защиты макроорганизма от вторгающихся в его тело микроорганизмов [1–4]. В классических морфофизиологических исследованиях И.И. Мечникова и его учеников изучена феноменология фагоцитарного процесса, осуществляемого нейтрофилами (микрофагами, псевдоэозинофилами, гетерофилами), доказана его незаменимая роль в функционировании врожденного иммунитета животных, противостоящего инфекционным агентам различной биологической природы. Именно И.И. Мечников прозорливо подчеркнул большое значение «цитаз» — внутриклеточных микробоцидных веществ — в обеспечении завершенного фагоцитоза. В его работах функции фагоцитов (микро- и макрофагов) рассмотрены со сравнительно-эволюционных позиций, что позволило показать их ключевую роль в формировании врожденного иммунитета [1].
Согласно данным современных исследований пациенты с врожденной нарушенной функцией нейтрофилов (нейтропении, нарушения адгезии, дефицит гранул), как правило, подвержены инфицированию бактериями (преимущественно Staphylococcus aureus, Pseudomonas, Burkholderia) и грибами (например, Aspergillus и Candida), но не вирусами и паразитами. Входные ворота инфекции включают кожу, слизистые оболочки и легкие, но может быть затронут любой участок организма, и абсцессы представляют распространенное явление [5].
1. Морфология нейтрофильных гранулоцитов
Нейтрофилы — одна из самых многочисленных разновидностей лейкоцитов, а для человека самая многочисленная. До 60 % гематопоэтической активности костного мозга может быть направлено на выработку нейтрофилов. Ежедневно в кровь поступает 1011 этих клеток. Развитие нейтрофилов в костном мозге занимает около 14 дней, начиная с гемопоэтических стволовых клеток [3].
Механизмы, регулирующие дифференцировку нейтрофилов, не полностью понятны, но установлена роль определенного набора факторов транскрипции и цитокинов, которые, по-видимому, направляют стволовые клетки и клетки-предшественницы к дифференцировке в направлении нейтрофилов. Основным среди цитокинов, регулирующих гранулопоэз, является гранулоцитарный колониестимулирующий фактор (G-CSF). Эффекты G-CSF включают индукцию миелоидной дифференцировки, пролиферацию предшественников гранулоцитов и высвобождение зрелых нейтрофилов из костного мозга [6].
Стволовые клетки, которым суждено стать нейтрофилами, сначала дифференцируются в миелобласты, которые сохраняют способность развиваться в эозинофилы, базофилы и нейтрофилы. Последующая дифференцировка приводит к нейтрофильному промиелоциту, предшественнику нейтрофилов, и далее проходит стадии нейтрофильных миелоцитов, метамиелоцитов, палочкоядерных нейтрофилов и зрелых сегментоядерных нейтрофилов. На стадии метамиелоцитов нейтрофильный митоз прекращается, тогда как развитие нейтрофилов и формирование гранул продолжаются.
Интенсивный гранулогенез начинается на стадии промиелоцита, когда на уровне аппарата Гольджи формируются лизосомоподобные инициальные вакуоли, сливающиеся в цитоплазме с образованием первичных, или азурофильных, гранул [7].
В азурофильных гранулах содержатся антимикробные катионные пептиды дефенсины, кислые гидролазы (β-глицерофосфатаза, N-ацетил-β-гликозаминидаза, β-глюкуронидаза, α-маннозидаза, катепсин D, катепсин В), нейтрально-щелочные протеазы (эластаза, катепсин G), лизоцим и миелопероксидаза [8] (таблица). Наличие кислых гидролаз делает их схожими с лизосомами, но на уровне мембран они отличаются от настоящих лизосом отсутствием мембранных белков, ассоциированных с лизосомами LAMP-1 и LAMP-2, и системы маннозо-6-фосфатных рецепторов [9].
Содержимое гранул и секреторных везикул нейтрофилов человека [8]
Contents of granules and secretory vesicles of human neutrophils [8]
Азурофильные гранулы | Специфические гранулы | Желатиназные гранулы | Секреторные везикулы |
Мембрана | |||
CD63 | CD11b/CD18 | CD11b/CD18 | Щелочная фосфатаза |
CD68 | CD15 | Цитохром b558 | CD10 |
Пресенилин 1 | CD66 | Диацилглицерол деацетилирующий фермент | CD11b/CD18 |
Стоматин | CD67 | fMLP-R | CD13 |
V-H+-ATФаза | Цитохром b558 | Лейколизин | CD14 |
Рецептор к fMLP | VAMP-2 | CD16 | |
Рецептор к фибронектину | V-H+-ATФаза | CD45 | |
α-Субъединица G-белка | SNAP-23, -25 | CR1 | |
Рецептор к ламинину | CD87 | Рецептор к C1q | |
Лейколизин | Цитохром b558 | ||
Специфичный антиген нейтрофилов NB1 | CD55 | ||
Белок 19-кДа | Рецептор к fMLP | ||
Белок 155-кДа | Лейколизин | ||
ГТФазы Rap1 и Rap2 | VAMP-2 | ||
Рецептор к витронектину | V-H+-ATФаза | ||
SNAP-23, -25 | |||
Стоматин | |||
Рецептор к тромбоспондину | |||
Рецептор к TNF | |||
CD87 | |||
VAMP-2 | |||
Матрикс | |||
Кислая β-глицерофосфатаза | β2-Микроглобулин | Ацетилтрансфераза | Белки плазмы |
Кислые мукополисахариды | Коллагеназа | β2-Микроглобулин | |
α1-Антитрипсин | CRISP-3 | CRISP-3 | |
α-Маннозидаза | Желатиназа | Желатиназа | |
Азуроцидин | hCAP-18 | Лизоцим | |
Белок, увеличивающий проницаемость мембран | Гистаминаза | ||
β-Глицеролфосфатаза | Гепараназа | ||
β-Глюкуронидаза | Лактоферрин | ||
Катепсины | Лизоцим | ||
Дефенсины | Липокалин 2 (NGAL) | ||
Эластаза | Активатор плазминогена урокиназного типа | ||
Лизоцим | Нейраминидаза | ||
Миелопероксидаза | Транскобаламин I | ||
N-ацетил-β-глюкозаминидаза | Стромелизин-1 | ||
Протеиназа-3 | Лейколизин | ||
Нейраминидаза | Кателицидины |
Примечание. CRISP-3 — богатый цистеином секреторный белок-3; SNAP — ассоциированный с синаптосомами белок; VAMP — везикуло-ассоциированный мембранный белок; ГТФ — гуанозинтрифосфат.
Методом электронной гистохимии миелопероксидазу выявляют во всех элементах секреторного аппарата промиелоцитов: в каналах эндоплазматического ретикулума, во внутренних цистернах аппарата Гольджи, в инициальных вакуолях и зрелых азурофильных гранулах [10]. Поскольку этот фермент синтезируется только на стадии промиелоцита, его можно признать биохимическим и цитохимическим маркером промиелоцитарной стадии дифференцировки нейтрофилов человека и млекопитающих [7].
Необходимо отметить, что часть азурофильных гранул начинает функционировать вскоре после своего образования. Одна из таких функций — их участие в физиологической деструкции митохондрий путем аутофагоцитоза во время миелоцитарной стадии созревания [11].
На этом этапе начинается формирование вторичных гранул. Вторичные гранулы нейтрофилов составляют популяцию, уникальную для нейтрофилов, что отражено в их другом названии — «специфические». Специфические гранулы обладают обширным набором мембранно-ассоциированных белков, включая цитохромы, сигнальные молекулы и рецепторы (см. таблицу). Эти гранулы представляют собой резервуар белков, предназначенных для локализации на внешних поверхностях фагоцитарных вакуолей и плазматической мембраны [12]. Одним из важных семейств протеиназ, обнаруживаемых в специфических гранулах, являются матриксные металлопротеиназы (ММП), которые хранятся в виде неактивных проферментов и активируются путем протеолиза при взаимодействии с содержимым азурофильных гранул после слияния гранул с фагоцитарной вакуолью. ММП разрушают мембранные компоненты фагоцитированных бактерий, но функция ММП нейтрофилов не ограничивается уничтожением бактерий. Например, ММП также важны для экстравазации нейтрофилов и диапедеза [13].
Набор антимикробных белков и пептидов также отличается у азурофильных и специфических гранул. Общим белком является только лизоцим. Важное место в специфических гранулах занимают железосвязывающий белок лактоферрин, служащий маркером специфических гранул, и антимикробные пептиды кателицидины, которые, как и ММП, хранятся в специфических гранулах в виде неактивных пропептидов.
Cодержимое гранул может изменяться как в ходе постнатального развития организма, так и в результате постмитотического развития самих клеток. Например, установлено, что в костном мозге новорожденных кроликов 90–95 % всей популяции гранул нейтрофильных промиелоцитов дают отрицательную реакцию на пероксидазу, хотя и содержат другие катионные белки. Пероксидаза появляется в нейтрофильных промиелоцитах кролика в первые недели постнатального развития и становится специфическим маркером гранул этих клеток только спустя определенное время после рождения [11].
На стадиях метамиелоцитов и палочкоядерных клеток образуются гранулы с высоким содержанием желатиназы, после чего образование гранул прекращается, секреторные везикулы образуются путем эндоцитоза [14]. Секреторные везикулы заслуживают внимания благодаря обширному набору мембраносвязанных белков, включая рецепторы плазматической мембраны. Эти и другие данные свидетельствуют, что секреторная везикула является резервуаром белков плазматической мембраны нейтрофилов и других мембранных белков [5]. Последовательность процесса гранулогенеза и синтеза гранулярных белков на разных стадиях развития миелоидных клеток представлена на рисунке [8].
Последовательность процесса гранулогенеза и синтеза гранулярных белков на разных стадиях развития миелоидных клеток [8]. MB — миелобласт; PM — промиелоцит; MC — миелоцит; ММ — метамиелоцит; BC — палочкоядерный нейтрофил; PMN — сегментоядерный нейтрофил. Белки гранул: МПО — миелопероксидаза; PR-3 — протеиназа 3; НЭ — эластаза нейтрофилов; ЛФ — лактоферрин; TC-I — транскобаламин I; CRISP-3 — богатый цистеином секреторный белок-3
The sequence of the granulogenesis process and the synthesis of granular proteins at distinct stages of myeloid cell development [8]. MB — myeloblast; PM — promyelocyte; MC — myelocyte; MM — metamyelocyte; BC — band cell; PMN — polymorphonuclear neutrophil. Granule proteins: MPO — myeloperoxidase; PR-3 — proteinase 3; NE — neutrophil elastase; LF — lactoferrin; TC-I — transcobalamin I; CRISP-3 — cysteine-rich secretory protein-3
Зрелый нейтрофильный гранулоцит содержит сегментированное ядро, цитоплазматические гранулы, запас гликогена в виде большого количества немембранных округлых телец, хорошо развитый цитоскелет, состоящий из микротрубочек и микрофиламентов. Другие клеточные органеллы практически редуцированы: аппарат Гольджи и шероховатый эндоплазматический ретикулум значительно уменьшены, мало свободных рибосом, митохондрии единичные. Все эти морфологические признаки говорят о том, что нейтрофил представляет собой специализированную клетку на конечной стадии морфобиохимической дифференцировки, неспособную к клеточному делению [3].
2. Миграция нейтрофильных гранулоцитов
После созревания нейтрофилы выходят из костного мозга через плотно прилегающие поры синусоидального эндотелия и попадают в кровообращение [15]. У нейтрофилов, высвобождаемых из костного мозга, период полувыведения из кровотока составляет приблизительно 6 ч, а период полужизни в тканях длится несколько дольше. Периоды жизни нейтрофилов могут модулироваться растворимыми сигналами. При воздействии таких стимулов, как фактор некроза опухоли (TNFα) и лиганд Fas (CD95), нейтрофилы подвергаются апоптозу или запрограммированной гибели клеток [16, 17]. Большое количество нейтрофилов и их короткий период полужизни подразумевают, что должны существовать специальные механизмы удаления нейтрофилов. Показано, что сигнальная система, включающая стромальный фактор 1 (SDF-1) и CXC-рецептор хемокинов 4 (CXCR4), вовлечена в клиренс нейтрофилов. CXCR4, связанный с G-белком рецептор, экспрессируется в небольшом количестве в зрелом нейтрофиле. С возрастом нейтрофилы изменяют свой фенотип и активируют CXCR4.
Это изменение поддерживает возвращение нейтрофилов в костный мозг через хемоаттрактант SDF-1 (также известный как CXCL12). Вернувшись в костный мозг, нейтрофилы фагоцитируются стромальными макрофагами [18]. Согласно общепринятому мнению, стареющие или апоптотические нейтрофилы кровотока также удаляются макрофагами печени и селезеночными макрофагами (то есть ретикулоэндотелиальной системой). Однако эти данные были получены на основании радиоактивной маркировки выделенных, а затем снова введенных нейтрофилов [19], но прижизненная визуализация не выявила, что нейтрофилы поглощаются макрофагами в любом из этих органов [20]. Приблизительно 30 000 нейтрофилов в норме мигрируют в ротовую полость каждую минуту, это составляет только <1 % нейтрофилов, производимых каждый день [21]. Тем не менее, если это будет происходить по всему желудочно-кишечному тракту, то наверняка приведет к значительной элиминации нейтрофилов. Недавние работы показали, что нейтрофилы и в свободных от патогенов условиях проникают во многие ткани, в том числе и в кишечник [22], что подтверждает результаты более раннего исследования по ишемии-реперфузии в кишечнике, в котором нейтрофилы обнаруживались в интерстиции кишечника [23].
Чтобы попасть в место проникновения микроорганизмов, нейтрофилы должны пересекать сосудистую стенку. Пересечение происходит в основном в посткапиллярных венулах. Здесь стенка сосуда довольно тонкая, а диаметр достаточно мал, чтобы нейтрофилы могли вступать в контакт со стенкой сосуда, но достаточно велик, чтобы не быть заблокированным нейтрофилами после их контакта с эндотелием [24]. Начальное прикрепление нейтрофилов к эндотелию определяется эндотелиальными клетками, реагирующими на такие стимулы, как TNFα, IL-1β и IL-17, которые генерируются во время инфекции или воспаления. Такая стимуляция приводит к экспрессии P-селектина, E-селектина, а также членов суперсемейства интегринов [ICAM и VCAM (васкулярные молекулы клеточной адгезии)] на внутренней эндотелиальной поверхности сосудов. Селектины связывают PSGL-1 (P-селектин-лиганд 1) и L-селектин, которые экспрессируются конститутивно на кончиках нейтрофильных микроворсинок [25–27]. Эти связи образуются и отсоединяются последовательно, обеспечивая эффект роллинга нейтрофилов по поверхности сосуда.
После установления прочной адгезии трансэндотелиальная миграция может осуществляться двумя путями: трансклеточным, посредством которого нейтрофилы проникают в отдельные эндотелиальные клетки, или параклеточным, посредством которого нейтрофилы проходят между эндотелиальными клетками. Ключевыми игроками, участвующими в направлении к параклеточной или трансклеточной миграции, вновь являются основные нейтрофильные β2-интегрины LFA-1 и Mac-1 и их лиганды ICAM-1 и ICAM-2 [28].
3. Фагоцитоз и дегрануляция
Нейтрофил является профессиональным фагоцитом, а фагоцитоз — одной из его основных функций. После опсонизации микроорганизма и взаимодействия с соответствующими рецепторами, такими как рецепторы Fcγ, лектины С-типа или рецепторы комплемента, инициируется стадия поглощения. Псевдоподии охватывают фагоцитируемый объект, происходит инвагинация мембраны и микроорганизм погружается внутрь фагоцита в образуемую фагоцитарную вакуоль [29]. Это опосредуется сложным путем активации внутриклеточных сигнальных каскадов вместе с перестройками цитоскелета. Во время этого процесса азурофильные и специфические гранулы сливаются с фагосомой и высвобождают в нее свое антимикробное содержимое. В то же время никотинамидадениндинуклеотидфосфатоксидаза (НАДФН-оксидаза) собирается из группы мембраносвязанных флавоцитохромов (цитохрома b558, состоящего из субъединиц gp91phox и p22phox) и цитоплазматических компонентов (p47phox, p67phox, p40phox, Rac) [30, 31]. Активность НАДФН-оксидазы приводит к образованию кислородных радикалов и продуктов их реакции. Эти продукты все вместе известны как активные формы кислорода (включая супероксидный радикал — O2•¯, гидроксильный радикал — HO•, пероксид водорода — H2O2), которые поступают в фагоцитарную вакуоль, где они способствуют уничтожению микроорганизмов [31]. НАДФН-оксидаза имеет решающее значение для уничтожения микроорганизмов, так как отсутствие или нарушение функции этого фермента приводит к хронической гранулематозной болезни, которая характеризуется значительной предрасположенностью к бактериальной и грибковой инфекциям [32].
Необходимо отметить, что дегрануляция инициируется уже в момент контакта нейтрофила с фагоцитируемым объектом, часть гранул, расположенных вблизи наружной клеточной мембраны, разрывается, их мембраны сливаются с клеточной мембраной, а содержимое высвобождается во внеклеточное пространство [11]. Но что характерно, дегрануляция во внеклеточное пространство и в фаголизосому регулируется дифференцированно. Первый вариант дегрануляции определяет последовательность мобилизации, в которой в первую очередь в ответ на стимулы дегранулируют более легкие гранулы (секреторные везикулы > желатиназные гранулы > специфические гранулы > азурофильные гранулы). При последнем варианте дегрануляции (образование фаголизосом) с фагоцитарной вакуолью преимущественно сливаются азурофильные и специфические гранулы [5], что позволяет сразу доставлять в фагосому максимально полный набор антибиотических соединений и обеспечивать функционирование НАДФН-оксидазы.
Говоря о регуляции процесса фагоцитоза, следует отметить, что в ходе фагоцитоза в течение 6 ч усиливается экспрессия 305 генов и снижается — 297 [33]. В соответствии с представлением о нейтрофилах как первой линии защиты эти исследования показали усиление экспрессии различных провоспалительных медиаторов в нейтрофилах вскоре после начала процесса фагоцитоза. Среди таких генов были гены, кодирующие хемокины и цитокины, необходимые для привлечения макрофагов, Т-клеток и нейтрофилов и для модуляции их воспалительного ответа [моноцитарный хемотаксический белок MCP-1, также известный как CCL2, макрофагальные ингибиторные белки MIP-1α (CCL3), MIP-2α (CХCL2), MIP-2β (CХCL2), MIP-3α (CCL20), онкостатин М и IL-1β] [33, 34]. Следом за ранним провоспалительным ответом нейтрофилы инициируют дальнейший транскрипционный ответ, способствующий апоптозу и дальнейшему поглощению и перевариванию макрофагами. На этом этапе усиливается экспрессия генов, кодирующих проапоптические белки, включая медиаторы и рецепторы внешнего апоптического пути (TNFα, TRAIL, TNFR-1 и TRAILR), каспазы 1 и ВАХ (белка Bcl-2-семейства), а также членов TLR2-пути проведения сигнала (TLR2, киназы-1, ассоциированной с рецептором IL-1β, каспазы-8, IL-1β, антагониста рецептора IL-1β и легкой цепи транскрипционного фактора NFκB – NFκB1) [33]. Важно, что фагоцитоз-индуцированный апоптоз отменяется ингибированием белкового синтеза, что определенно указывает на регуляцию апоптоза нейтрофилов на трансляционном уровне [35].
Даже гибель нейтрофилов в очагах воспаления можно рассматривать как защитную реакцию макроорганизма. Установлено, например, что псевдотуберкулезные бактерии инактивируются не столько за счет фагоцитарных реакций, сколько в результате гибели нейтрофилов с накоплением в очагах воспаления продуктов распада ядер [36].
4. Нейтрофильные внеклеточные ловушки
В последние несколько лет интерес к «внеклеточному» функционированию нейтрофилов резко возрос благодаря обнаружению так называемых нейтрофильных внеклеточных ловушек — NET (neutrophil extracellular traps) — внеклеточных нитей ДНК, связанных с пептидами и белками [37].
Со времени первого описания [38] феномен NET считается альтернативой гибели нейтрофилов либо в результате апоптоза, либо в результате пироптоза. Механизмы, лежащие в основе NETosis (как назвали этот путь клеточной гибели), были частично определены in vitro, как правило, путем анализа нейтрофилов, стимулированных в течение 1–3 ч с помощью форбол-12-миристат-13-ацетата в бессывороточных условиях или с очень низкими концентрациями сывороточных белков [39]. NETosis в таких экспериментальных условиях зависит от присутствия основной нейтрофильной сериновой протеазы эластазы [40], миелопероксидазы [41] и активной НАДФН-оксидазы [42]. Следовательно, NETosis не следует ожидать у пациентов с дефицитом миелопероксидазы, относительно распространенным наследственным заболеванием, или с хронической гранулематозной болезнью, которая является более тяжелым иммунодефицитом, характеризующимся неспособностью нейтрофилов продуцировать активные формы кислорода [43]. Поскольку дефицит миелопероксидазы не приводит к тяжелым клиническим проявлениям, можно предположить, что NETosis, как определено выше, играет незначительную (если таковая существует) роль в иммунной защите. Аналогичным образом пациенты с синдромом Папийона – Лефевра, нейтрофилы которых не имеют ни эластазы, ни других сериновых протеаз и, следовательно, не могут поддерживать NETosis [44], не обладают повышенной восприимчивостью к системным инфекциям и, как правило, страдают только тяжелыми заболеваниями пародонта [45]. Было показано, что NET захватывают бактерии [46], грибы [47] и даже вирусы [48] и могут обеспечивать частичную защиту Т-клеток от заражения вирусом иммунодефицита человека [49]. Есть исследования, которые ставят под сомнение первоначальное наблюдение, что сети уничтожают захваченные бактерии [50]. Тем не менее, вероятно, улавливание жизнеспособных бактерий будет сдерживать микроорганизмы и таким образом предотвращать распространение инфекции.
По некоторым данным, NET способствуют патогенезу некоторых аутоиммунных заболеваний, при которых целевые антигены часто являются составляющими NET, включая ДНК, а также миелопероксидазу и протеиназу 3, как это наблюдается при системной красной волчанке и гранулематозе Вегенера [51].
Можно отметить и условно внеклеточный вариант умерщвления микроорганизмов нейтрофилами с помощью сети цитонем, которые представляют собой нитчатые тубуловезикулярные отростки живых нейтрофилов [52].
5. Нейтрофильные гранулоциты и системные воспалительные заболевания
Во время системных инфекций, приводящих к сепсису, тонко настроенные механизмы, которые регулируют последовательное рекрутирование нейтрофилов и моноцитов, становятся нерегулируемыми [53]. Клинически сепсис определяется инфекцией, сопровождающейся несколькими из следующих симптомов: лихорадкой, увеличением или уменьшением количества лейкоцитов, тахипноэ, отеком, гемодинамическими изменениями и высокими концентрациями хемокинов и С-реактивного белка в сыворотке [54, 55].
По мере обострения сепсиса развивается септический шок, приводящий к полиорганной недостаточности [55–57]. Кроме того, любая задержка иммунного ответа увеличивает смертность, а септический шок имеет самые высокие показатели смертности среди всех болезненных состояний инфекционной природы [58]. Хотя рекрутирование нейтрофилов является ключевым для защиты хозяина от инфекции, их избыточная мобилизация может привести к повреждению тканей организма.
В моделях эндотоксемии на людях и сепсиса на мышах высокие концентрации цитокинов и хемокинов, циркулирующих в плазме крови, нарушают процесс хемотаксиса нейтрофилов, активируя одновременно как нейтрофилы, так и эндотелий. Это также может привести к длительной иммуносупрессивной фазе. Например, действие высоких концентраций хемокинов плазмы на нейтрофилы приводит к снижению активности хемокиновых рецепторов у пациентов с тяжелой септической патологией [59].
Хотя и у людей, и у мышей наблюдаются сходные симптомы сепсиса, а механизмы, которые были объяснены на мышах, полезны для понимания сепсиса у людей, между экспериментальным и клиническим сепсисом существуют заметные различия. Во-первых, концентрации бактерий и бактериальных компонентов в кровообращении, а также их роль в прогрессировании заболевания отличаются у мышей и людей, поскольку грызуны гораздо более устойчивы к инфекциям по сравнению с людьми [60]. Кроме того, есть мнение, что критический компонент тяжелого сепсиса у людей — полиорганная недостаточность — не наблюдается у грызунов в полном объеме, потому что мыши, которые получают высокие дозы липополисахаридов, умирают до того, как у них могут развиться эти осложнения [61].
6. Пластичность нейтрофильных гранулоцитов
Все больше данных свидетельствует о наличии различных функциональных подгрупп нейтрофилов, которые ответственны за различные роли в защитно-приспособительных реакциях организма во время инфекций, воспалений и рака [62–66]. У мышей, инфицированных бактерией Staphylococcus aureus, устойчивой к метициллину (MRSA), наблюдали три отдельные популяции нейтрофилов [66]. Каждая из этих популяций обладала уникальными спектрами продукции цитокинов и хемокинов, а также способностью экспрессировать поверхностные TLR и CD49d/CD11b. Как правило, нейтрофилы мышей с умеренным проявлением системной воспалительной реакции имели провоспалительный фенотип (IL-12+CCL3+), в то время как нейтрофилы мышей с тяжелой формой синдрома системного воспалительного ответа — противовоспалительный (IL-10+CCL2+) [66]. Эти «провоспалительные» и «противовоспалительные» нейтрофилы могут регулировать направление иммунного ответа при инфекции путем поляризации макрофагов М1 или М2 соответственно [67]. Подобные фенотипы нейтрофилов наблюдались у мышей с опухолями [68]. У добровольцев, которым вводили липополисахариды, также идентифицированы разные популяции нейтрофилов по сравнению с людьми, не получавшими липополисахаридов [64, 69].
Однако в описанных выше случаях нельзя исключить, что нейтрофилы корректировали свои фенотипы в соответствии с инфекцией или стрессором и не были отдельными линиями. Действительно, нейтрофилы довольно пластичны и способны к фенотипическим изменениям. При хроническом воспалении нейтрофилы обнаруживают различный набор молекул адгезии и хемокиновых рецепторов [70]. Патогены также способны вызывать фенотипические изменения нейтрофилов. Например, при инфицировании мышей Trypanosoma cruzi нейтрофилы принимают противовоспалительный фенотип с продукцией IL-10, одновременно ингибируя продукцию интерферона-γ и пролиферацию Т-клеток [71]. При взаимодействии нейтрофилов с инвариантными натуральными киллерами (iNKT) CD1d-зависимым образом нейтрофильный противовоспалительный фенотип переходил в провоспалительный фенотип [72], что особенно интересно, поскольку клетки iNKT могут распознавать аутоантигены и бактериальные антигены и продуцировать различные цитокины [73, 74].
7. Нейтрофильные гранулоциты и адаптивный иммунитет
Нейтрофилы также модулируют важные компоненты адаптивного иммунного ответа и могут регулировать активность В- и Т-клеток [75]. Нейтрофилы продуцируют фактор, активирующий В-клетки (BAFF, также известный как стимулятор лимфоцитов В), и лиганд, индуцирующий пролиферацию (APRIL), которые необходимы для выживания В-клеток и их активации [76]. В селезенке активация нейтрофилов с помощью липополисахаридов приводит к образованию BAFF, APRIL и IL-21, которые воздействуют на В-клетки маргинальной зоны, ответственные за продукцию антител к Т-независимым антигенам [77].
Нейтрофилы могут служить в качестве иммуносупрессоров, ингибируя пролиферацию и активацию Т-клеток, вероятно, благодаря значительному количеству аргиназы 1, присутствующей в нейтрофильных азурофильных гранулах, и продукции активных форм кислорода [69, 61]. С другой стороны, нейтрофилы могут также функционировать как антигенпрезентирующие клетки. Во время стимуляции интерфероном-γ в нейтрофилах повышается уровень белков основного комплекса гистосовместимости II класса вместе с костимулирующими молекулами [78]. В результате нейтрофилы могут способствовать дифференцировке Th1 и Th17.
Таким образом, нейтрофилы можно рассматривать не только как профессиональные фагоциты, но и как клетки, способные выполнять значительный набор специализированных функций [79]. Они являются участниками и регуляторами многих процессов, таких как острое повреждение и репарация, рак [80], аутоиммунитет и хроническое воспаление [81]. Нейтрофилы также способствуют адаптивному иммунитету, облегчая развитие специфических адаптивных иммунных ответов или направляя последующий адаптивный иммунный ответ.
Активированные нейтрофилы способны продуцировать цитокины, хемокины и другие биологически активные соединения. Конечно, из-за значительной редукции трансляционного аппарата уровень такой продукции очень низкий, но если учесть, в каком количестве нейтрофилы скапливаются в очагах воспаления, не исключено, что такой синтез может иметь биологическое значение, при этом главным «оружием» нейтрофилов являются соединения, синтезированные в процессе гранулоцитогенеза в костном мозге. Гранулы нейтрофилов содержат широкий спектр биологически активных веществ (дефенсины, кателицидины, протеазы, лактоферрин, миелопероксидаза и др.), которые не только являются антимикробными соединениями, но и проявляют различные иммунорегуляторные свойства [82–86].
Об авторах
Галина Матвеевна Алешина
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Институт экспериментальной медицины»
Автор, ответственный за переписку.
Email: aleshina.gm@iemspb.ru
ORCID iD: 0000-0003-2886-7389
SPIN-код: 4479-0630
Scopus Author ID: 6603793844
ResearcherId: C-5020-2012
д-р биол. наук, доцент, заведующая лабораторией общей патологии отдела общей патологии и патологической физиологии
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Мечников И.И. Невосприимчивость в инфекционных заболеваниях. – СПб.: Издание К.Л. Риккера, 1903. [Metchnikoff E. Nevospriimchivost’ v infektsionnykh zabolevaniyakh. Saint Petersburg: K.L. Rikker; 1903. (In Russ.)]
- Пигаревский В.Е. Зернистые лейкоциты и их свойства. – М.: Медицина, 1978. [Pigarevsky VE. Zernistye leykotsity i ikh svoystva. Moscow: Meditsina; 1978. (In Russ.)]
- Klebanoff SJ, Clark RA. The neutrophil: function and clinical disorders. Amsterdam: Elsevier; 1978.
- Маянский А.Н., Маянский Д.Н. Очерки о нейтрофиле и макрофаге. – 2-е изд. – Новосибирск: Наука, 1989. [Mayanskii AN, Mayanskii DN. Ocherki o neytrofile i makrofage. 2nd ed. Novosibirsk: Nauka; 1989. (In Russ.)]
- Shah B, Burg N, Pillinger MH. Chapter — Neutrophils. In: Kelley and Firestein’s textbook of rheumatology (tenth edition). Ed. by G.S. Firestein, R.C. Budd, S.E. Gabriel, I.B. McInnes. Elsevier; 2017. P. 169–188.e3. https://doi.org/10.1016/B978-0-323-31696-5.00011-5.
- Lord BI, Bronchud MH, Owens S, et al. The kinetics of human granulopoiesis following treatment with granulocyte colonystimulating factor in vivo. Proc Natl Acad Sci U S A. 1989;86(23):9499–9503. https://doi.org/10.1073/pnas.86.23.9499.
- Bainton DF, Ullyot JL, Farquhar MG. The development of neutrophilic polymorphonuclear leukocytes in human bone marrow. J Exp Med. 1971;134(4):907–934. https://doi.org/10.1084/jem.134.4.907.
- Faurschou M, Borregaard N. Neutrophil granules and secretory vesicles in inflammation. Microbes Infect. 2003;5(14):1317–1327. https://doi.org/10.1016/j.micinf. 2003.09.008.
- Nauseef WM, McCormick S, Yi H. Roles of heme insertion and the mannose-6-phosphate receptor in processing of the human myeloid lysosomal enzyme, myeloperoxidase. Blood. 1992;80(10):2622–2633.
- Bainton DF, Farquhar MG. Origin of granules in polymorphonuclear leukocytes. Two types derived from opposite faces of the Golgi complex in developing granulocytes. J Cell Biol. 1966;28(2):277–301. https://doi.org/10.1083/jcb.28.2.277.
- Пигаревский В.Е. О секреторной активности полиморфноядерных лейкоцитов // Архив патологии. – 1982. – Т. 44. – № 5. – С. 3–12. [Pigarevsky VE. Secretory activity of polymorphonuclear leukocytes. Archives of pathology. 1982;44(5):3–12. (In Russ.)]
- Borregaard N, Lollike K, Kjeldsen L, et al. Human neutrophil granules and secretory vesicles. Eur J Haematol. 1993;51(4): 187–198. https://doi.org/10.1111/j.1600-0609.1993.tb00629.x.
- Owen CA, Campbell EJ. The cell biology of leukocyte-mediated proteolysis. J Leukoc Biol. 1999;65(2):137–150. https://doi.org/10.1002/jlb.65.2.137.
- Borregaard N, Sørensen O, Theilgaard-Mönch K. Neutrophil granules: A library of innate immunity proteins. TRENDS in Immunology. 2007;28(8):340–345. https://doi.org/10.1016/j.it.2007.06.002.
- Weiss L. Transmural cellular passage in vascular sinuses of rat bone marrow. Blood. 1970;36(2):189–208.
- Murray J, Barbara JA, Dunkley SA, et al. Regulation of neutrophil apoptosis by tumor necrosis factor-alpha: requirement for TNFR55 and TNFR75 for induction of apoptosis in vitro. Blood. 1997;90(7):2772–2783.
- Tortorella C, Piazzolla G, Spaccavento F, et al. Spontaneous and Fas-induced apoptotic cell death in aged neutrophils. J Clin Immunol. 1998;18(5):321–329. https://doi.org/10.1023/a:1023286831246.
- Martin C, Burdon PC, Bridger G, et al. Chemokines acting via CXCR2 and CXCR4 control the release of neutrophils from the bone marrow and their return following senescence. Immunity. 2003;19(4):583–593. https://doi.org/10.1016/s1074-7613(03)00263-2.
- Uchida T, Nemoto T, Yui T, et al. Use of technetium-99m as a radioactive label to study migratory patterns of leukocytes. J Nucl Med. 1979;20(11):1197–1200.
- Kubes P. The enigmatic neutrophil: what we do not know. Cell Tissue Res. 2018;371:399–406. https://doi.org/10.1007/s00441-018-2790-5.
- Landzberg M, Doering H, Aboodi GM, et al. Quantifying oral inflammatory load: oral neutrophil counts in periodontal health and disease. J Periodontal Res. 2015;50(3):330–336. https://doi.org/10.1111/jre.12211.
- Casanova-Acebes M, Nicolás-Ávila JA, Li JL, et al. Neutrophils instruct homeostatic and pathological states in naive tissues. J Exp Med. 2018;215(11):2778–2795. https://doi.org/10.1084/jem.20181468.
- Kubes P, Hunter J, Granger DN. Ischemia/reperfusion-induced feline intestinal dysfunction: importance of granulocyte recruitment. Gastroenterology. 1992;103(3):807–812. https://doi.org/10.1016/0016-5085(92)90010-v.
- Borregaard N. Neutrophils, from marrow to microbes. Immunity. 2010;33(5):657–670. https://doi.org/10.1016/j.immuni. 2010.11.011.
- Bruehl RE, Moore KL, Loran DE, et al. Leukocyte activation induces surface redistribution of P-selectin glycoprotein ligand-1. J Leukoc Biol. 1997;61(4):489–499. https://doi.org/10.1002/jlb.61.4.489.
- Steegmaier M, Borges E, Berger J, et al. The E-selectin-ligand ESL-1 is located in the Golgi as well as on microvilli on the cell surface. J Cell Sci. 1997;110(Pt6):687–694.
- Buscher K, Riese SB, Shakibaei M, et al. The transmembrane domains of L-selectin and CD44 regulate receptor cell surface positioning and leukocyte adhesion under flow. J Biol Chem. 2010;285(18):13490–13497. https://doi.org/10.1074/jbc.M110.102640.
- Filippi MD. Neutrophil transendothelial migration: updates and new perspectives. Blood. 2019;133(20):2149–2158. https://doi.org/10.1182/blood-2018-12-844605.
- Dale DC, Boxer L, Liles WC. The phagocytes: neutrophils and monocytes. Blood. 2008;112(4):935–945. https://doi.org/10.1182/blood-2007-12-077917.
- Kruger P, Saffarzadeh M, Weber ANR, et al. Neutrophils: between host defence, immune modulation, and tissue injury. PLoS Pathog. 2015;11(3):e1004651. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1004651.
- Segal AW. How neutrophils kill microbes. Annu Rev Immunol. 2005;23:197–223. https://doi.org/10.1146/annurev.immunol.23.021704.115653.
- Buvelot H, Posfay-Barbe KM, Linder P, et al. Staphylococcus aureus, phagocyte NADPH oxidase and chronic granulomatous disease. FEMS Microbiol Rev. 2017;41(2):139–157. https://doi.org/10.1093/femsre/fuw042.
- Kobayashi SD, Braughton KR, Whitney AR, et al. Bacterial pathogens modulate an apoptosis differentiation program in human neutrophils. Proc Natl Acad Sci USA. 2003;100(19):10948–10953. https://doi.org/10.1073/pnas.1833375100.
- Kobayashi SD, Voyich JM, Braughton KR, DeLeo FR. Down-regulation of proinflammatory capacity during apoptosis in human polymorphonuclear leukocytes. J Immunol. 2003;170(6):3357–3368. https://doi.org/10.4049/jimmunol. 170.6.3357.
- Kobayashi SD, DeLeo FR. An apoptosis differentiation programme in human polymorphonuclear leucocytes. Biochem Soc Trans. 2004;32(Pt3):474–476. https://doi.org/10.1042/BST0320474.
- Пигаревский В.Е. Роль гранулоцитов и макрофагов в неспецифической резистентности организма (морфологические аспекты проблемы) // Морфофункциональные аспекты неспецифической резистентности и демиелинизирующих заболеваний. Клеточно-тканевые факторы неспецифической резистентности. – Л., 1981. – С. 3–17. [Pigarevsky VE. Rol’ granulotsitov i makrofagov v nespetsificheskoy rezistentnosti organizma (morfologicheskie aspekty problemy). In: Morfofunktsional’nye aspekty nespetsificheskoy rezistentnosti i demieliniziruyushchikh zabolevaniy. Kletochno-tkanevye faktory nespetsificheskoy rezistentnosti. Leningrad; 1981. P. 3–17. (In Russ.)]
- Долгушин И.И., Андреева Ю.С., Савочкина А.Ю. Нейтрофильные внеклеточные ловушки и методы оценки функционального статуса нейтрофилов. – М.: РАМН, 2009. [Dolgushin II, Andreeva YuS, Savochkina AYu. Neytrofil’nye vnekletochnye lovushki i metody otsenki funktsional’nogo statusa neytrofilov. Moscow: RAMN; 2009. (In Russ.)]
- Brinkmann V, Reichard U, Goosmann C, et al. Neutrophil extracellular traps kill bacteria. Science. 2004;303(5663):1532–1535. https://doi.org/10.1126/science.1092385.
- Fuchs TA, Abed U, Goosmann C, et al. Novel cell death program leads to neutrophil extracellular traps. J Cell Biol. 2007;176(2):231–241. https://doi.org/10.1083/jcb.200606027.
- Papayannopoulos V, Metzler KD, Hakkim A, Zychlinsky A. Neutrophil elastase and myeloperoxidase regulate the formation of neutrophil extracellular traps. J Cell Biol. 2010;191(3):677–691. https://doi.org/10.1083/jcb. 201006052.
- Metzler KD, Fuchs TA, Nauseef WM, et al. Myeloperoxidase is required for neutrophil extracellular trap formation: implications for innate immunity. Blood. 2011;117(3):953–959. https://doi.org/10.1182/blood-2010-06-290171.
- Hakkim A, Fuchs TA, Martinez NE, et al. Activation of the Raf-MEK-ERK pathway is required for neutrophil extracellular trap formation. Nat Chem Biol. 2011;7(2):75–77. https://doi.org/10.1038/nchembio.496.
- Bianchi M, Hakkim A, Brinkmann V, et al. Restoration of NET formation by gene therapy in CGD controls aspergillosis. Blood. 2009;114(13):2619–2622. https://doi.org/10.1182/blood-2009-05-221606.
- Nauseef WM, Borregaard N. Neutrophils at work. Nat Immunol. 2014;15(7):602–611. https://doi.org/10.1038/ni.2921.
- Haneke E. The Papillon-Lefevre syndrome: keratosis palmoplantaris with periodontopathy. Report of a case and review of the cases in the literature. Hum Genet. 1979;51(1):1–35. https://doi.org/10.1007/BF00278288.
- McDonald B, Urrutia R, Yipp BG, et al. Intravascular neutrophil extracellular traps capture bacteria from the bloodstream during sepsis. Cell Host Microbe. 2012;12(3):324–333. https://doi.org/10.1016/j.chom.2012.06.011.
- Urban CF, Reichard U, Brinkmann V, Zychlinsky A. Neutrophil extracellular traps capture and kill Candida albicans yeast and hyphal forms. Cell Microbiol. 2006;8:668–676. https://doi.org/10.1111/j.1462-5822.2005.00659.x.
- Jenne CN, Wong CH, Zemp FJ, et al. Neutrophils recruited to sites of infection protect from virus challenge by releasing neutrophil extracellular traps. Cell Host Microbe. 2013;13(2): 169–180. https://doi.org/10.1016/j.chom.2013.01.005.
- Saitoh T, Komano J, Saitoh Y, et al. Neutrophil extracellular traps mediate a host defense response to human immunodeficiency virus-1. Cell Host Microbe. 2012;12(1):109–116. https://doi.org/10.1016/j.chom.2012.05.015.
- Menegazzi R, Decleva E, Dri P. Killing by neutrophil extracellular traps: Fact or folklore? Blood. 2012;119(5):1214–1216. https://doi.org/10.1182/blood-2011-07-364604.
- Sangaletti S, Tripodo C, Chiodoni C, et al. Neutrophil extracellular traps mediate transfer of cytoplasmic neutrophil antigens to myeloid dendritic cells toward ANCA induction and associated autoimmunity. Blood. 2012;120(15):3007–3018. https://doi.org/10.1182/blood-2012-03-416156.
- Galkina SI, Fedorova NV, Golenkina EA, et al. Cytonemes versus neutrophil extracellular traps in the fight of neutrophils with microbes. Int J Mol Sci. 2020;21(2):586. https://doi.org/10.3390/ijms21020586.
- Reddy RC, Standiford TJ. Effects of sepsis on neutrophil chemotaxis. Curr Opin Hematol. 2010;17(1):18–24. https://doi.org/10.1097/MOH.0b013e32833338f3.
- Козлов В.К. Сепсис: этиология, иммунопатогенез, концепция современной иммунотерапии. – СПб.: Диалект, 2008. [Kozlov VK. Sepsis: etiologiya, immunopatogenez, kontseptsiya sovremennoy immunoterapii. Saint Petersburg: Dialekt; 2008. (In Russ.)]
- Van der Poll T, van de Veerdonk FL, Scicluna BP, Netea MG. The immunopathology of sepsis and potential therapeutic targets. Nat Rev Immunol. 2017;17(7):407–420. https://doi.org/10.1038/nri.2017.36.
- Гусев Е.Ю., Черешнев В.А., Юрченко Л.Н. Системное воспаление с позиции теории типового патологического процесса // Цитокины и воспаление. – 2007. – Т. 6. – № 4. – С. 9–21. [Gusev EY, Chereshnev VA, Yurchenko LN. Systemic inflammation from the standpoint of the theory of a typical pathological process. Cytokines and inflammation. 2007;6(4):9–21. (In Russ.)]
- Черешнев В.А., Гусев Е.Ю. Иммунологические и патофизиологические механизмы системного воспаления // Медицинская иммунология. – 2012. – Т. 14. – № 1-2. – С. 9–20. [Chereshnev VA, Gusev EYu. Immunological and pathophysiological mechanisms of systemic inflammation. Medical immunology. 2012;14(1-2):9–20. (In Russ.)]. https://doi.org/10.15789/1563-0625-2012-1-2-9-20.
- Daviaud F, Grimaldi D, Dechartres A, et al. Timing and causes of death in septic shock. Ann Intensive Care. 2015;5(1):16. https://doi.org/10.1186/s13613-015-0058-8.
- Cummings CJ, Martin TR, Frevert CW, et al. Expression and function of the chemokine receptors CXCR1 and CXCR2 in sepsis. J Immunol. 1999;162(4):2341–2346.
- Fink MP. Animal models of sepsis. Virulence. 2014;5(1): 143–153. https://doi.org/10.4161/viru.26083.
- Liew PX, Kubes P. The neutrophil’s role during health and disease. Physiol Rev. 2019;99(2):1223–1248. https://doi.org/10.1152/physrev.00012.2018.
- Нестерова И.В., Колесникова Н.В., Чудилова Г.А. и др. Нейтрофильные гранулоциты: новый взгляд на «старых игроков» на иммунологическом поле // Иммунология. – 2015. – Т. 36. – № 4. – С. 257–265. [Nesterova IV, Kolesnikova NV, Chudilova GA, et al. Neutrophilic granulocytes: a new look at the “old players” in the immunological field. Immunology. 2015;36(4):257–265. (In Russ.)]
- Нестерова И.В., Колесникова Н.В., Чудилова Г.А. и др. Новый взгляд на нейтрофильные гранулоциты: переосмысление старых догм. Часть 2 // Инфекция и иммунитет. – 2018. – Т. 8. – № 1. – С. 7–18. [Nesterova IV, Kolesnikova NV, Chudilova GA, et al. Neutrophilic granulocytes: a new look at the “old players” on the immunological field. Part 2. Infection and immunity. 2018;8(1):7–18. (In Russ.)]. https://doi.org/10.15789/2220-7619-2018-1-7-18.
- Kamp VM, Pillay J, Lammers JW, et al. Human suppressive neutrophils CD16bright/CD62Ldim exhibit decreased adhesion. J Leukoc Biol. 2012;92(5):1011–1020. https://doi.org/10.1189/jlb.0612273.
- Pillay J, Ramakers BP, Kamp VM, et al. Functional heterogeneity and differential priming of circulating neutrophils in human experimental endotoxemia. J Leukoc Biol. 2010;88(1):211–220. https://doi.org/10.1189/jlb.1209793.
- Tsuda Y, Takahashi H, Kobayashi M, et al. Three different neutrophil subsets exhibited in mice with different susceptibilities to infection by methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Immunity. 2004;21(2):215–226. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2004.07.006.
- Sica A, Mantovani A. Macrophage plasticity and polarization: in vivo veritas. J Clin Invest. 2012;122(3):787–795. https://doi.org/10.1172/JCI59643.
- Fridlender ZG, Sun J, Kim S, et al. Polarization of tumor-associated neutrophil phenotype by TGF-beta: “N1” versus “N2” TAN. Cancer Cell. 2009;16(3):183–194. https://doi.org/10.1016/j.ccr.2009.06.017.
- Pillay J, Kamp VM, van Hoffen E, et al. A subset of neutrophils in human systemic inflammation inhibits T cell responses through Mac-1. J Clin Invest. 2012;122(1): 327–336. https://doi.org/10.1172/JCI57990.
- Johnston B, Burns AR, Suematsu M, et al. Chronic inflammation upregulates chemokine receptors and induces neutrophil migration to monocyte chemoattractant protein-1. J Clin Invest. 1999;103(9):1269–1276. https://doi.org/10.1172/JCI5208.
- Tosello Boari J, Amezcua Vesely MC, Bermejo DA, et al. IL-17RA signaling reduces inflammation and mortality during Trypanosoma cruzi infection by recruiting suppressive IL-10-producing neutrophils. PLoS Pathog. 2012;8(4):e1002658. https://doi.org/10.1371/journal.ppat. 1002658.
- De Santo C, Arscott R, Booth S, et al. Invariant NKT cells modulate the suppressive activity of IL-10-secreting neutrophils differentiated with serum amyloid A. Nat Immunol. 2010;11(11):1039–1046. https://doi.org/10.1038/ni.1942.
- Lee WY, Moriarty TJ, Wong CH, et al. An intravascular immune response to Borrelia burgdorferi involves Kupffer cells and iNKT cells. Nat Immunol. 2010;1(4):295–302. https://doi.org/10.1038/ni.1855.
- Liew PX, Lee WY, Kubes P. iNKT cells orchestrate a switch from inflammation to resolution of sterile liver injury. Immunity. 2017;47(4):752–765.e5. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2017.09.016.
- Долгушин И.И. Взаимодействие нейтрофилов с иммунокомпетентными клетками // Моделирование и клиническая характеристика фагоцитарных реакций: сб. науч. трудов / под ред. А.Н. Маянского. – Горький, 1989. – С. 74–81. [Dolgushin II. Vzaimodeystvie neytrofilov s immunokompetentnymi kletkami. In: Modelirovanie i klinicheskaya kharakteristika fagotsitarnykh reaktsiy. Ed. by A.N. Mayanskii. Gor’kiy; 1989. P. 74–81. (In Russ.)]
- Scapini P, Bazzoni F, Cassatella MA. Regulation of B-cell-activating factor (BAFF)/B lymphocyte stimulator (BLyS) expression in human neutrophils. Immunol Lett. 2008;116(1):1–6. https://doi.org/10.1016/j.imlet.2007.11.009.
- Puga I, Cols M, Barra CM, et al. B cell-helper neutrophils stimulate the diversification and production of immunoglobulin in the marginal zone of the spleen. Nat Immunol. 2011;13(2):170–180. https://doi.org/10.1038/ni.2194.
- Abi Abdallah DS, Egan CE, Butcher BA, Denkers EY. Mouse neutrophils are professional antigen-presenting cells programmed to instruct Th1 and Th17 T-cell differentiation. Int Immunol. 2011;23(5):317–326. https://doi.org/10.1093/intimm/dxr007.
- Долгушин И.И., Мезенцева Е.А., Савочкина А.Ю., Кузнецова Е.К. Нейтрофил как «многофункциональное устройство» иммунной системы // Инфекция и иммунитет. – 2019. – Т. 9. – № 1. – С. 9–38. [Dolgushin II, Mezentseva EA, Savochkina AYu, Kuznetsova EK. Neutrophil as a multifunctional relay in immune system. Infection and immunity. 2019;9(1):9–38. (In Russ.)]. https://doi.org/10.15789/2220-7619-2019-1-9-38.
- Treffers LW, Hiemstra IH, Kuijpers TW, et al. Neutrophils in cancer. Immunol Rev. 2016;273(1):312–328. https://doi.org/10.1111/imr.12444.
- Soehnlein O, Steffens S, Hidalgo A, Weber C. Neutrophils as protagonists and targets in chronic inflammation. Nat Rev Immunol. 2017;17(4):248–261. https://doi.org/10.1038/nri.2017.10.
- Кокряков В.Н., Алешина Г.М., Шамова О.В., и др. Современная концепция об антимикробных пептидах как молекулярных факторах иммунитета // Медицинский академический журнал. – 2010. – Т. 10. – № 4. – С. 149–160. [Kokryakov VN, Aleshina GM, Shamova OV, et al. Modern concept of antimicrobial peptides as molecular factors of the immunity. Medical Academic Journal. 2010;10(4):149–160. (In Russ.)]
- Шамова О.В., Орлов Д.С., Кокряков В.Н., Корнева Е.А. Антимикробные пептиды в реализации различных защитных функций организма // Медицинский академический журнал. – 2013. – Т. 13. – № 3. – С. 42–52. [Shamova OV, Orlov DS, Kokryakov VN, Kornerva EA. Antimicrobial peptides in the reaization of varied host defense reactions. Medical Academic Journal. 2013;13(3):42–52. (In Russ.)]
- Алешина Г.М. Лактоферрин — эндогенный регулятор защитных функций организма // Медицинский академический журнал. – 2019. – Т. 19, № 1. – С. 35-44. [Aleshina GM. Lactoferrin — an endogenous regulator of the protective functions of the organism. Medical Academic Journal. 2019;19(1): 35–44. (In Russ.)]. https://doi.org/10.17816/MAJ19135-44.
- Елизарова А.Ю., Костевич В.А., Войнова И.В., Соколов А.В. Лактоферрин как перспективное средство в терапии метаболического синдрома: от молекулярных механизмов до клинических испытаний // Медицинский академический журнал. – 2019. – Т. 19. – № 1. – С. 45–64. [Elizarova AYu, Kostevich VA, Voynova IV, Sokolov AV. Lactoferrin as a promising remedy for metabolic syndrome therapy: from molecular mechanisms to clinical trials. Medical Academic Journal. 2019;19(1):45–64. (In Russ.)]. https://doi.org/10.17816/MAJ19145-64.
- Arnhold J. The dual role of myeloperoxidase in immune response. Int J Mol Sci. 2020;21(21):8057. https://doi.org/10.3390/ijms21218057.
Дополнительные файлы
