СРАВНИТЕЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ ОСНОВНЫХ ФАКТОРОВ ПАТОГЕНЕЗА ВОСПАЛИТЕЛЬНЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ КИШЕЧНИКА В МОДЕЛЯХ IN VITRO и IN VIVO
- Авторы: Салль Т.С.1, Литвинова Е.А.2, Аржанова Е.Л.3, Кашина Т.А.4, Воронкина И.В.1, Кирик О.В.1, Ситкин С.И.5,6, Вахитов Т.Я.1
-
Учреждения:
- ФГБНУ "Институт экспериментальной медицины"
- Новосибирский государственный технический университет
- Новосибирский государственный университет
- ФГАОУ ВО Санкт-Петербургский политехнический университет Петра Великого
- ФГБУ "Национальный медицинский исследовательский центр имени В. А. Алмазова"
- ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова»
- Раздел: Оригинальные исследования
- Статья опубликована: 17.06.2025
- URL: https://journals.eco-vector.com/MAJ/article/view/630556
- DOI: https://doi.org/10.17816/MAJ630556
- ID: 630556
Цитировать
Полный текст



Аннотация
Актуальность. Для воспалительных заболеваний кишечника (ВЗК) характерно наличие воспаления в слизистой оболочке кишечника и повышенная проницаемость кишечного барьера. При изучении биологического действия препаратов важно, чтобы используемые при этом экспериментальные модели адекватно воспроизводили основные факторы патогенеза заболевания.
Целью исследования явилось сравнение показателей проницаемости кишечного эпителиального барьера и воспалительного процесса в моделях ВЗК: на клетках Caco-2, стимулированных липополисахаридами (ЛПС), и на мышах с нокаутом гена муцина 2 (Muc2-/-).
Материалы и методы исследования. Для создания модели ВЗК in vitro клетки Caco-2 культивировали в присутствии ЛПС в концентрациях 0,1 – 100 мкг/мл, оценивали его влияние на трансэпителиальное электрическое сопротивление клеток, проницаемость монослоя, экспрессию генов плотных контактов (ZO-1, Claudin-1) и провоспалительных цитокинов – интерлейкина (IL)-8, TNF-α, IL-1β, секрецию клетками IL-8. В качестве модели ВЗК in vivo использовали мышей с нокаутом гена муцин 2 (Muc2-/-). Проницаемость кишечника определяли по концентрации флуоресцеин-изотиоцианат-декстрана в крови после его внутрижелудочного введения, проводили гистологический анализ образцов толстой кишки, и оценивали в них экспрессию генов TNF-α, IL-1β, IL-10 и содержание IL-1β и IL-10.
Результаты. В экспериментах in vitro на клетках Caco-2 ЛПС 10 мкг/мл на 57% снижал электрическое сопротивление монослоя клеток, на 38% повышал проницаемость клеточного монослоя для флуоресцеин-изотиоцианат-декстрана. При этом ЛПС в 2,8 и 2,3 раза увеличивал экспрессию IL-8 и TNF-α, на 54 и 53% снижал экспрессию ZO-1 и Claudin-1, и в 27 раз увеличивал секрецию клетками IL-8 по сравнению с контролем. В экспериментах in vivo показано, что проницаемость кишечника Muc2-/- мышей была в 5,8 раз выше, экспрессия IL-1β и TNF-α в 9,9 и 6,8 раза выше; экспрессия IL-10 у мышей Muc2-/- на 71% ниже, и содержание IL-1β и IL-10 в кишке было на 94% выше и 44% ниже по сравнению со здоровыми мышами.
Заключение. Изученные in vitro и in vivo модели ВЗК характеризуются схожей динамикой в показателях кишечной проницаемости и воспалительного ответа. Эти модели адекватно воспроизводят соответствующие факторы патогенеза заболевания и дополняют друг друга.
Полный текст

Об авторах
Татьяна Сергеевна Салль
ФГБНУ "Институт экспериментальной медицины"
Автор, ответственный за переписку.
Email: miss_taty@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5890-5641
SPIN-код: 4172-6277
Scopus Author ID: 57194050387
Научный сотрудник отдела биохимии
Россия, Россия, 197022, Санкт-Петербург, улица Академика Павлова, д. 12Екатерина Анатольевна Литвинова
Новосибирский государственный технический университет
Email: dimkit@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-6398-7154
SPIN-код: 2995-8611
Scopus Author ID: 7005626124
Канд. биол. наук, научный сотрудник
Россия, Россия, 630073, Новосибирск, проспект Карла Маркса, д. 20Елена Львовна Аржанова
Новосибирский государственный университет
Email: e.arzhanova@g.nsu.ru
ORCID iD: 0009-0006-1066-1867
Scopus Author ID: 58569546100
студентка
Россия, Россия, 630090, Новосибирск, ул. Пирогова, д. 1Татьяна Андреевна Кашина
ФГАОУ ВО Санкт-Петербургский политехнический университет Петра Великого
Email: tat.kashina@list.ru
ORCID iD: 0000-0002-7314-8298
SPIN-код: 4713-4128
Студентка
Россия, Россия, 195251, Санкт-Петербург, ул. Политехническая, д. 29 литера БИрина Владимировна Воронкина
ФГБНУ "Институт экспериментальной медицины"
Email: voronirina@list.ru
ORCID iD: 0000-0003-0078-4442
SPIN-код: 2336-4158
Scopus Author ID: 6602535489
Канд. биол. наук, старший научный сотрудник отдела биохимии
Россия, Россия, 197022, Санкт-Петербург, улица Академика Павлова, д. 12Ольга Викторовна Кирик
ФГБНУ "Институт экспериментальной медицины"
Email: olga_kirik@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-6113-3948
SPIN-код: 5725-8742
Scopus Author ID: 27171304100
Канд. биол. наук, старший научный сотрудник отдела общей и частной морфологии
Россия, Россия, 197022, Санкт-Петербург, улица Академика Павлова, д. 12Станислав Игоревич Ситкин
ФГБУ "Национальный медицинский исследовательский центр имени В. А. Алмазова";ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова»
Email: sitkins@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-0331-0963
SPIN-код: 3961-8815
Scopus Author ID: 6603071466
Канд. мед. наук, заведующий научно-исследовательской группой эпигенетики и метогеномики в перинатологии и педиатрии; доцент кафедры пропедевтики внутренних болезней, гастроэнтерологии и диетологии
Россия, Россия, 197341, Санкт-Петербург, ул. Аккуратова, д. 2; Россия, 195067, Санкт-Петербург, Пискарёвский проспект, д. 47Тимур Яшэрович Вахитов
ФГБНУ "Институт экспериментальной медицины"
Email: tim-vakhitov@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-8221-6910
SPIN-код: 7298-2571
Scopus Author ID: 55406626900
Д-р биол. наук, главный научный сотрудник научной группы «Метаболомика неинфекционных заболеваний»
Россия, Россия, 197022, Санкт-Петербург, улица Академика Павлова, д. 12Список литературы
- Вахитов Т.Я., Кононова С.В., Демьянова Е.В. и др. Метаболомный профиль сыворотки крови у пациентов с язвенным колитом: патофизиологическая роль, диагностическое и терапевтическое значение // Вопросы детской диетологии. 2023. Т. 21, № 5. С. 5–15. doi: 10.20953/1727-5784-2023-5-5-15
- Kang Y., Park H., Choe B.H., Kang B. The Role and Function of Mucins and Its Relationship to Inflammatory Bowel Disease // Front Med (Lausanne). 2022. Vol. 9. P. 848344. doi: 10.3389/fmed.2022.848344
- Ситкин С.И., Вахитов Т.Я., Демьянова Е.В. Микробиом, дисбиоз толстой кишки и воспалительные заболевания кишечника: когда функция важнее таксономии // Альманах клинической медицины. 2018. Т. 46, № 5. С. 396–425. doi: 10.18786/2072-0505-2018-46-5-396-425
- Stephens M., von der Weid P.Y. Lipopolysaccharides modulate intestinal epithelial permeability and inflammation in a species-specific manner // Gut Microbes. 2020. Vol. 11, No. 3. P. 421–432. doi: 10.1080/19490976.2019.1629235
- Vanuytsel T., Tack J., Farre R. The Role of Intestinal Permeability in Gastrointestinal Disorders and Current Methods of Evaluation // Front Nutr. 2021. Vol. 8. P. 717925. doi: 10.3389/fnut.2021.717925
- Lee M., Chang E.B. Inflammatory Bowel Diseases (IBD) and the Microbiome-Searching the Crime Scene for Clues // Gastroenterology. 2021. Vol. 160, No. 2. P. 524-537. doi: 10.1053/j.gastro.2020.09.056
- Edelblum K.L., Turner J.R. The tight junction in inflammatory disease: communication breakdown // Curr Opin Pharmacol. 2009. Vol. 9, No. 6. P. 715-20. doi: 10.1016/j.coph.2009.06.022
- Song X., Wen H., Zuo L. et al. Epac-2 ameliorates spontaneous colitis in Il-10−/− mice by protecting the intestinal barrier and suppressing NF-κB/MAPK signaling // J Cell Mol Med. 2022. Vol. 26. P. 216–227. doi: 10.1111/jcmm.17077
- Chelakkot C., Ghim J., Ryu S.H. Mechanisms regulating intestinal barrier integrity and its pathological implications // Exp Mol Med. 2018. Vol. 50. P. 1–9 doi: 10.1038/s12276-018-0126-x
- Lea T. Epithelial Cell Models; General Introduction. In: The Impact of Food Bioactives on Health: in vitro and ex vivo models. Ed. by Verhoeckx K, Cotter P, López-Expósito I, et al. Cham (CH): Springer; 2015. Chapter 9.
- Dubashynskaya N.V., Bokatyi A.N., Sall T.S. et al. Cyanocobalamin-Modified Colistin-Hyaluronan Conjugates: Synthesis and Bioactivity // Int J Mol Sci. 2023. Vol. 24, No. 14. P. 11550. doi: 10.3390/ijms241411550
- Harnik S., Ungar B., Loebstein R., Ben-Horin S. A Gastroenterologist's guide to drug interactions of small molecules for inflammatory bowel disease // United European Gastroenterol J. 2024. doi: 10.1002/ueg2.12559
- Ferruzza S., Rossi C., Scarino M.L., Sambuy Y. A protocol for in situ enzyme assays to assess the differentiation of human intestinal Caco-2 cells // Toxicol In Vitro. 2012. Vol. 26, No. 8. P. 1247-51. doi: 10.1016/j.tiv.2011.11.007
- Bednarek R. In Vitro Methods for Measuring the Permeability of Cell Monolayers // Methods and Protocols. 2022. Vol. 5, No. 1. P. 17. doi: 10.3390/mps5010017
- Joshi A., Soni A., Acharya S. In vitro models and ex vivo systems used in inflammatory bowel disease // In vitro models. 2022. Vol. 1. P. 213–227. doi: 10.1007/s44164-022-00017-w
- Baydi Z., Limami Y., Khalki L. et al. An Update of Research Animal Models of Inflammatory Bowel Disease // ScientificWorldJournal. 2021. Vol. 2021. P. 7479540. doi: 10.1155/2021/7479540
- Valatas V., Bamias G., Kolios G. Experimental colitis models: Insights into the pathogenesis of inflammatory bowel disease and translational issues // Eur J Pharmacol. 2015. Vol. 759. P. 253-64. doi: 10.1016/j.ejphar.2015.03.017
- Theile M., Wiora L., Russ, D. et al. A Simple Approach to Perform TEER Measurements Using a Self-Made Volt-Amperemeter with Programmable Output Frequency // J. Vis. Exp. 2019. Vol. 152. P. e60087. doi: 10.3791/60087
- Hubatsch I., Ragnarsson E., Artursson P. Determination of drug permeability and prediction of drug absorption in Caco-2 monolayers // Nature Protocols. 2007. Vol. 2, No. 9. P. 2111–2119. doi: 10.1038/nprot.2007.303
- Shekhawat P., Bagul M., Edwankar D., Pokharkar V. Enhanced dissolution/caco-2 permeability, pharmacokinetic and pharmacodynamic performance of re-dispersible eprosartan mesylate nanopowder // Eur J Pharm Sci. 2019. Vol. 132. P. 72-85. doi: 10.1016/j.ejps.2019.02.021
- Kugathasan S., Saubermann L.J., Smith L. et al. Mucosal T-cell immunoregulation varies in early and late inflammatory bowel disease // Gut. 2007. Vol. 56, No. 12. P. 1696-705. doi: 10.1136/gut.2006.116467
- Garcia B.R.E.V., Makiyama E.N., Sampaio G.R. et al. Effects of Branched-Chain Amino Acids on the Inflammatory Response Induced by LPS in Caco-2 Cells // Metabolites. 2024. Vol. 14, No. 1. P. 76. doi: 10.3390/metabo14010076
- Chua K.J., Ling H., Hwang I.Y. et al. An Engineered Probiotic Produces a Type III Interferon IFNL1 and Reduces Inflammations in in vitro Inflammatory Bowel Disease Models // ACS Biomater Sci Eng. 2023. Vol. 9, No 9. P. 5123-5135. doi: 10.1021/acsbiomaterials.2c00202
- Kim S., Jang S.H., Kim M.J. et al. Hybrid nutraceutical of 2-ketoglutaric acid in improving inflammatory bowel disease: Role of prebiotics and TAK1 inhibitor // Biomed Pharmacother. 2024. Vol. 171. P. 116126. doi: 10.1016/j.biopha.2024.116126
- Sall T., Sitkin S., Lazebnik L., Vakhitov T. Effects of gut microbiota metabolites on the intestinal epithelial cell viability, barrier function, IL-8 secretion, and triglyceride accumulation in cell models of IBD and NAFLD // European Journal of Case Reports in Internal Medicine (EJCRIM). 2023. Vol. 10 (Sup 1). P. 222. doi: 10.12890/2023_V10Sup1
Дополнительные файлы
