Нарушение обмена железа как возможный механизм развития нейродегенерации после новой коронавирусной инфекции SARS-CoV-2

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Вовлечение нервной системы в патологический процесс, возникающий при инфицировании COVID-19, становится все более очевидным. Регулярно поднимается вопрос возможности дебюта или прогрессирования уже развившегося синдрома паркинсонизма у пациентов, перенесших COVID-19. Выдвигается большое количество гипотез, объясняющих данную взаимосвязь. Предполагается, что нарушение обмена железа в головном мозге может лежать в основе развития и прогрессирования нейродегенеративных заболеваний, в том числе после перенесенной новой коронавирусной инфекции SARS-CoV-2. Проведен анализ исследований по вопросу возможного влияния нарушения обмена железа на возникновение и механизм развития нейродегенеративных заболеваний после инфицирования SARS-CoV-2. Описаны процессы физиологического поддержания гомеостаза железа, а также влияния физиологического старения на накопление железа в центральной нервной системе. Обсуждается взаимосвязь гиперферритинемии, возникающей при COVID-19, и ферроптоза как основы нейродегенеративного процесса при болезни Паркинсона и болезни Альцгеймера. Описаны основные молекулярные механизмы, участвующие в ферроптозе. Приведены примеры вовлечения нарушения гомеостаза металлов в процесс изменения структуры α-синуклеина, синтеза β-амилоида, гиперфосфорилированного тау-белка. Обсуждаются причины избыточного накопления железа в определенных структурах головного мозга. Проанализирован вопрос возможности использования оценки изменения обмена железа в качестве нового биомаркера прогрессирования болезни Паркинсона (1 рис., библ.: 62 ист.)

Полный текст

Введение

Во время пандемии стало ясно, что SARS-CoV-2 вызывает не только респираторные заболевания, но также может поражать множество органов и тканей. Отдельно следует отметить вовлечение нервной системы в патологический процесс, возникающий при инфицировании COVID-19. Об острых и подострых неврологических осложнениях различной степени выраженности сообщается у 85 % пациентов с SARS-CoV-2. До 65 % людей с COVID-19 страдают гипосмией, которая также является распространенным премоторным симптомом болезни Паркинсона (БП). Этот симптом, дополненный сообщениями о дебюте или прогрессировании синдрома паркинсонизма у пациентов, перенесших COVID-19, привлек внимание медицинского сообщества к возможной связи между инфекцией SARS-CoV-2 и БП [1]. Выдвигалось множество гипотез, описывающих потенциальные механизмы такой связи.

Основная часть

COVID-19 может рассматриваться как системная воспалительная реакция, которая характеризуется угрожающим жизни гипервоспалением и цитокиновым штормом, который в конечном итоге приводит к полиорганной недостаточности. Цитокиновый шторм тесно ассоциирован с гиперферритинемией, при этом окончательного патофизиологического обоснования данной взаимосвязи не представлено. А.А. Зайцев и соавт. предполагают, что перегрузка железом у больных COVID-19 может быть исходной либо следствием «аутоканнибализма» (за счет гемового и миоглобинового железа), а также результатом секвестрации железа в макрофагах в результате системного воспаления [2]. Ю.П. Орлов и соавт. указывают, что в генезе гиперферритинемии при СOVID-19 ключевую роль следует отводить цитокиновому шторму, а не нарушениям обмена железа и не гемотоксическому действию вируса [3]. При этом проведенные ретроспективные сравнительные анализы показали, что гиперферритинемия специфична именно для COVID-19 и не возникает при других воспалительных процессах [4]. В любом случае, возросший интерес к взаимосвязи SARS-CoV-2 и паркинсонизма заставляет рассматривать нарушение обмена железа как основу развития и прогрессирования развития нейродегенеративных заболеваний.

Железо участвует во многих жизненно важных процессах, таких как транспорт кислорода, митохондриальное дыхание, синтез ДНК, миелина, нейротрансмиттеров. Поддержание гомеостаза железа — ключевой момент функционирования головного мозга, в то время как его дизрегуляция способна привести к запуску нейротоксичности. Механизм поддержания гомеостаза заключается в поддержании равновесия концентрации железа. В случае, когда уровень железа в клетке начинает превосходить ее аккумулирующую способность, развивается оксидативный стресс и наступает ее гибель.

При физиологическом старении происходит избирательное накопление железа в определенных областях мозга и типах клеток, причем железо в этом случае представлено ферритином и нейромеланином. В случае же нейродегенеративного процесса происходит избыточное отложение железа в данных областях, и зачастую выраженность этого процесса коррелирует с выраженностью окислительного стресса. Является ли избыточное накопление железа, определяемое при нейродегенеративных заболеваниях, первичным или вторичным процессом, окончательно не выяснено.

В организм человека железо поступает с пищей и далее всасывается в тонком кишечнике. Поступление железа в кишечник осуществляется за счет таких белков, как ферропортин, дивалентный металлотранспортер (транспортер двухвалентных металлов (DМТ-1)), дуоденальный цитохром В (DcytВ), гефестин (внутриклеточный аналог плазменного церулоплазмина), фактор высокого Fe (HFЕ), железо-регуляторный элемент (IRE) и железо-регуляторный белок (IRP), гепсидин [5, 6]. Все перечисленные белки синтезируются энтероцитами в соответствии с запросами организма. Каждое новое поколение энтероцитов запрограммировано на текущую потребность организма в железе.

Железо пищи представлено окисленной формой Fe3+, при участии DcytB на поверхности энтероцита оно преобразуется в Fe2+, а затем с помощью DMT-1 начинает свое перемещение к базолатеральной поверхности клетки, где соединяется с ферропортином и гефестином и переносится через мембрану в плазму. Регуляция работы DMT-1 и ферропортина зависит от уровня пула железа, на который реагирует взаимосвязанная протеиновая пара — IRE и IRP (при низких запасах IRP связывается с IRE и стимулирует экспрессию трансферринового рецептора (TrfR), и наоборот). Универсальным регулятором метаболизма железа является гепсидин, влияющий не только на абсорбцию пищевого железа, но и на высвобождение его из макрофагов. Гепсидин является отрицательным регулятором метаболизма железа, он оказывает блокирую щее воздействие на любой транспорт железа из различных клеток и тканей, включая энтероциты, макрофаги, плаценту и др.

Большая часть железа поступает обратно в русло из фагосом макрофагов после фагоцитоза стареющих эритроцитов. Излишки железа депонируются в виде молекул ферритина и гемосидерина.

После выхода из энтероцита или макрофага железо связывается с трансферрином и с его помощью транспортируется к органам и тканям. Синтез трансферрина находится в обратной зависимости от уровня железа в организме. Передача железа из трансферрина в клетку осуществляется с помощью TrfR через комплекс TrfR–трансферрин, который погружается внутрь клетки в виде эндосомы. Железо постоянно перемещается между нейронами, микроглией и астроцитами, однако окончательный механизм данного движения неясен. Трансферрин в головном мозге синтезируется в олигодентроцитах и сосудистом сплетении, однако секретируется только последним [7]. Как отмечалось выше, железо играет важную роль в миелинизации. Олигодендроциты способны получать железо как из капилляров, так и из интерстициального пространства (интерстициальный ферритин).

О метаболизме железа в микроглии имеется недостаточно сведений, однако известно, что активация микроглии приводит к увеличению поглощения железа [8]. Нейровоспаление, в свою очередь, приводит к активации глиальных клеток, нарушая гомеостаз железа. Исследования in vitro показывают, что кратковременная стимуляция (с использованием фактора некроза опухоли-α, интерлейкина 6 или липополисахарида) в течение до 18 ч увеличивает накопление железа в нейронах и микроглии (оценка с помощью метода атомно-абсорбционной спектрометрии), но не в астроцитах. Кроме того, было продемонстрировано мгновенное увеличение гепсидина в астроцитах и микроглии [9]. Данное накопление железа обусловлено изменениями активности DMT-1 и ферропортина. Так, стимулированные нейроны гиппокампа показали значительное увеличение DMT-1 и снижение концентрации ферропортина, а при стимуляции микроглии отмечено повышение концентрации DMT-1 без изменений со стороны ферропортина. Результаты указанных исследований показывают, что изменения ферропортина не оказывают значительного влияния на гомеостаз железа.

Повышенные концентрации железа в центральной нервной системе в процессе физиологического старения могут быть вызваны несколькими факторами: повышение проницаемости сосудов головного мозга, воспаление, перераспределение железа, изменение гомеостаза железа [10]. Старение замедляет работу вышеописанной системы поддержания гомеостаза железа, что приводит к его накоплению в результате неэффективного хелатирования [11]. Накопление железа в нейронах может вызвать усиление апоптоза. Повышение уровня железа в глии может быть индуцировано воспалением в связи с увеличением высвобождения провоспалительных цитокинов, что приводит к нейродегенерации [12].

Концентрация железа с возрастом увеличивается в черной субстанции, скорлупе, бледном шаре, хвостатом ядре, коре [13]. Причина постепенного нарастания уровня железа именно в этих отделах головного мозга окончательно не ясна. Региональное распределение общего железа в здоровом головном мозге взрослого человека гетерогенно, самые высокие концентрации отмечены в базальных ганглиях, низкие — в сером и белом веществе коры головного мозга, среднем мозге и мозжечке, а самые низкие — в мосту, области голубоватого пятна и продолговатом мозге [14]. Региональная гетерогенность распределения железа в головном мозге, а также его изменение с возрастом подтверждено in vivo с помощью магнитно-резонансной томографии [15].

Наиболее подробные исследования по оценке влияния физиологического старения на накопление железа, нейромеланина и ферритина были проведены при прицельном изучении черной субстанции и голубоватого пятна. У здоровых людей общая концентрация железа в голубоватом пятне остается стабильной на протяжении всей жизни и в целом ниже, чем в черной субстанции, в которой наблюдается линейное увеличение общей концентрации железа с возрастом [8]. В связи с этим можно предположить, что железо может способствовать нейродегенерации в черной субстанции. Нейромеланин присутствует в нейронах в виде комплекса нейромеланин-железо, уровень железа в котором зависит от конкретной области мозга [8]. Концентрация комплекса нейромеланин-железо, являющегося основной формой железа в катехоламинергических нейронах, увеличивается с возрастом в черной субстанции и голубоватом пятне. С помощью гистохимических методов (окраска по Перлсу) у «здоровой» пожилой популяции выявлено наличие большого количества активного железа в глиальных клетках и нейромеланин-свободных нейронах. В то же время в нейромеланинсодержащих нейронах данный метод окраски не показал наличия трехвалентного железа, поскольку в этих нейронах железо переходит в стабильный комплекс нейромеланин-железо, что подтверждается при помощи электронного парамагнитного резонанса и Мёссбауэровской спектроскопии [8]. Количество комп лекса нейромеланин-железо увеличивается с возрастом в нейронах премоторной коры, скорлупы и мозжечка [16].

В головном мозге при физиологическом старении наблюдаются активизация провоспалительного процесса, увеличение количества глиальных клеток, нарастание иммунореактивности астроцитарных и микроглиальных маркеров. В то же время увеличивается проницаемость гематоэнцефалического барьера. Все эти изменения приводят к увеличению отложения железа в определенных участках [17].

В микроглии и астроцитах коры головного мозга, мозжечка, гиппокампа, базальных ганглиев и миндалевидных телах гистохимически обнаружены отложения ферритина, число которых обычно увеличивается с возрастом. Олигодендроциты также содержат ферритин и трансферрин, однако их концентрация остается постоянной по мере старения [18]. У пожилых людей могут выявляться субпопуляции ферритин-положительных клеток микроглии, большинство из которых являются абберантными и имеют дистрофические изменения. Железо, фагоцитированное данным видом клеток, вероятно, и приводит к интоксикации и вызывает клеточную дегенерацию. Функционально измененная ферритин-положительная микроглия может участвовать в патогенезе нейродегенеративных заболеваний.

Аккумуляция железа в клетках головного мозга требует жесткого контроля с целью недопущения интоксикации. Избыток железа может вызвать окислительный стресс путем образования активных форм кислорода (reactive oxygen species, ROS), в частности гидроксильного радикала [19]. ROS может повредить матричную ДНК, привести к ее эпигенетическим изменениям и окислению белков клетки [20, 21]. Перекисное окисление мембранных липидов в результате влияния ROS может привести к образованию токсичных альдегидов, таких как 4-гидроксиноненал, который необратимо модифицирует белки путем карбонилирования [22]. ROS может индуцировать выделение железа из митохондриальных железосерных кластеров и других белков хранения железа, что приводит к запуску реакции Фентона. Нарушение гомеостаза железа может влиять на митохондриальные функции, приводя в результате к ускорению механизмов нейродегенерации [23]. Увеличение железа может индуцировать нейродегенеративные процессы также через механизмы, отличные от реакции Фентона. Катеколамины, в том числе дофамин, могут быть окислены до токсичных хинонов за счет восстановления железа [24]. Paris I. et al. показали, что железо участвует в превращении 1-метил-4-фенил-1,2,3,6-тетрагидропиридин (МФТП), который сам по себе не токсичен, в катионы 1-метил-4-фенилпиридиния, приводящего к гибели нейронов компактной части черной субстанции [25].

Более того, in vitro было показано, что агрегация белков, вовлеченных в патогенез нейродегенеративных заболеваний (α-синуклеин, гиперфосфорилированный тау-протеин), вызвана повышением уровня железа [26].

Таким образом, нейродегенерация, развивающаяся как результат токсического влияния железа, может привести к апоптозу и ферроптозу — программируемой окислительной некротической гибели клетки с железо-зависимым перекисным окислением липидов [27, 28]. На рис. 1 схематично представлены основные молекулярные механизмы, участвующие в ферроптозе.

Болезнь Паркинсона

Исследованиями [31] было показано увеличение общей концентрации железа в черной субстанции при БП в сравнении с группой контроля, а также его накопление по мере прогрессирования заболевания. В то же время МРТ и транскраниальная сонография не смогли подтвердить связь концентрации железа в черной субстанции и тяжести заболевания в связи с отсутствием наличия точной количественной оценки [32]. Окончательная причина избыточного накопления железа в черной субстанции при БП до конца не выяснена. Предложено несколько объяснений: повышенная проницаемость гематоэнцефалического барьера [33], усиление провоспалительного статуса [34, 35], увеличение экспрессии лактоферриновых рецепторов в нейронах и сосудах [36], увеличение экспрессии DMT1 в дофаминергических нейронах [37], изменение работы комплекса трансферрин-TrfR 2-го типа, мутации генов, ответственных за транспорт железа [39].

 

Рис. 1. Основные молекулярные механизмы, участвующие в ферроптозе (адаптировано из [29]). CP — церулоплазмин; Tf — трансферрин; TfR — трансферриновый рецептор; DМТ-1 — транспортер двухвалентных металлов; ROS — актив- ные формы кислорода

 

Fe3+ in vitro может служить катализатором перехода структуры α-синуклеина из α в β, которая, в свою очередь, входит в состав телец Леви [40]. Показано, что в черной субстанции при БП отмечается увеличение железа с одновременным снижением ферритина, причем в тельцах Леви железо представлено редокс-ионами [40, 41]. Именно уровень ферритина контролирует количество редокс-ионов, а его снижение может быть объяснено стойким повышением активности IRP, выявленным при данном заболевании [42]. Уровень редокс-ионов железа коррелирует с выраженностью гибели нейронов [43].

Концентрация железа в черной субстанции при БП превосходит буферную способность нейромеланина и ферритина, что приводит к развитию нейротоксичности [43]. Высвобождаемый разрушенными нейронами (экстранейрональный) нейромеланин приводит к формированию микроглиоза и дальнейшей индукции гибели дофаминергических нейронов [44, 45].

Кроме черной субстанции сообщается об увеличении содержания железа, выявленного с помощью МРТ, в красных ядрах у пациентов с БП с дискинезией, в то же время в височной коре и бледном шаре отмечается снижение его концентрации [46, 47].

Вторым фактором увеличения концентрации железа при БП может служить как повышение активности DMT1, так и снижение ферроксидазной активности церулоплазмина, что показано как на животной модели БП, так и у пациентов [36, 48]. Снижение ферроксидазной активности церулоплазмина с одновременным повышением меди было отмечено в ликворе у пациентов с БП [49]. Более того, у некоторых пациентов можно выявить миссенс-мутацию гена, кодирующего церулоплазмин [50]. Увеличение уровня железа в головном мозге определялось как при 6-гидроксидофамин-, так и при МФТП-модели БП, что объясняется повышенной экспрессией DMT1 [51].

Несмотря на вышеописанное увеличение содержания железа в структурах мозга при БП, повышенная концентрация сывороточного железа является фактором антириска развития БП, и наоборот [52, 53]. Повышение риска развития БП у людей с низким содержанием сывороточного железа, вероятно, объясняется необходимостью его адекватных поставок для нормального синтеза дофамина, поскольку железо является кофактором тирозингидроксилазы — ключевого фермента синтеза дофамина [40].

Кроме того, показатели изменения обмена железа все чаще привлекают исследователей как новые биомаркеры прогрессирования БП. Так, в работе F. Maass et al. (2004) показано, что оценка общего содержания железа и ферритина в спинномозговой жидкости может быть использована для отражения прогрессирующего дисгомеостаза железа в головном мозге и прогрессирования заболевания у пациентов с БП [54]. Была проведена оценка данных показателей в ликворе двадцати пациентов со второй стадией БП спустя год после первого забора. Продемонстрировано достоверное увеличение общего содержания железа (p = 0,002) и снижение ферритина (p = 0,04). Выдвинута гипотеза, что именно соотношение железо/ферритин в ликворе может рассматриваться как важный биомаркер прогрессирования заболевания (по результатам работы p = 0,006). В данной работе с целью исключения влияния на оцениваемые показатели противопаркинсонических препаратов был проведен корреляционный анализ, который не выявил связи между изменениями эквивалентной дозы леводопы и уровнями железа и ферритина с течением времени (p > 0,05).

Болезнь Альцгеймера

Нарушение гомеостаза редокс-активных металлов, в первую очередь железа и меди, вероятно, является составляющей частью патогенеза болезни Альцгеймера. В настоящее время показано, что в амилоидных бляшках и нейрофибриллярных клубочках присутствуют высокие концентрации цинка, меди и железа. Данное перераспределение (фокальное накопление) металлов может приводить к обкрадыванию условно здоровой ткани мозга [55]. Показано также, что нарушение гомеостаза данных металлов вовлечено в процесс синтеза β-амилоида, гиперфосфорилированного тау-белка и окислительного стресса нейронов [56]. Накопление тау-белка в нейрофибриллярных клубочках приводит к индукции гем-оксигеназы (HO-1), способной катализировать разрушение гема, приводя к дополнительному высвобождению железа, которое, в свою очередь, может запустить реакцию Фентона [57].

Большая часть предшественника β-амилоида в норме расщепляется неамилоидогенным путем с помощью α-секретазы и далее γ-секретазы с образованием нетоксичного пептида p3. При амилоидогенном пути предшественник β-амилоида сначала расщепляется β-секретазой и далее γ-секретазой с образованием β-амилоида [58]. Следовательно, стимуляция α-секретазы приводит к снижению образования β-амилоида. За активацию α-секретазы и перевод пути расщепления предшественника β-амилоида в сторону пептида p3 отвечает фурин [59]. Повышение количества железа приводит к снижению активности фурина, активации β-секретазы и переводу на амилоидогенный путь расщепления предшественника β-амилоида, в то время как снижение уровня железа запускает неамилоидный путь [58].

В 2002 г. было показано наличие функционального железо-регуляторного элемента (IRE-Type II) в 5'-нетранслируемой области мРНК, кодирующей предшественник β-амилоида [60]. Данная область находится непосредственно перед областью ИЛ-1. На основе данного открытия была разработана гипотеза, согласно которой увеличение уровня ИЛ-1 приводит к усилению IRP-связывания с 5'-нетранслируемой областью и снижению синтеза предшественника β-амилоида.

Существуют данные об индукции внутриклеточного накопления железа в ответ на дефицит тау-протеина и развитии на этом фоне дегенерации дофаминергических нейронов и паркинсонизма с деменцией у мышей [61]. Недостаток тау-протеина приводит к снижению выведения железа ферропортином, задерживая предшественник β-амилоида в эндоплазматическом ретикулуме.

Заключение

Таким образом, анализ проведенных исследований позволяет полагать, что нарушение обмена железа в головном мозге может лежать в основе развития и прогрессирования нейродегенеративных заболеваний, в том числе после перенесенной новой коронавирусной инфекции SARS-CoV-2.

Дополнительная информация

Источник финансирования. Финансирование данной работы не проводилось.

Конфликт интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.

Этическая экспертиза. Проведение исследования одобрено локальным этическим комитетом ФГБВОУ ВО «Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова».

Вклад авторов. Все авторы внесли существенный вклад в проведение исследования и подготовку статьи, прочли и одобрили финальную версию перед публикацией.

×

Об авторах

Игорь Вячеславович Литвиненко

Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова

Email: litvinenkoiv@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0001-8988-3011
SPIN-код: 6112-2792
Scopus Author ID: 57202361039
ResearcherId: F-9120-2013

докт. мед. наук, профессор

Россия, Санкт-Петербург

Игорь Вячеславович Красаков

Всероссийский центр экстренной и радиационной медицины имени А.М. Никифорова

Автор, ответственный за переписку.
Email: ikrasakov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-6092-0659
SPIN-код: 9891-8300
Scopus Author ID: 26642102200
ResearcherId: I-8865-2016

канд. мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Merello M., Bhatia K.P., Obeso J.A. SARS-CoV-2 and the risk of Parkinson’s disease: facts and fantasy // Lancet Neurol. 2021. Vol. 20, No. 2. P. 94–95. doi: 10.1016/S1474-4422(20)30442-7
  2. Зайцев А.А., Чернов С.А., Стец В.В., и др. Алгоритмы ведения пациентов с новой коронавирусной инфекцией COVID-19 в стационаре: Методические рекомендации // Consilium Medicum. 2020. Т. 22, № 11. С. 91–97. doi: 10.26442/20751753.2020.11.200520
  3. Орлов Ю.П., Долгих В.Т., Верещагин Е.И., и др. Есть ли связь обмена железа с течением СOVID-19? // Вестник анестезиологии и реаниматологии. 2020. Т. 17, № 4. С. 6–13. DOI: 0.21292/2078-5658-2020-17-4-6-13
  4. Полушин Ю.С., Шлык И.В., Гаврилова Е.Г., и др. Роль ферритина в оценке тяжести COVID-19 // Вестник анестезиологии и реаниматологии. 2021. Т. 18, № 4. С. 20–28. doi: 10.21292/2078-5658-2021-18-4-20-28
  5. Vargas-Vargas M., Cortés-Rojo C. Ferritin levels and COVID-19 // Rev. Panam. Salud. Publica. 2020. No. 44. Р. 72. doi: 10.26633/RPSP.2020.72
  6. Цветаева Н.В., Левина А.А., Мамукова Ю.И. Основы регуляции обмена железа // Клиническая онкогематология. 2010. № 3. С. 278–283.
  7. Гордиенко А.В., Сахин В.Т., Крюков Е.В., и др. Значение обмена железа, гепцидина и растворимого рецептора трансферрина в патогенезе анемии у пациентов, страдающих злокачественными новообразованиями // Вестник Российской Военно-медицинской академии. 2018. № 3 (63). С. 91–94. doi: 10.17816/brmma12258
  8. Ward R.J., Zucca F.A., Duyn J.H., et al. The role of iron in brain ageing and neurodegenerative disorders // Lancet Neurol. 2014. Vol. 13, No. 10. P. 1045–1060. doi: 10.1016/S1474-4422(14)70117-6
  9. Lee P., Peng H., Gelbart T., Beutler E. The IL-6- and lipopolysaccharide-induced transcription of hepcidin in HFE-, transferrin receptor 2-, and beta 2-microglobulin-deficient hepatocytes // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2004. Vol. 101, No. 25. P. 9263–9265. doi: 10.1073/pnas.0403108101
  10. Urrutia P., Aguirre P., Esparza A., et al. Inflammation alters the expression of DMT1, FPN1 and hepcidin, and it causes iron accumulation in central nervous system cells // J. Neurochem. 2013. Vol. 126, No. 4. P. 541–549. doi: 10.1111/jnc.12244
  11. Farrall A.J., Wardlaw J.M. Blood-brain barrier: ageing and microvascular disease – systematic review and meta-analysis // Neurobiol. Aging. 2009. Vol. 30, No. 3. P. 337–352. doi: 10.1016/j.neurobiolaging.2007.07.015
  12. Killilea D.W., Wong S.L., Cahaya H.S., et al. Iron accumulation during cellular senescence // Ann. N. Y. Acad. Sci. 2004. No. 1019. P. 365–367. doi: 10.1196/annals.1297.063
  13. Xu J., Jia Z., Knutson M.D., Leeuwenburgh C. Impaired iron status in aging research // Int. J. Mol. Sci. 2012. Vol. 13, No. 2. P. 2368–2386. doi: 10.3390/ijms13022368
  14. Ramos P., Santos A., Pinto N.R., et al. Iron levels in the human brain: a post-mortem study of anatomical region differences and age-related changes // J. Trace. Elem. Med. Biol. 2014. Vol. 28, No. 1. P. 13–17. doi: 10.1016/j.jtemb.2013.08.001
  15. House E., Esiri M., Forster G., et al. Aluminium, iron and copper in human brain tissues donated to the Medical Research Council’s Cognitive Function and Ageing Study // Metallomics. 2012. Vol. 4, No. 1. P. 56–65. doi: 10.1039/c1mt00139f
  16. Bilgic B., Pfefferbaum A., Rohlfing T., et al. MRI estimates of brain iron concentration in normal aging using quantitative susceptibility mapping // Neuroimage. 2012. Vol. 59, No. 3. P. 2625–2635. doi: 10.1016/j.neuroimage.2011.08.077
  17. Zecca L., Bellei C., Costi P., et al. New melanic pigments in the human brain that accumulate in aging and block environmental toxic metals // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2008. Vol. 105, No. 45. P. 17567–17572. doi: 10.1073/pnas.0808768105
  18. Block M.L., Zecca L., Hong J.S. Microglia-mediated neurotoxicity: uncovering the molecular mechanisms // Nat. Rev. Neurosci. 2007. Vol. 8, No. 1. P. 57–69. doi: 10.1038/nrn2038
  19. Connor J.R., Menzies S.L., St Martin S.M., Mufson E.J. Cellular distribution of transferrin, ferritin, and iron in normal and aged human brains // J. Neurosci. Res. 1990. Vol. 27, No. 4. P. 595–611. doi: 10.1002/jnr.490270421
  20. Crichton R., Ward R., eds. Metal-Based Neurodegeneration: From Molecular Mechanisms to Therapeutic Strategies. 2nd ed. Chichester, West Sussex, U.K.: John Wiley & Sons Limited; 2014.
  21. Melis J.P., van Steeg H., Luijten M. Oxidative DNA damage and nucleotide excision repair // Antioxid. Redox. Signal. 2013. Vol. 18, No. 18. P. 2409–2419. doi: 10.1089/ars.2012.5036
  22. Kwok J.B. Role of epigenetics in Alzheimer’s and Parkinson’s disease // Epigenomics. 2010. Vol. 2, No. 5. P. 671–682. doi: 10.2217/epi.10.43
  23. Perluigi M., Coccia R., Butterfield D.A. 4-Hydroxy-2-nonenal, a reactive product of lipid peroxidation, and neurodegenerative di seases: a toxic combination illuminated by redox proteomics stu dies // Antioxid. Redox. Signal. 2012. Vol. 17, No. 11. P. 1590–1609. doi: 10.1089/ars.2011.4406
  24. Horowitz M.P., Greenamyre J.T. Mitochondrial iron metabolism and its role in neurodegeneration // J. Alzheimers. Dis. 2010. Vol. 20, No. 2. P. 551–568. doi: 10.3233/JAD-2010-100354
  25. Paris I., Martinez-Alvarado P., Cárdenas S., et al. Dopamine-dependent iron toxicity in cells derived from rat hypothalamus // Chem. Res. Toxicol. 2005. Vol. 18, No. 3. P. 415–419. doi: 10.1021/tx0497144
  26. Di Monte D.A., Schipper H.M., Hetts S., Langston J.W. Iron-mediated bioactivation of 1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridine (MPTP) in glial cultures // Glia. 1995. Vol. 15, No. 2. P. 203–206. doi: 10.1002/glia.440150213
  27. Yamamoto A., Shin R.W., Hasegawa K., et al. Iron (III) induces aggregation of hyperphosphorylated tau and its reduction to iron (II) reverses the aggregation: implications in the formation of neurofibrillary tangles of Alzheimer’s disease // J. Neurochem. 2002. Vol. 82, No. 5. P. 1137–1147. doi: 10.1046/j.1471-4159.2002.t01-1-01061.x
  28. Ott M., Gogvadze V., Orrenius S., Zhivotovsky B. Mitochondria, oxidative stress and cell death // Apoptosis. 2007. Vol. 12, No. 5. P. 913–922. doi: 10.1007/s10495-007-0756-2
  29. Dixon S.J., Lemberg K.M., Lamprecht M.R., et al. Ferroptosis: an iron-dependent form of nonapoptotic cell death // Cell. 2012. Vol. 149, No. 5. P. 1060–1072. doi: 10.1016/j.cell.2012.03.042
  30. Wu J.R., Tuo Q.Z., Lei P. Ferroptosis, a Recent Defined Form of Critical Cell Death in Neurological Disorders // J. Mol. Neurosci. 2018. Vol. 66, No. 2. P. 197–206. doi: 10.1007/s12031-018-1155-6
  31. Hirsch E.C., Brandel J.P., Galle P., et al. Iron and aluminum increase in the substantia nigra of patients with Parkinson’s disease: an X-ray microanalysis // J. Neurochem. 1991. Vol. 56, No. 2. P. 446–451. doi: 10.1111/j.1471-4159.1991.tb08170.x
  32. Gröger A., Berg D. Does structural neuroimaging reveal a disturbance of iron metabolism in Parkinson’s disease? Implications from MRI and TCS studies // J. Neural. Transm. (Vienna). 2012. Vol. 119, No. 12. P. 1523–1528. doi: 10.1007/s00702-012-0873-0
  33. Kortekaas R., Leenders K.L., van Oostrom J.C., et al. Blood-brain barrier dysfunction in parkinsonian midbrain in vivo // Ann. Neurol. 2005. Vol. 57, No. 2. P. 176–179. doi: 10.1002/ana.20369
  34. Conde J.R., Streit W.J. Microglia in the aging brain // J. Neuropathol. Exp. Neurol. 2006. Vol. 65, No. 3. P. 199–203. doi: 10.1097/01.jnen.0000202887.22082.63
  35. Литвиненко И.В., Красаков И.В., Бисага Г.Н., и др. Современная концепция патогенеза нейродегенеративных заболеваний и стратегия терапии // Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2017. Т. 117, № 6 (2). С. 3–10. doi: 10.17116/jnevro2017117623-10
  36. Faucheux B.A., Nillesse N., Damier P., et al. Expression of lactoferrin receptors is increased in the mesencephalon of patients with Parkinson disease // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. Vol. 92, No. 21. P. 9603–9607. doi: 10.1073/pnas.92.21.9603
  37. Salazar J., Mena N., Hunot S., et al. Divalent metal transporter 1 (DMT1) contributes to neurodegeneration in animal models of Parkinson’s disease // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2008. Vol. 105, No. 47. P. 18578–18583. doi: 10.1073/pnas.0804373105
  38. Mastroberardino P.G., Hoffman E.K., Horowitz M.P., et al. A novel transferrin/TfR2-mediated mitochondrial iron transport system is disrupted in Parkinson’s disease // Neurobiol. Dis. 2009. Vol. 34, No. 3. P. 417–431. doi: 10.1016/j.nbd.2009.02.009
  39. Guerreiro R.J., Bras J.M., Santana I., et al. Association of HFE common mutations with Parkinson’s disease, Alzheimer’s disease and mild cognitive impairment in a Portuguese cohort // BMC Neurol. 2006. No. 6, P. 24. doi: 10.1186/1471-2377-6-24
  40. Uversky V.N., Li J., Fink A.L. Metal-triggered structural transformations, aggregation, and fibrillation of human alpha-synuclein. A possible molecular NK between Parkinson’s disease and heavy metal exposure // J. Biol. Chem. 2001. Vol. 276, No. 47. P. 44284–44296. doi: 10.1074/jbc.M105343200
  41. Connor J.R., Snyder B.S., Arosio P., et al. A quantitative analysis of isoferritins in select regions of aged, parkinsonian, and Alzheimer’s diseased brains // J. Neurochem. 1995. Vol. 65, No. 2. P. 717–724. doi: 10.1046/j.1471-4159.1995.65020717.x
  42. Castellani R.J., Siedlak S.L., Perry G., Smith M.A. Sequestration of iron by Lewy bodies in Parkinson’s disease // Acta Neuropathol. 2000. Vol. 100, No. 2. P. 111–114. doi: 10.1007/s004010050001
  43. Faucheux B.A., Martin M.E., Beaumont C., et al. Lack of up-regulation of ferritin is associated with sustained iron regulatory protein-1 binding activity in the substantia nigra of patients with Parkinson’s disease // J. Neurochem. 2002. Vol. 83, No. 2. P. 320–330. doi: 10.1046/j.1471-4159.2002.01118.x
  44. Faucheux B.A., Martin M.E., Beaumont C., et al. Neuromelanin associated redox-active iron is increased in the substantia nigra of patients with Parkinson’s disease // J. Neurochem. 2003. Vol. 86, No. 5. P. 1142–1148. doi: 10.1046/j.1471-4159.2003.01923.x
  45. Langston J.W., Forno L.S., Tetrud J., et al. Evidence of active nerve cell degeneration in the substantia nigra of humans years after 1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridine exposure // Ann. Neurol. 1999. Vol. 46, No. 4. P. 598–605. doi: 10.1002/1531-8249(199910)46:4<598:: aid-ana7>3.0.co;2-f
  46. Zhang W., Phillips K., Wielgus A.R., et al. Neuromelanin activates microglia and induces degeneration of dopaminergic neurons: implications for progression of Parkinson’s disease // Neurotox. Res. 2011. Vol. 19, No. 1. P. 63–72. doi: 10.1007/s12640-009-9140-z
  47. Lewis M.M., Du G., Kidacki M., et al. Higher iron in the red nucleus marks Parkinson’s dyskinesia // Neurobiol. Aging. 2013. Vol. 34, No. 5. P. 1497–1503. doi: 10.1016/j.neurobiolaging.2012.10.025
  48. Yu X., Du T., Song N., et al. Decreased iron levels in the temporal cortex in postmortem human brains with Parkinson disease // Neurology. 2013. Vol. 80, No. 5. P. 492–495. doi: 10.1212/WNL.0b013e31827f0ebb
  49. Olivieri S., Conti A., Iannaccone S., et al. Ceruloplasmin oxidation, a feature of Parkinson’s disease CSF, inhibits ferroxidase activity and promotes cellular iron retention // J. Neurosci. 2011. Vol. 31, No. 50. P. 18568–18577. doi: 10.1523/JNEUROSCI.3768-11.2011
  50. Boll M.C., Sotelo J., Otero E., et al. Reduced ferroxidase activity in the cerebrospinal fluid from patients with Parkinson’s disease // Neurosci. Lett. 1999. Vol. 265, No. 3. P. 155–158. doi: 10.1016/s0304-3940(99)00221-9
  51. Hochstrasser H., Bauer P., Walter U., et al. Ceruloplasmin gene variations and substantia nigra hyperechogenicity in Parkinson disease // Neurology. 2004. Vol. 63, No. 10. P. 1912–1917. doi: 10.1212/01.wnl.0000144276.29988.c3
  52. Song N., Wang J., Jiang H., Xie J. Ferroportin 1 but not hephaestin contributes to iron accumulation in a cell model of Parkinson’s disease // Free Radic. Biol. Med. 2010. Vol. 48, No. 2. P. 332–341. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2009.11.004
  53. Miyake Y., Tanaka K., Fukushima W., et al. Dietary intake of metals and risk of Parkinson’s disease: a case-control study in Japan // J. Neurol. Sci. 2011. Vol. 306, No. 1–2. P. 98–102. doi: 10.1016/j.jns.2011.03.035
  54. Levenson C.W., Cutler R.G., Ladenheim B., et al. Role of dietary iron restriction in a mouse model of Parkinson’s disease // Exp. Neurol. 2004. Vol. 190, No. 2. P. 506–514. doi: 10.1016/j.expneurol.2004.08.014
  55. Maass F., Michalke B., Willkommen D., et al. Cerebrospinal Fluid Iron-Ferritin Ratio as a Potential Progression Marker for Parkinson’s Disease // Mov. Disord. 2021. Online ahead of print. doi: 10.1002/mds.28790
  56. Roberts B.R., Ryan T.M., Bush A.I., et al. The role of metallobiology and amyloid-β peptides in Alzheimer’s disease // J. Neurochem. 2012. No. 120, Suppl. 1. P. 149–166. doi: 10.1111/j.1471-4159.2011.07500.x
  57. Sayre L.M., Perry G., Harris P.L., et al. In situ oxidative catalysis by neurofibrillary tangles and senile plaques in Alzheimer’s disease: a central role for bound transition metals // J. Neurochem. 2000. Vol. 74, No. 1. P. 270–279. doi: 10.1046/j.1471-4159.2000.0740270.x
  58. Perry G., Nunomura A., Hirai K., et al. Is oxidative damage the fundamental pathogenic mechanism of Alzheimer’s and other neurodegenerative diseases? // Free Radic. Biol. Med. 2002. Vol. 33, No. 11. P. 1475–1479. doi: 10.1016/s0891-5849(02)01113-9
  59. Altamura S., Muckenthaler M.U. Iron toxicity in diseases of aging: Alzheimer’s disease, Parkinson’s disease and atherosclerosis // J. Alzheimers. Dis. 2009. Vol. 16, No. 4. P. 879–895. doi: 10.3233/JAD-2009-1010
  60. Guillemot J., Canuel M., Essalmani R., et al. Implication of the proprotein convertases in iron homeostasis: proprotein convertase 7 sheds human transferrin receptor 1 and furin activates hepcidin // Hepatology. 2013. Vol. 57, No. 6. P. 2514–2524. doi: 10.1002/hep.26297
  61. Rogers J.T., Randall J.D., Cahill C.M., et al. An iron-responsive element type II in the 5’-untranslated region of the Alzheimer’s amyloid precursor protein transcript // J. Biol. Chem. 2002. Vol. 277, No. 47. P. 45518–45528. doi: 10.1074/jbc.M207435200
  62. Lei P., Ayton S., Finkelstein D.I., et al. Tau deficiency induces parkinsonism with dementia by impairing APP-mediated iron export // Nat. Med. 2012. Vol. 18, No. 2. P. 291–295. doi: 10.1038/nm.2613

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Основные молекулярные механизмы, участвующие в ферроптозе (адаптировано из [29]). CP — церулоплазмин; Tf — трансферрин; TfR — трансферриновый рецептор; DМТ-1 — транспортер двухвалентных металлов; ROS — актив- ные формы кислорода

Скачать (37KB)

© Литвиненко И.В., Красаков И.В., 2021

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 77760 от 10.02.2020.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах