Сравнительный анализ стероидогенных эффектов тиенопиримидиновых производных с активностью частичных агонистов рецептора лютеинизирующего гормона
- Авторы: Деркач К.В.1, Сорокоумов В.Н.1,2, Шпаков А.О.1
-
Учреждения:
- Институт эволюционной физиологии и биохимии им. И.М. Сеченова Российской академии наук
- Санкт-Петербургский государственный университет
- Выпуск: Том 23, № 1 (2025)
- Страницы: 59-69
- Раздел: Оригинальные исследования
- Статья получена: 11.09.2024
- Статья одобрена: 28.11.2024
- Статья опубликована: 20.04.2025
- URL: https://journals.eco-vector.com/RCF/article/view/635924
- DOI: https://doi.org/10.17816/RCF635924
- EDN: https://elibrary.ru/YJIEMO
- ID: 635924
Цитировать
Аннотация
Обоснование. Препараты лютеинизирующего гормона и хорионического гонадотропина человека (ХГЧ) широко используются в медицине для коррекции репродуктивных расстройств, но характеризуются множеством побочных эффектов. В связи с этим осуществляется разработка низкомолекулярных аллостерических агонистов рецептора лютеинизирующего гормона, наиболее активными среди которых являются тиено[2,3-d]пиримидиновые производные.
Цель — изучить стимулирующие эффекты разработанного нами соединения TP03 на активность мембранной аденилатциклазы in vitro и на тестикулярный и овариальный стероидогенез in vivo в сравнении с таковыми Org43553, являющегося золотым стандартом низкомолекулярных агонистов рецептора лютеинизирующего гормона.
Материалы и методы. В условиях in vitro с применением [α-32P]-АТФ оценивали эффекты TP03 и Org43553 (10–8–10–3 М) на базовую и стимулированную ХГЧ (10–9 М) активность аденилатциклазы во фракциях мембран, выделенных из семенников и яичников крыс. В условиях in vivo оценивали эффекты TP03 и Org43553 (в двух дозах — 10 и 20 мг/кг, внутрибрюшинно) на уровень тестостерона в крови самцов крыс и на уровень прогестерона в крови неполовозрелых самок крыс, предварительно стимулированных препаратом Фоллимаг®, а также влияние совместного введения TP03 или Org43553 (10 мг/кг, внутрибрюшинно) с ХГЧ (10 МЕ/крыса, подкожно) на уровень тестостерона у самцов крыс. Уровни тестостерона и прогестерона определяли с помощью иммуноферментного анализа.
Результаты. Соединение TP03 было сопоставимым с Org43553 по способности стимулировать аденилатциклазу в тестикулярных и овариальных мембранах крыс. При введении самцам крыс оно дозозависимо стимулировало продукцию тестостерона, а при введении неполовозрелым самкам крыс повышало у них уровень прогестерона, не уступая по этим показателям Org43553. При совместном введении сравнительно низких доз TP03 и ХГЧ самцам крыс отмечали аддитивность их стимулирующих эффектов на уровень тестостерона, причем аддитивность была в большей степени выражена, чем в случае комбинации Org43553 и ХГЧ.
Заключение. Разработанное нами соединение TP03 по способности стимулировать тестикулярный и овариальный стероидогенез сопоставимо с соединением Org43553 и, наряду с этим, демонстрирует аддитивность при совместном применении с ХГЧ, что указывает на перспективы его использования для повышения эффективности гонадотропиновой терапии.
Полный текст

Об авторах
Кира Викторовна Деркач
Институт эволюционной физиологии и биохимии им. И.М. Сеченова Российской академии наук
Email: derkatch_k@list.ru
ORCID iD: 0000-0001-6555-9540
SPIN-код: 6925-1558
канд. биол. наук
Россия, Санкт-ПетербургВиктор Николаевич Сорокоумов
Институт эволюционной физиологии и биохимии им. И.М. Сеченова Российской академии наук; Санкт-Петербургский государственный университет
Email: sorokoumov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-4917-2175
SPIN-код: 1042-8142
канд. хим. наук
Россия, Санкт-Петербург; Санкт-ПетербургАлександр Олегович Шпаков
Институт эволюционной физиологии и биохимии им. И.М. Сеченова Российской академии наук
Автор, ответственный за переписку.
Email: alex_shpakov@list.ru
ORCID iD: 0000-0002-4293-3162
SPIN-код: 6335-8311
д-р биол. наук
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Casarini L, Lispi M, Longobardi S, et al. LH and hCG action on the same receptor results in quantitatively and qualitatively different intracellular signaling. PLoS One. 2012;7(10):e46682. doi: 10.1371/journal.pone.0046682
- Fournier T. Human chorionic gonadotropin: different glycoforms and biological activity depending on its source of production. Annals of Endocrinology (Paris). 2016;77(2):75–81. doi: 10.1016/j.ando.2016.04.012
- Riccetti L, Yvinec R, Klett D, et al. Human luteinizing hormone and chorionic gonadotropin display biased agonism at the LH and LH/CG receptors. Scientific Reports. 2017;7(1):940. doi: 10.1038/s41598-017-01078-8 EDN: NMRZZB
- Arey BJ. Allosteric modulators of glycoprotein hormone receptors: discovery and therapeutic potential. Endocrine. 2008;34(1–3):1–10. doi: 10.1007/s12020-008-9098-2
- Lazzaretti C, Simoni M, Casarini L, Paradiso E. Allosteric modulation of gonadotropin receptors. Front Endocrinol (Lausanne). 2023;14:1179079. doi: 10.3389/fendo.2023.1179079 EDN: UTUJVV
- Shpakov AO. Allosteric regulation of G-protein-coupled receptors: from diversity of molecular mechanisms to multiple allosteric sites and their ligands. Int J Mol Sci. 2023;24(7):6187. doi: 10.3390/ijms24076187 EDN: ADTDVM
- Puett D, Li Y, DeMars G, et al. A functional transmembrane complex: the luteinizing hormone receptor with bound ligand and G protein. Mol Cell Endocrinol. 2007;260–262:126–136. doi: 10.1016/j.mce.2006.05.009
- Duan J, Xu P, Cheng X, et al. Structures of full-length glycoprotein hormone receptor signalling complexes. Nature. 2021;598(7882):688–692. doi: 10.1038/s41586-021-03924-2 EDN: ZIDAPP
- He X, Duan J, Ji Y, et al. Hinge region mediates signal transmission of luteinizing hormone and chorionic gonadotropin receptor. Comput Struct Biotechnol J. 2022;20:6503–6511. doi: 10.1016/j.csbj.2022.11.039 EDN: WPOYED
- Menon KM, Menon B. Structure, function and regulation of gonadotropin receptors — a perspective. Mol Cell Endocrinol. 2012;356(1–2):88–97. doi: 10.1016/j.mce.2012.01.021
- Riccetti L, De Pascali F, Gilioli L, et al. Human LH and hCG stimulate differently the early signalling pathways but result in equal testosterone synthesis in mouse Leydig cells in vitro. Reprod Biol Endocrinol. 2017;15(1):2. doi: 10.1186/s12958-016-0224-3 EDN: HXPYWY
- Casarini L, Santi D, Simoni M, Potì F. ‘Spare’ luteinizing hormone receptors: facts and fiction. Trends Endocrinol Metab. 2018;29(4): 208–217. doi: 10.1016/j.tem.2018.01.007
- Johnson GP, Jonas KC. Mechanistic insight into how gonadotropin hormone receptor complexes direct signaling. Biol Reprod. 2020;102(4):773–783. doi: 10.1093/biolre/ioz228 EDN: VFABBW
- Mejia R, Waite C, Ascoli M. Activation of Gq/11 in the mouse corpus luteum is required for parturition. Mol Endocrinol. 2015;29(2):238–246. doi: 10.1210/me.2014-1324
- Mukherjee S, Gurevich VV, Preninger A, et al. Aspartic acid 564 in the third cytoplasmic loop of the luteinizing hormone/choriogonadotropin receptor is crucial for phosphorylation-independent interaction with arrestin2. J Biol Chem. 2002;277(20):17916–17927. doi: 10.1074/jbc.M110479200
- Casarini L, Simoni M. Recent advances in understanding gonadotropin signaling. Fac Rev. 2021;10:41. doi: 10.12703/r/10–41 EDN: ULFZXF
- Querat B. Unconventional actions of glycoprotein hormone subunits: a comprehensive review. Front Endocrinol (Lausanne). 2021;12:731966. doi: 10.3389/fendo.2021.731966 EDN: ICPRNZ
- Koistinen H, Koel M, Peters M, et al. Hyperglycosylated hCG activates LH/hCG-receptor with lower activity than hCG. Mol Cell Endocrinol. 2019;479:103–109. doi: 10.1016/j.mce.2018.09.006
- Nwabuobi C, Arlier S, Schatz F, et al. hCG: biological functions and clinical applications. Int J Mol Sci. 2017;18(10):2037. doi: 10.3390/ijms18102037
- Lunenfeld B, Bilger W, Longobardi S, et al. The development of gonadotropins for clinical use in the treatment of infertility. Front Endocrinol (Lausanne). 2019;10:429. doi: 10.3389/fendo.2019.00429
- Singh R, Kaur S, Yadav S, Bhatia S. Gonadotropins as pharmacological agents in assisted reproductive technology and polycystic ovary syndrome. Trends Endocrinol Metab. 2023;34(4):194–215. doi: 10.1016/j.tem.2023.02.002 EDN: FEAJIF
- Veldhuis JD, Liu PY, Takahashi PY, Keenan DM. Dynamic testosterone responses to near-physiological LH pulses are determined by the time pattern of prior intravenous LH infusion. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2012;303(6):E720–E728. doi: 10.1152/ajpendo.00200.2012
- Banker M, Garcia-Velasco JA. Revisiting ovarian hyperstimulation syndrome: towards OHSS free clinic. J Hum Reprod Sci. 2015;8(1):13–17. doi: 10.4103/0974-1208.153120
- Namavar Jahromi B, Parsanezhad ME, Shomali Z, et al. Ovarian hyperstimulation syndrome: a narrative review of its pathophysiology, risk factors, prevention, classification, and management. Iran J Med Sci. 2018;43(3):248–260.
- van Koppen CJ, Zaman GJ, Timmers CM, et al. A signaling-selective, nanomolar potent allosteric low molecular weight agonist for the human luteinizing hormone receptor. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol. 2008;378(5):503–514. doi: 10.1007/s00210-008-0318-3 EDN: CMFYBW
- van de Lagemaat R, Timmers CM, Kelder J, et al. Induction of ovulation by a potent, orally active, low molecular weight agonist (Org 43553) of the luteinizing hormone receptor. Hum Reprod. 2009;24(3):640–648. doi: 10.1093/humrep/den412
- van de Lagemaat R, Raafs BC, van Koppen C, et al. Prevention of the onset of ovarian hyperstimulation syndrome (OHSS) in the rat after ovulation induction with a low molecular weight agonist of the LH receptor compared with hCG and rec-LH. Endocrinology. 2011;152(11):4350–4357. doi: 10.1210/en.2011-1077
- Gerrits M, Mannaerts B, Kramer H, et al. First evidence of ovulation induced by oral LH agonists in healthy female volunteers of reproductive age. J Clin Endocrinol Metab. 2013;98(4):1558–1566. doi: 10.1210/jc.2012-3404
- Nataraja SG, Yu HN, Palmer SS. Discovery and development of small molecule allosteric modulators of glycoprotein hormone receptors. Front Endocrinol (Lausanne). 2015;6:142. doi: 10.3389/fendo.2015.00142
- Bakhtyukov AA, Derkach KV, Gureev MA, et al. Comparative study of the steroidogenic effects of human chorionic gonadotropin and thieno[2,3-d]pyrimidine-based allosteric agonist of luteinizing hormone receptor in young adult, aging and diabetic male rats. Int J Mol Sci. 2020;21(20):7493. doi: 10.3390/ijms21207493 EDN: AATZUJ
- Bakhtyukov AA, Derkach KV, Sorokoumov VN, et al. The effects of separate and combined treatment of male rats with type 2 diabetes with metformin and orthosteric and allosteric agonists of luteinizing hormone receptor on steroidogenesis and spermatogenesis. Int J Mol Sci. 2021;23(1):198. doi: 10.3390/ijms23010198 EDN: PWFGGY
- Derkach KV, Lebedev IA, Morina IY, et al. Comparison of steroidogenic and ovulation-inducing effects of orthosteric and allosteric agonists of luteinizing hormone/chorionic gonadotropin receptor in immature female rats. Int J Mol Sci. 2023;24(23):16618. doi: 10.3390/ijms242316618 EDN: ZLMODM
- Salomon Y, Londos C, Rodbell M. A highly sensitive adenylate cyclase assay. Anal Biochem. 1974;58(2):541–548. doi: 10.1016/0003-2697(74)90222-x
- Salomon Y, Amir Y, Azulai R, Amsterdam A. Modulation of adenylate cyclase activity by sulfated glycosaminoglycans. I. Inhibition by heparin of gonadotrophin-stimulated ovarian adenylate cyclase. Biochim Biophys Acta. 1978;544(2):262–272. doi: 10.1016/0304-4165(78)90095-8
- Mann ON, Kong CS, Lucas ES, et al. Expression and function of the luteinizing hormone choriogonadotropin receptor in human endometrial stromal cells. Sci Rep. 2022;12(1):8624. doi: 10.1038/s41598-022-12495-9 EDN: YAZHVM
- Baburski AZ, Andric SA, Kostic TS. Luteinizing hormone signaling is involved in synchronization of Leydig cell’s clock and is crucial for rhythm robustness of testosterone production. Biol Reprod. 2019;100(5):1406–1415. doi: 10.1093/biolre/ioz020
- Feng X, Zhang M, Guan R, Segaloff DL. Heterodimerization between the lutropin and follitropin receptors is associated with an attenuation of hormone-dependent signaling. Endocrinology. 2013;154(10):3925–3930. doi: 10.1210/en.2013-1407
- Heitman LH, Oosterom J, Bonger KM, et al. [3H]Org 43553, the first low-molecular-weight agonistic and allosteric radioligand for the human luteinizing hormone receptor. Mol Pharmacol. 2008;73(2):518–524. doi: 10.1124/mol.107.039875
- Manglik A, Kobilka BK, Steyaert J. Nanobodies to study G protein-coupled receptor structure and function. Annu Rev Pharmacol Toxicol. 2017;57:19–37. doi: 10.1146/annurev-pharmtox-010716-104710 EDN: YXCXNJ
- Derkach KV, Legkodukh AS, Dar’in DV, Shpakov AO. The stimulating effect of thienopyrimidines structurally similar to Org 43553 on adenylate cyclase activity in the testes and on testosterone production in male rats. Cell and Tissue Biology. 2017;11(1):73–80. doi: 10.1134/S1990519X17010035 EDN: YVFTPF
- Newton CL, Whay AM, McArdle CA, et al. Rescue of expression and signaling of human luteinizing hormone G protein-coupled receptor mutants with an allosterically binding small-molecule agonist. Proc Natl Acad Sci USA. 2011;108(17):7172–7176. doi: 10.1073/pnas.1015723108
- Newton CL, Anderson RC. Pharmacoperones for misfolded gonadotropin receptors. Handb Exp Pharmacol. 2018;245:111–134. doi: 10.1007/164_2017_64
- Newton CL, Anderson RC, Kreuchwig A, et al. Rescue of function of mutant luteinising hormone receptors with deficiencies in cell surface expression, hormone binding, and hormone signaling. Neuroendocrinology. 2021;111(5):451–464. doi: 10.1159/000508000 EDN: IQEFWS
- Kim SO, Trau HA, Duffy DM. Vascular endothelial growth factors C and D may promote angiogenesis in the primate ovulatory follicle. Biol Reprod. 2017;96(2):389–400. doi: 10.1095/biolreprod.116.144733
- Lund M, Pearson AC, Sage MAG, Duffy DM. Luteinizing hormone receptor promotes angiogenesis in ovarian endothelial cells of Macaca fascicularis and Homo sapiens. Biol Reprod. 2023;108(2):258–268. doi: 10.1093/biolre/ioac189 EDN: RPPHTF
- Scotti L, Abramovich D, Pascuali N, et al. Local VEGF inhibition prevents ovarian alterations associated with ovarian hyperstimulation syndrome J Steroid Biochem Mol Biol. 2014;144(Pt B):392–401. doi: 10.1016/j.jsbmb.2014.08.013
- Bishop CV, Lee DM, Slayden OD, Li X. Intravenous neutralization of vascular endothelial growth factor reduces vascular function/permeability of the ovary and prevents development of OHSS-like symptoms in rhesus monkeys. J Ovarian Res. 2017;10(1):41. doi: 10.1186/s13048-017-0340-5
