Самостимуляция латерального гипоталамуса пороговой силой тока вызывает эмоциональное переедание в условиях пищевой самодепривации у сытых крыс: роль орексиновой и дофаминергической систем мозга

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Актуальность. Формы эмоционального переедания в виде импульсивного (нервная булимия) и компульсивного переедания лежат в основе нарушений пищевого поведения. Форма компульсивного переедания, в частности, включена в МКБ-10 в качестве нехимической формы зависимости.

Цель. Оценить участие орексиновой и дофаминовой систем мозга в условиях пищевой самодепривации, вызванной самостимуляцией латерального гипоталамуса.

Материалы и методы. Опыты выполнены на 23 крысах-самцах Вистар массой 200–250 г. Самцов крыс Вистар обучали нажимать на педаль в камере Скиннера для воспроизведения самораздражения латерального гипоталамуса. После обучения переходили на режим пищевой депривации: в камеру помещали кормушку с зернами подсолнуха, выключали ток и в течение 5 дней вырабатывали у крыс условный рефлекс на пищевом подкреплении. Реакция пищевой самодепривации, вызванной самостимуляцией гипоталамуса, проявлялась у этих крыс при силе стимулирующего тока на 10 % и выше пороговой для самостимуляции.

Результаты. «Голодные» животные нажимали на педаль для самостимуляции гипоталамуса и не подходили к кормушке. Пищевые реакции и нажатия педали наблюдались только при использовании низких значений силы тока, близких к пороговым для самостимуляции. Затем переходили на режим свободного доступа к пище, но животные, нажимая педаль для самостимуляции, продолжали многократно переключаться на пищу, съедая за 10 мин опыта до 60 зерен. В качестве веществ анализаторов использовали антагонист D2/D3-рецепторов дофамина сульпирид в дозах 5 и 20 мг/кг в/бр и антагонисты рецепторов орексина OX1RSB-408124 и ТСSOX2R 29 0,5 мг/мл, 20 мкл интраназально. После введения сульпирида при пищевой самодепривации у «сытых» крыс снижались и пищевое поведение, и подкрепляющие свойства электрической стимуляции. В то же время при введении SB-408124, но не ТСSOX2R 29, наблюдалось снижение числа съеденных зерен, а число нажатий педали для самостимуляции достоверно увеличивалось.

Заключение. Сделан вывод о селективности антагониста орексина А OX1RSB-408124 в отношении пищевого поведения при эмоциональных формах переедания по сравнению с антагонистом D2/D3-рецепторов дофамина сульпиридом.

Полный текст

АКТУАЛЬНОСТЬ

В последние годы изучению нехимических форм зависимости, в частности пищевой и игровой, принадлежит особая роль [1, 2, 8]. Формы эмоционального переедания (импульсивное переедание — соmpulsive overeating, булимия — bulimia nervosa, компульсивное переедание — binge eating disorder, ВED) лежат в основе нарушений пищевого поведения. Форма BED, в частности, включена в МКБ-10 в качестве нехимической формы зависимости [8]. Эпизоды активности, связанные с увеселительными встречами и принятием алкоголя, характеризуются компульсивным, не гомеостатическим потреблением необычно большого количества высококачественной пищи в короткий период времени. Даже если индивид не испытывает голод, пищу потребляет значительно быстрее, чем обычно, до ощущения перенасыщения. Как описано в DMS-IV-TR (American Psychiatric Association, 2000), эти эпизоды сопровождаются субъективным чувством потери контроля потребления пищи и связаны с чувством страдания, отвращения, депрессией и чувством вины за переедание. В связи с этим оно часто наблюдается в одиночестве. BED представляет собой особенность нервной булимии, когда за эпизодами безудержного пищевого потребления следует поведение, направленное на избегание увеличения веса. Интенсивные и постоянные эпизоды компульсивного поведения, направленного на быстрое потребление пищи, представляют собой типичные явления при BED. Критериями диагностики для BED в DSM-IV-TR являются эпизоды компульсивного переедания не менее двух дней в неделю в течение 6 мес. BED ассоциируется с медицинскими и психиатрическими показаниями, и от него страдает приблизительно 5 % взрослого населения, что в значительной степени способствует ожирению и связанными с ним формами патологии [10].

Для изучения BED в эксперименте у животных в настоящее время используется ряд методов тестирования потребления высококалорийной пищи и жидкости [8]. Существует три наиболее часто используемых модели: модель с повторным доступом к раствору сахара, когда формируется тип поведения, подобный эффектам наркотических средств; модель, где чередуются диета и стрессорное воздействие (футшок), что сопровождается подачей лакомства (вкусной пищей); наконец, модель, когда при ограниченном доступе к высокожирной пище развивается компульсивное переедание. Показано, что при компульсивном переедании у животных активируются системы подкрепления головного мозга, включая дофамин, опиоиды, холинергические системы, серотонин и ГАМК. При этом поведенческие и нейронные механизмы BED отличаются от простого, не компульсивного, потребления вкусной и высоко калорийной пищи [8].

BED можно вызвать и с помощью электрической стимуляции латерального гипоталамуса у сытых животных, которая вызывает как потребление пищи, так и реакцию самостимуляции [1, 13].

Посылкой для выполнения настоящей работы послужили данные об участии ряда нейрохимических систем, в частности, орексиновой системы мозга, в регуляции нейронных популяций латерального гипоталамуса для пищевого поведения и механизмов эмоционального подкрепления мозга [4, 6]. Показано, что орексины головного мозга и их рецепторы модулируют потребление пищи, возбуждение, реакции на стресс и употребление аддиктивных средств [3, 5]. Моделирование и изучение эффектов активации гипоталамуса с точки зрения воспроизведения нехимических зависимостей (в частности, компульсивного переедания) ранее не проводились.

Цель настоящей работы — доказать адекватность изучения механизмов BED на модели пищевой самодепривации [13] у сытых крыс. До настоящего времени реакция самодепривации, то есть самоизоляция животного от пищи при электрической самостимуляции мозга, изучалась исключительно у животных с пищевой депривацией [13].

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Опыты выполнены на 23 крысах-самцах Вистар массой 200–250 г. Животных содержали в условиях вивария в стандартных пластмассовых клетках при свободном доступе к пище (сухой брикетированный корм) и воде в условиях инвертированного света 8.00–20.00 при температуре 22 ± 2 °C. При пищевой депривации животных содержали в условиях специальной диеты — кормили ежедневно, ограничивая время доступа к пище четырьмя часами, при свободном доступе к воде. Соответственно, перед каждым тестированием выдерживалась пищевая депривация в течение 20 ч.

Все эксперименты были выполнены в соответствии с правилами, указанными в Директиве Европейского сообщества (2010/63/ЕС), Хельсинкской декларацией о гуманном отношении к животным (редакция 2000 г.), Женевской конвенцией «International Guiding Principals for Biomedical Involving Animals» (Geneva, 1990) и с одобрения комитета по этике Института экспериментальной медицины.

Крысам вживляли электроды с помощью стереотаксического прибора в латеральный гипоталамус согласно атласу [11] по следующим координатам: АР = 2,5 мм назад от брегмы, L = 2,0 мм от сагиттального шва, Н = 8,4 мм от поверхности черепа. Через 10 дней начинали поведенческие эксперименты. Дизайн каждого опыта включал следующие этапы:

  1. Для воспроизведения самораздражения мозга крыс обучали нажимать на педаль в камере Скиннера (35 × 12 × 21 см). Анализировали число нажатий педали и порог реакции самостимуляции (в мкА).
  2. Отбор крыс для эксперимента. Крыс, содержащихся при свободном доступе к пище («сытые» крысы), помещали в камеру с кормушкой, наполненной жареными подсолнечными семечками без кожуры, и включали электрическую стимуляцию латерального гипоталамуса в навязанном режиме. Для экспериментов отбирали крыс, которые обнюхивали кормушку, но не проявляли пищевой реакции при стимуляции гипоталамуса. Крыс, которые осуществляли поедание пищи в ответ на стимуляцию гипоталамуса, использовали в дальнейшем для изучения вызванного стимуляцией мозга пищевого поведения [1].
  3. Крыс, содержащихся в условиях специальной диеты с пищевой депривацией («голодные» крысы), помещали в камеру Скиннера с кормушкой, отключали педаль и в течение 5 дней регистрировали пищевое поведение по 20 мин. Электрической навязанной стимуляции в этом случае не производили.
  4. В камере Скиннера включали педаль, помещали кормушку и у «голодных» крыс проверяли наличие реакции самодепривации. Крысы нажимали на педаль и не подходили к кормушке при использовании надпороговых значений силы тока. Подходы к кормушке наблюдали только при пороговой силе тока для самостимуляции.
  5. На следующий день силу стимулирующего тока снижали до пороговой, включали педаль, помещали кормушку и у «голодных» крыс производили оценку реакции самостимуляции и пищевого поведения (число съеденных семечек и число подходов к кормушке) за 10 мин. Опыт повторяли 3 последовательных дня, после чего животных переводили на режим свободного доступа к пище.
  6. Эксперименты возобновляли через 2 дня после изменения режима кормления. В камере Скиннера включали педаль, помещали кормушку и производили оценку реакции самостимуляции пороговыми значениями силы тока и оценку пищевого поведения (число съеденных семечек и число подходов к кормушке) за 10 мин у «сытых» крыс. Опыт повторяли 3 последовательных дня.
  7. На следующий день за 20 мин до тестирования «сытым» крысам вводили исследуемые препараты. В камере Скиннера включали педаль, помещали кормушку и оценивали реакцию самостимуляции пороговыми значениями силы тока и пищевое поведение (число съеденных семечек и число подходов к кормушке) за 10 мин.

При отборе крыс (этап 2) электрическую стимуляцию латерального гипоталамуса производили в навязанном режиме (серии прямоугольных импульсов отрицательной полярности, длительностью 1 мс, с частотой 100 Гц, в течение 0,5 с, интервалы между сериями импульсов 0,5 с) 2 мин пороговыми и 2 мин надпороговыми значениями (50 % выше порога, мкА). Порог возникновения реакций нажатия на педаль при самостимуляции определяли сериями нарастающего и снижающего тока в автоматическом режиме (этап 1). Сначала в камере Скиннера подавался ток в навязанном режиме нарастающими порциями (priming stimulation) длительностью по 5 с до появления стойких нажатий педали. Затем повышали силу тока на 20 % от пороговых значений, когда наблюдали выраженную реакцию самостимуляции, и включали режим снижения силы тока (шаг 5 мкА длительностью стимуляции 5 с) до появления отказа от нажатий педали. Процедуру поиска пороговых значений силы тока повторяли 2 раза. При совпадении значений силы тока, полученных с использованием нарастающего и снижающего режимов, его считали порогом реакции самостимуляции.

В качестве фармакологических препаратов-анализаторов использовали антагонист D2/D3-рецепторов дофамина сульпирид (Sigma, США) в дозах 5 и 20 мг/кг в/бр, селективный антагонист рецепторов орексина OX1RSB-408124 (N-(6,8-Difluoro-2-methyl-4-quinolinyl)-N'-[4-(dimethylamino)phenyl]urea, cat. No. S2694) и селективный антагонист рецепторов орексина ТСSOX2R29 (Sigma, CША), разведенные в дистиллированной воде 0,5 мг/мл. Вводили растворы интраназально в дозе 20 мкл (по 10 мкл в каждую ноздрю). В качестве контроля использовали внутрибрюшинное и интраназальное введения 0,9 % раствора хлорида натрия (изотонический раствор). Учитывая хронический характер эксперимента (продолжительность опыта в среднем 30–40 дней для каждой крысы), фармакологические агенты вводили каждому животному повторно с интервалом не менее 5 дней между введениями таким образом, что одна прооперированная крыса получала одно и то же фармакологическое вещество 3–4 раза. Учитывали общее число опытов (их было 10–12 для каждого вещества), а не только число исследованных животных.

Для сравнения контрольной и экспериментальных групп использовали однофакторный дисперсионный анализ ANOVA, а также критерии попарных сравнений групп Стьюдента – Ньюмена – Кейлса и Данна. Из непараметрических критериев применяли критерий Краскела – Уоллиса для сравнения групп. Для оценки соответствия распределений случайных величин применяли критерий нормальности Колмогорова – Смирнова.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Было показано, что при стимуляции латерального гипоталамуса пороговой для активации поведения силой тока в камере с кормушкой в 38 % случаев «сытые» крысы проявляли пищевую консуматорную реакцию (поедание пищи). В остальных случаях животные проявляли ориентировочно-исследовательскую реакцию около кормушки (табл. 1). При использовании надпороговой силы тока (50 % выше порога, мкА) в камере с кормушкой «сытые» крысы проявляли пищевую консуматорную реакцию (поедание пищи) в 45 % случаев. Несмотря на повышение силы тока, в 55 % случаев животные продолжали проявлять только ориентировочно-исследовательскую реакцию около кормушки. Для снятия вопроса о том, что при самодепривации «сытых» крыс пищевая реакция наблюдается в результате прямой электрической стимуляции гипоталамуса, в эксперимент брали животных, которые при повторном тестировании проявляли только ориентировочно-исследовательскую реакцию около кормушки при стимуляции мозга.

 

Таблица 1. Влияние навязанной электрической стимуляции латерального гипоталамуса на ориентировочно-исследовательскую реакцию и пищевое поведение у «сытых» крыс

Параметры навязанной электростимуляции

Число опытов, где крысы не потребляли пищу

Число опытов, где крысы потребляли пищу

Общее количество опытов

Пороговая электростимуляция латерального гипоталамуса

68

43

111

Надпороговая электростимуляция латерального гипоталамуса (50 % выше порога)

62

49

111

 

На следующем этапе экспериментальных крыс с пищевой депривацией помещали в камеру Скиннера с кормушкой, отключали педаль и в течение 5 дней вырабатывали обстановочный условный рефлекс при пищевом подкреплении. В первые 3 дня выработки животные проявляли генерализованную активность, наблюдались попытки нажатия педали (до этого крыс тестировали на наличие реакции самостимуляции), локомоции, обнюхивания, стойки, стойки с упором на стенки камеры, груминг. На 4-й и 5-й дни тестирования наблюдалось исключительно пищевое консуматорное поведение. На следующем этапе эксперимента включали педаль и у «голодных» крыс проверяли наличие реакции пищевой самодепривации. При использовании надпороговых значений силы тока (10 % и выше порога для возникновения реакции самостимуляции) животные нажимали на педаль и не подходили к кормушке (табл. 2). При увеличении длительности эксперимента до 1,5 ч пищевого поведения не наблюдалось. Пищевая реакция с промежутками реакции самостимуляции наблюдалась только при использовании пороговых значений силы тока.

 

Таблица 2. Исследование реакции пищевой самодепривации, вызванной электрической самостимуляции латерального гипоталамуса у «голодных» крыс

Параметры электрической самостимуляции

Число нажатий на педаль за 10 мин

Число подходов к кормушке за 10 мин

Число съеденных семечек за 10 мин

Пороговая электростимуляции

115,5 ± 13,1

12,2 ± 4,5

49,1 ± 1,6

Надпорговая электростимуляция (10 % выше порога)

214 ± 35,6*

2,4 ± 0,5*

3,9 ± 0,6*

Надпорговая электростимуляция (20 % выше порога)

283 ± 41,3*

0**

0**

* p ≤ 0,05; ** p ≤ 0,01 — по сравнению с показателями пороговой электростимуляции.

 

После тестирования реакции самодепривации у крыс с пищевой депривацией ее исследовали у «сытых» животных. У животных производили оценку реакции самостимуляции пороговыми значениями силы тока и пищевого поведения (число съеденных семечек и число подходов к кормушке) за 10 мин. Опыт повторяли 3 последовательных дня. При повторении в следующие 3 дня эксперимента с использованием пороговых значений силы тока число подходов к кормушке, съеденных семечек и нажатий педали практически не менялось. На следующий день производили введение исследуемого вещества. Включали педаль, помещали кормушку и у «сытых» крыс оценивали реакцию самостимуляции пороговыми значениями силы тока и пищевое поведение (число съеденных семечек и число подходов к кормушке) за 10 мин. При введении антагониста D2/D3-рецепторов дофамина сульпирида в дозе 5 мг/кг в/бр число подходов к кормушке практически не снижалось, число съеденных семечек и число нажатий педали снижались не существенно (рис. 1). При введении антагониста D2/D3-рецепторов дофамина сульпирида в дозе 20 мг/кг число подходов к кормушке и число съеденных семечек снижались более чем в 2 раза, соответственно с 15,2 ± 2,4 до 7,1 ± 2,5 (p < 0,05) (рис. 2, 3), а число нажатий педали для самостимуляции — более чем в 3 раза, с 97,6 ± 10,6 до 31,3 ± 10,2 (p < 0,05). После интраназального введения селективного антагониста рецепторов орексина А OX1RSB-408124 (20 мкл, 0,5 мг/мл) наблюдали достоверное снижение числа съеденных семечек с 15,2 ± 2,4 до 14,8 ± 3,1 (p < 0,05), а число нажатий педали достоверно увеличивалось с 97,6 ± 10,6 до 138,2 ± 23,4 (p < 0,05). Число подходов к кормушке существенно не изменялось. После интраназального введения селективного антагониста рецепторов орексина ТСSOX2R29 (20 мкл, 0,5 мг/мл) не наблюдалось достоверных изменений числа съеденных семечек, подходов к кормушке и числа нажатий педали для самостимуляции (рис. 3).

 

Рис. 1. Влияние сульпирида, SB-408124 и TCSOX2 29 на число нажатий педали для самостимуляции в тесте самодепривации при пороговой силе тока у «сытых» крыс. * p ≤ 0,05 в сравнении с контрольной группой животных

 

Рис. 2. Влияние сульпирида, SB-408124 и TCSOX2 29 на число подходов к кормушке в тесте самодепривации при пороговой силе тока у «сытых» крыс. * p ≤ 0,05 — по сравнению с контрольной группой животных

 

Рис. 3. Влияние сульпирида, SB-408124 и TCSOX2 29 на количество съеденных зерен в тесте самодепривации при пороговой силе тока у «сытых» крыс. * p ≤ 0,05 — по сравнению с контрольной группой животных

 

ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

В работе показано, что у «голодных» крыс наблюдалась реакция пищевой самодепривации. Пищевая реакция с промежутками реакции самостимуляции отмечалась только при использовании пороговых значений силы тока. При надпороговых значениях силы тока (на 10 % и выше пороговых для самостимуляции) наблюдались исключительно нажатия педали и отсутствие подходов к кормушке (табл. 2). При увеличении длительности эксперимента до 1,5 ч пищевого поведения не наблюдалось. Это подтверждается данными литературы. Феномен пищевой самодепривации наблюдается, когда у «голодных» крыс имеются в наличии и пища, и педаль для самостимуляции [14]. Показано, что в условиях выбора самостимуляции гипоталамуса и пищи крысы всегда выбирают самостимуляцию, даже в течение длительных периодов пищевой депривации. В то же время у крыс с электродами вне области гипоталамуса эти эффекты не наблюдались [13]. В случае пищевой самодепривации, вызванной электрической самостимуляцией, активируются нейронные механизмы, которые связаны с потреблением пищи [14]. Самодепривация отражает простое предпочтение более сильного подкрепляющего действия самостимуляции, чем потребление пищи. Таким образом, пищевая самодепривация, вызванная реакцией самостимуляции, определяется, по-видимому, наибольшей силой подкрепляющего действия электрической стимуляции мозга, чем прием пищи. Это подтверждается данными о том, что пищевая самодепривация наблюдается при локализации электрода в латеральном гипоталамусе или вентральной области покрышки, зонах с наименьшими порогами для самостимуляции. Вывод о силе подкрепления также основан на данных о повышении и снижении пищевой самодепривации при изменении параметров самостимуляции мозга [13].

В настоящей работе мы впервые провели оценку реакции самодепривации у «сытых» крыс, используя пороговые значения силы тока (когда наблюдаются первые нажатия педали при самостимуляции латерального гипоталамуса). В данном случае моделируется ситуация у крыс, аналогичная описанию компульсивного переедания в DMS-IV-TR у людей. В опытах использовали животных, у которых прямая стимуляция гипоталамуса вызывает не пищевую, а только ориентировочную реакцию у кормушки. Таким образом, пищевая реакция сытых крыс при самодепривации наблюдается не в результате прямой электрической стимуляции гипоталамуса. Кормушка и педаль оказываются прагматически разными обстановочными сигналами, вызывающими общий активационный фон эмоционально-мотивационной сферы. Можно предположить, что это состояние подобно тому, которое возникает при развитии компульсивного переедания у человека. В работе показано, что у крыс, содержащихся при свободном доступе к пище, в процессе реализации реакции самостимуляции наблюдаются многократные побежки к кормушке и проявление пищевой консуматорной реакции. Как известно, ВЕD относится к нехимической зависимости и, по-видимому, формируется подобно другим видам аддиктивного поведения. Поэтому эксперимент с самодепривацией у сытых крыс повторяли каждый день в течение трех дней, что соответствует классическому протоколу выработки условной реакции предпочтения места. Показано, что при введении антагониста D2/D3-рецепторов дофамина сульпирида число подходов к кормушке, число съеденных семечек и число нажатий педали при самостимуляции дозозависимо снижались. Другими словами, в процессе реализации пищевой самодепривации снижались и пищевое поведение, и подкрепляющие свойства электрической стимуляции. В то же время при введении антагониста рецепторов орексина А OX1RSB-408124 наблюдалось снижение числа съеденных семечек, а число нажатий педали достоверно увеличивалось. При введении антагониста рецепторов орексина ТСSOX2R 29 (20 мкл, 0,5 мг/мл) не наблюдалось достоверных изменений числа съеденных семечек, подходов к кормушке и числа нажатий педали для самостимуляции (рис. 1–3). Таким образом, наши исследования показали специфичность антагониста рецепторов орексина А первого типа OX1RSB-408124 в отношении пищевых реакций при самодепривации у сытых крыс. Это во многом согласуется с данными литературы. Известно, что орексины и их рецепторы модулируют потребление пищи, возбуждение, стресс и употребление аддиктивных средств [3, 5]. Показано, что антагонисты OX1R GSK1059865 и OX1/OX2R SB-649868, но не антагонист TCSOX2R 29, снижали BED у самок крыс в дозах, которые не вызывают сон. В данной работе высоко предпочитаемую пищу (лакомство) подавали в режиме с тремя циклами ограничения питания и стрессорным воздействием [12].

В последние годы чрезмерное потребление пищи в условиях эмоциогенной среды (способствующей выработке компульсивного переедания) связывают с изменениями в мозге, подобными таковым, которые наблюдаются при формировании зависимости [9]. Показано, что у пациентов с нервной булимией и BED в стриатуме может изменяться содержание дофамина, аналогичное тому, которое наблюдается после принятия наркотика [9]. При этом высвобождение дофамина и его рецепторное связывание у животных при компульсивном переедании напоминает ответ на введение наркотика [15]. Орексигенные нейропептиды, которые синтезируются в латеральном гипоталамусе, могут модулировать активность нейронов вентральной области покрышки и вентрального стриатума. В частности, орексин-содержащие нейроны посылают проекции из латерального гипоталамуса к вентральной области покрышки, где OX1R играют ключевую роль в регуляции выброса дофамина мезолимбической системой мозга и таким образом вовлекаются в эффекты различных наркотиков и механизмов зависимости [7]. Кроме того, эпизоды компульсивного переедания могут контролироваться через влияние на процессы вознаграждения и подкрепления высоко предпочитаемой пищи (лакомства). В связи с этим нейроны латерального гипоталамуса, содержащие орексин, являются ключевым звеном для пищевого вознаграждения и активируются сигналами вознаграждения, такими как пища или наркотики. При этом стимуляция нейронов латерального гипоталамуса, содержащих орексин, приводит к возобновлению принятия наркотика у крыс [14].

ВЫВОДЫ

  1. Самостимуляция латерального гипоталамуса пороговой силой тока вызывает эмоциональное переедание в условиях пищевой самодепривации у сытых крыс.
  2. Антагонист орексина OX1RSB-408124, но не TCSOX2R 29, селективно снижает пищевое поведение по сравнению с действием антагониста D2/D3-рецепторов дофамина сульпирида в модели самодепривации, вызванной электрической самостимуляцией латерального гипоталамуса.
  3. Метод пищевой самодепривации, вызванной электрической самостимуляцией латерального гипоталамуса у сытых крыс, является перспективной и адекватной моделью для исследования элементов пищевой зависимости в эксперименте.

ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ

Вклад авторов. Все авторы подтверждают соответствие своего авторства международным критериям ICMJE (все авторы внесли существенный вклад в разработку концепции, проведение исследования и подготовку статьи, прочли и одобрили финальную версию перед публикацией).

Конфликт интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.

Источник финансирования. Авторы заявляют об отсутствии внешнего финансирования при проведении исследования.

×

Об авторах

Андрей Андреевич Лебедев

Институт экспериментальной медицины

Автор, ответственный за переписку.
Email: aalebedev-iem@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0003-0297-0425
SPIN-код: 4998-5204

д-р биол. наук, профессор, заведующий лабораторией

Россия, 199376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, д. 12

Юлия Николаевна Бессолова

Институт экспериментальной медицины

Email: juliannna_7@mail.ru

аспирант

Россия, 199376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, д. 12

Николай Сергеевич Ефимов

Институт экспериментальной медицины

Email: juliannna_7@mail.ru

аспирант

Россия, 199376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, д. 12

Евгений Рудольфович Бычков

Институт экспериментальной медицины

Email: bychkov@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-8911-6805
SPIN-код: 9408-0799

канд. мед. наук, заведующий лабораторией

Россия, 199376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, д. 12

Инесса Владимировна Карпова

Институт экспериментальной медицины

Email: inessa.karpova@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-8725-8095
SPIN-код: 9874-4082

канд. биол. наук, ст. н. с.

Россия, 199376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, д. 12

Илья Юрьевич Тиссен

Институт экспериментальной медицины

Email: iljatis@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-8710-9580
SPIN-код: 9971-3496

канд. биол. наук, ст. н. с.

Россия, 199376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, д. 12

Лейла Араслан кызы Магаррамова

Институт экспериментальной медицины

Email: lemag-90@yandex.ru

аспирант

Россия, 199376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, д. 12

Галина Павловна Косякова

Институт экспериментальной медицины

Email: galkos1@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-7211-7839

канд. биол. наук, н. с.

Россия, 199376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, д. 12

Владимир Васильевич Русановский

Институт экспериментальной медицины

Email: aalebedev-iem@rambler.ru

д-р мед. наук, профессор, н. с.

Россия, 199376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, д. 12

Петр Дмитриевич Шабанов

Институт экспериментальной медицины

Email: pdshabanov@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1464-1127
SPIN-код: 8974-7477

д-р мед. наук, профессор, заведующий отделом

Россия, 199376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, д. 12

Список литературы

  1. Лебедев А.А., Бессолова Ю.Н., Бычков Е.Р., Шабанов П.Д. Простой метод изучения орексигенных и подкрепляющих эффектов при электрической стимуляции латерального гипоталамуса у крыс // Вопросы наркологии. 2018. № 1. С. 39–47.
  2. Лебедев А.А., Хохлов П.П., Якушина Н.Д., и др. Фармакологический и биохимический анализ участия пептидной системы грелина в поведенческих проявлениях игровой зависимости у крыс // Экспериментальная и клиническая фармакология. 2019. Т. 82, № 6. С. 16–20.
  3. Тиссен И.Ю., Якушина Н.Д., Лебедев А.А., и др. Эффекты антагониста OX1R рецепторов орексина А SB-408124 на компульсивное поведение и уровень тревожности после витального стресса у крыс // Обзоры по клинической фармакологии и лекарственной терапии. 2018. Т. 16, № 1. С. 34–42. doi: 10.17816/RCF16134-42
  4. Шабанов П.Д., Лебедев А.А., Морозов В.И., Роик Р.О. Подкрепляющие свойства психоактивных веществ модулируются системой пептидов орексина головного мозга // Наркология. 2016. Т. 15, № 4. С. 27–33.
  5. Шабанов П.Д., Лебедев А.А., Морозов В.И., Азаренко С.В. Возможное взаимодействие рецепторов орексина и опиоидов в структурах расширенной миндалины при оценке подкрепляющих эффектов спонтанной и активированной самостимуляции латерального гипоталамуса // Вопросы наркологии. 2017. № 2–3. С. 155–168.
  6. Шабанов П.Д., Лебедев А.А., Якушина Н.Д., и др. Моделирование обсессивно-компульсивного и аддиктивного игрового поведения у крыс введением фенамина в тесте закапывания шариков // Наркология. 2017. Т. 16, № 1. С. 32–38.
  7. Cason A.M., Aston-Jones G. Role of orexin/hypocretin in conditioned sucrose-seeking in female rats // Neuropharmacology. 2014. Vol. 86. P. 97–102. doi: 10.1016/j.neuropharm.2014.07.007
  8. Cowin R.L., Avena N.M., Boggiano M.M. Feeding and reward: perspectives from three rat models of binge eating // Physiol Behav. 2011. Vol. 104. No. 1. P. 87–97. doi: 10.1016/j.physbeh.2011.04.041
  9. Gearhardt A.N., Yokum S., Orr P.T., et al. Neural Correlates of Food Addiction // Arch Gen Psychiatry. 2011. Vol. 68. No. 8. P. 808–816. doi: 10.1001/archgenpsychiatry.2011.32
  10. Yilmaz Z., Javaras K.N., Baker J.H., et al. Neural correlates of food addiction // J Adolesc Health. 2017. Vol. 61. No. 2. P. 140–146. doi: 10.1016/j.jadohealth.2017.04.001
  11. König K.P., Klippel A.A. A stereotaxic atlas of the forebrain and lower parts of the brain stem. Baltimore, 1963. 214 p.
  12. Piccoli L., Di Bonaventura M.V., Cifani C., et al. Role of orexin-1 receptor mechanisms on compulsive food consumption in a model of binge eating in female rats // Neuropsychopharmacology. 2012. Vol. 37. P. 1999–2011. doi: 10.1038/npp.2012.48
  13. Rossi R.R., Stutz R.M. Intensity generalization with positively reinforcing intracranial stimulation // Physiol Psychol. 1978. Vol. 6. No. 2. P. 204–208. doi: 10.1016/0031-9384(78)90126-9
  14. Stuber G.D., Wise R.A. Lateral hypothalamic circuits for feeding and reward // Nature. 2016. Vol. 2. P. 198–205. doi: 10.1038/nn.4220
  15. Wang G.J., Geliebter A., Volkow N.D., et al. Enhanced striatal dopamine release during food stimulation in binge eating disorder // Obesity. 2011. Vol. 19. No. 8. P. 1601–1608. doi: 10.1038/oby.2011.27

© Лебедев А.А., Бессолова Ю.Н., Ефимов Н.С., Бычков Е.Р., Карпова И.В., Тиссен И.Ю., Магаррамова Л.А., Косякова Г.П., Русановский В.В., Шабанов П.Д., 2021

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 65565 от 04.05.2016 г.