Генетика и селекция на устойчивость тритикале к возбудителю стеблевой ржавчины Puccinia graminis Pers.: обзор

  • Авторы: Дудникова К.Ю.1,2, Баранова О.А.3, Соловьев А.А.4,5,6, Шингалиев А.С.7, Щуклина О.А.6, Дудников М.В.7
  • Учреждения:
    1. Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный научный центр биологической защиты растений»
    2. Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Всероссийский научно исследовательский институт сельскохозяйственной биотехнологии»
    3. Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Всероссийский научно-исследовательский институт защиты растений»
    4. Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной биотехнологии»
    5. Федеральное государственное бюджетное учреждение «Всероссийский центр карантина растений»
    6. Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Главный ботанический сад имени Н.В. Цицина Российской академии наук
    7. Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Всероссийский научно исследовательский институт сельскохозяйственной биотехнологии»
  • Раздел: Генетические основы эволюции экосистем
  • Статья получена: 26.01.2025
  • Статья одобрена: 30.04.2025
  • Статья опубликована: 30.06.2025
  • URL: https://journals.eco-vector.com/ecolgenet/article/view/646681
  • DOI: https://doi.org/10.17816/ecogen646681
  • ID: 646681


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Стеблевая ржавчина, вызываемая грибом Puccinia graminis f. sp. tritici (Pgt), остается одной из наиболее опасных болезней зерновых культур. В настоящем обзоре представлен анализ эволюции взаимоотношений между тритикале (×Triticosecale Wittmack) и Pgt с момента начала коммерческого культивирования этой культуры, охватывающий исторические аспекты распространения патогена, изменения его вирулентности и адаптации к различным сортам тритикале, а также меры, предпринимаемые селекционерами для повышения устойчивости культуры к заболеванию. Особое внимание уделяется особенностям патологического процесса развития стеблевой ржавчины на тритикале, который, как и у пшеницы, включает стадии прорастания спор, проникновения в ткани растения и формирования уредиопустул. Отмечается, что тритикале, являясь гибридом пшеницы и ржи, подвержена поражению как пшеничной, так и ржаной формами стеблевой ржавчины. Обзор также охватывает современные методы изучения устойчивости тритикале к Pgt, включая использование молекулярных маркеров для идентификации генов резистентности и скрининга селекционного материала, направленные на создание сортов с долговременной и эффективной устойчивостью к стеблевой ржавчине.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Ксения Юрьевна Дудникова

Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный научный центр биологической защиты растений»;
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Всероссийский научно исследовательский институт сельскохозяйственной биотехнологии»

Автор, ответственный за переписку.
Email: saenkok1997@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-3947-0726
SPIN-код: 8655-3066

Аспирант, лаборант-исследователь группы Иммунитета растений ФГБНУ ВНИИСБ

Россия, 350039, Россия, Краснодарский край, г. Краснодар, ул им. Калинина, Д. 62; 127550, Москва, Тимирязевская, 42

Ольга Александровна Баранова

Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Всероссийский научно-исследовательский институт защиты растений»

Email: baranova_oa@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-9439-2102
SPIN-код: 4868-9416
Scopus Author ID: 56989102900

кандидат биологических наук, ведущий научный сотрудник лаборатории иммунитета растений к болезням

Россия, 196608, г. Санкт-Петербург, г. Пушкин, ш. Подбельского, д.3

Александр Александрович Соловьев

Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной биотехнологии»; Федеральное государственное бюджетное учреждение «Всероссийский центр карантина растений»;
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Главный ботанический сад имени Н.В. Цицина Российской академии наук

Email: a.soloviev70@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-4480-8776
SPIN-код: 3431-5168
Scopus Author ID: 35732425900
ResearcherId: Q-1589-2015

заместитель  директора, доктор биологических наук, профессор РАН ФГБУ  «ВНИИКР»

Россия, 127550, Москва, Тимирязевская, 42; 140150, Московская Область, м.о. Раменский, рп Быково, ул Пограничная, д. 32; 127276 г. Москва, Ботаническая ул., дом 4

Андрей Станиславович Шингалиев

Федеральное государственное бюджетное научное учреждение
«Всероссийский научно исследовательский институт сельскохозяйственной биотехнологии»

Email: kronstein491@yandex.ru
ORCID iD: 0009-0002-1488-2721

Аспирант, лаборант-исследователь группы Иммунитета растений ФГБНУ ВНИИСБ

Россия, 127550, Москва, Тимирязевская, 42

Ольга Александровна Щуклина

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Главный ботанический сад имени Н.В. Цицина Российской академии наук

Email: oashuklina@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-3775-6077
SPIN-код: 2110-4103
Scopus Author ID: 57223103933

кандидат сельскохозяйственных наук, и.о. заведующего отделом отдаленной гибридизации, старший научный сотрудник

Россия, 127276, г. Москва, ул. Ботаническая, д. 4

Максим Васильевич Дудников

Федеральное государственное бюджетное научное учреждение
«Всероссийский научно исследовательский институт сельскохозяйственной биотехнологии»

Email: max.dudnikov.07@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-0755-0801
SPIN-код: 7717-1118
Scopus Author ID: 55390914800
ResearcherId: AAE-9434-2020

кандидат биологических наук, ведущий научный сотрудник группы Иммунитета растений ФГБНУ ВНИИСБ

Россия, 127550, Москва, Тимирязевская, 42

Список литературы

  1. Койшыбаев М., Муминджанов Х. Методические указания по мониторингу болезней, вредителей и сорных растений на посевах зерновых культур // Продовольственная и сельскохозяйственная организация Объединенных Наций. 2016.
  2. Вавилов Н.И. Иммунитет растений к инфекционным заболеваниям. Москва: Наука. 1986. 239 c.
  3. Левитин М.М., Федорова И. В. Генетика фитопатогенных грибов. Санкт-Петербург: Наука. 1972. 245 c.
  4. Kazi A.G., Rasheed A., Mujeeb-Kazi A. Biotic stress and crop improvement: a wheat focus around novel strategies // Crop Improvement: New Approaches and Modern Techniques. 2013. P. 239–267. doi: 10.1007/978-1-4614-7028-1_7.
  5. Mergoum M., Singh P.K., Peña R.J., et al. Triticale: A “New” crop with old challenges // Cereals. 2009. P. 267–287. doi: 10.1007/978-0-387-72297-9_9.
  6. Частная селекция полевых культур: учебник / под ред. В.В. Пыльнев, Ю.Б. Коновалов, Т.И. Хупацария, О.А. Буко. Санкт-Петербург: Лань, 2022. 544 с.
  7. Müntzing A. Cytogenetic and breeding studies in Triticale // Hereditas. 1966. Vol. 2. P. 291–300 pp.
  8. Oettler G. The fortune of a botanical curiosity – Triticale: past, present and future // J. Agric. Sci. 2005. Vol. 143. P. 329–346. doi: 10.1017/s0021859605005290.
  9. Lanjouw J. International code of botanical nomenclature // International Bureau for Plant Taxonomy and Nomenclature of the International Association for Plant Taxonomy. 1952.
  10. Meinel A., Franke R. Entstehung, Geschichte und aktuelle Bedeutung des ersten fertilen allopolyploiden Weizen-Roggen-Bastards: des Triticale von W. Rimpau //Archiv fuer Zuechtungsforschung. 1988. Vol. 18.
  11. Kwiatek M.T., Nawracała J. Chromosome manipulations for progress of triticale (×Triticosecale) breeding // Plant Breeding. 2018. Vol. 137, No. 6. P. 823–831. doi: 10.1111/pbr.12652.
  12. Hammer K., Filatenko A.A., Pistrick K. Taxonomic remarks on Triticum L. and ×Triticosecale Wittm. Genetic Resources and Crop Evolution. 2010. Vol. 58 No. 1. P. 3–10. doi: 10.1007/s10722-010-9590-4.
  13. Arseniuk E., Góral T. Triticale biotic stresses – known and novel foes // Triticale. 2015. P. 83–108. doi: 10.1007/978-3-319-22551-7_5.
  14. Fao.org [Internet]. Food and Agriculture Organization of the United Nations [дата обращения: 29.12.2024]. Доступ по ссылке: https://www.fao.org.
  15. Singh R.P, Saari E.E. Biotic stress in triticale // Proceedings of the 2nd International Triticale Symposium. 1990 Oct, Passo Fundo, Brazil. P. 171–181.
  16. Прохорова С.В., Терещук В.С., Немкович А.И. Фитосанитарное состояние посевов тритикале // Известия Академии аграрных наук Республики Беларусь. 2000. № 2. С. 51–56.
  17. Olivera P.D., Pretorius Z.A., Badebo A., Jin Y. Identification of resistance to races of Puccinia graminis f. sp. tritici with broad virulence in triticale (× Triticosecale) // Plant Dis. 2013. Vol. 97, No. 4. P. 479–484. doi: 10.1094/pdis-05-12-0459-re.
  18. Audenaert K., Troch V., Landschoot S., Haesaert G. Biotic stresses in the anthropogenic hybrid triticale (×Triticosecale Wittmack): current knowledge and breeding challenges // Eur. J. Plant Pathol. 2014. Vol. 140, No. 4. P. 615–630. doi: 10.1007/s10658-014-0498-2.
  19. Patpour M., Hovmøller M.S., Rodriguez-Algaba J., et al. Wheat stem rust back in Europe: diversity, prevalence and impact on host resistance // Frontiers in Plant Science. 2022. Vol. 13. P. 882440. doi: 10.3389/fpls.2022.882440.
  20. Пересыпкин В.Ф. Сельскохозяйственная фитопатология. 4-е изд. Москва: Агропромиздат. 1989. 480 с.
  21. Станчева Й. Атлас болезней сельскохозяйственных культур. Часть 3. Болезни полевых культур. Перевод Г. Даниловой / редакторы Васютин А.С., Ширина Л.В., Кулич О.А.. Болгария: Пенсофт. 2003. 175 с.
  22. Ульянищев В.И. Определитель ржавчинных грибов СССР. Ч. 2. Ленинград: Наука. 1978. 384 с.
  23. Доброзракова Т.Л. Сельскохозяйственная фитопатология, 2 – е изд., испр. и доп. / Под ред. М.К. Хохрякова. Ленинград: Колос. 1974. 382с.
  24. Roelfs A.P. Wheat and rye stem rust. Diseases, Distribution, Epidemiology, and Control. Academic Press, Orlando. 1985. P. 3–37. doi: 10.1016/b978-0-12-148402-6.50009-2.
  25. Jin Y., Szabo L.J., Pretorius Z.A., Singh R.P., Ward R., Fetch T. Detection of virulence to resistance gene Sr24 within race TTKS of Puccinia graminis f. sp. tritici // Plant Disease. 2008. Vol. 92, No. 6. P. 923–926. doi: 10.1094/pdis-92-6-0923.
  26. Johnson T., Newton M., Brown A.M. Hybridization of Puccinia graminis tritici with Puccinia graminis secalis and Puccinia graminis agrostidis // Scientific Agriculture. 1932. Vol. 13, No. 3. P. 141–153.
  27. Singh R.P., Hodson D.P., Huerta-Espino J., et al. The emergence of Ug99 races of the stem rust fungus is a threat to world wheat production // Annu. Rev. Phytopathol. 2011. Vol. 49. P. 465–481. doi: 10.1146/annurev-phyto-072910-095423.
  28. Martis M.M. Zhou R., Haseneyer G., et al. Reticulate evolution of the rye genome // The Plant Cell. 2013. Vol. 25. No. 10. P. 3685–3698. doi: 10.1105/tpc.113.114553.
  29. Allen R.F. A cytological study of Pucoinia glnmarum on Bromus marginatus and Triticum vulgare // CABI Databases. 1928. P. 487–513.
  30. Heath M.C. Light and electron microscope studies of the interactions of host and non-host plants with cowpea rust – Uromyces phaseoli var. vignae // Physiol. Plant Pathol. 1974. Vol. 4, No. 4. P. 403–414. doi: 10.1016/0048-4059(74)90025-3.
  31. Harder D.E., Rohringer R., Samborski D.J., Kim W.K., Chong J. Electron microscopy of susceptible and resistant near-isogenic (sr6/Sr6) lines of wheat infected by Puccinia graminis tritici. I. The host–pathogen interface in the compatible (Sr6/P6) interaction // Can. J. Bot. 1978. Vol. 56, No. 23. P. 2955–2966. doi: 10.1139/b78-358.
  32. Staples R.C., Hoch H.C., Epstein L., Laccetti L., Hassouna S. Recognition of host morphology by rust fungi: responses and mechanisms // Can. J. Plant Pathol. 1985. Vol. 7, No. 3. P. 314–322.
  33. Niks R.E. Early abortion of colonies of leaf rust, Puccinia hordei, in partially resistant barley seedlings // Can. J. Bot. 1982. Vol. 60, No. 5. P. 714–723. doi: 10.1139/b82-093.
  34. Niks R.E. Haustorium formation by Puccinia hordei in leaves of hypersensitive, partially resistant, and nonhost plant genotypes // Phytopathology. 1983. Vol. 73, No. 1. P. 64–66. doi: 10.1094/Phyto-73-64.
  35. Jacobs T. Germination and appressorium formation of wheat leaf rust on susceptible, partially resistant and resistant wheat seedlings and on seedlings of other Gramineae // Neth. J. Plant Pathol. 1989. Vol. 95. P. 65–71. doi: 10.1007/BF01997473.
  36. Leonard K.J., Szabo L.J. Stem rust of small grains and grasses caused by Puccinia graminis // Mol. Plant Pathol. 2005. Vol. 6, No. 2. P. 99–111. doi: 10.1111/j.1364-3703.2005.00273.x.
  37. Pardey P.G., Beddow J.M., Kriticos D.J., et al. Right-sizing stem-rust research // Science. 2013. Vol. 340, No. 6129. P. 147–148. doi: 10.1126/science.122970.
  38. Del Pozo A., Méndez-Espinoza A.M., Castillo D. Triticale. In: Elsevier eBooks. 2023. doi: 10.1016/b978-0-323-90537-4.00029-6.
  39. Hei N., Shimelis H.A., Laing M. Appraisal of farmers wheat production constraints and breeding priorities in rust prone agro-ecologies of Ethiopia // Afr. J. Agric. Res. 2017. Vol. 12, No. 12. P. 944–952. doi: 10.5897/ajar2016.11518.
  40. Bender C.M., Boshoff W.H.P., Pretorius Z.A. Infection and colonization of triticale by Puccinia graminis f. sp. tritici // Can. J. Plant Pathol. 2021. Vol. 43. P. 198–210. doi: 10.1080/07060661.2021.1931453.
  41. Лапочкина И.Ф., Баранова О.А., Шаманин В.П., и др. Создание исходного материала яровой мягкой пшеницы для селекции на устойчивость к стеблевой ржавчине (Puccinia graminis Pers. f. sp. tritici), в том числе и к расе Ug99, в России // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2016. Т. 20, № 3. С. 320–328. doi: 10.18699/VJ16.167.
  42. Shamanin V.P., Pototskaya I.V., Shepelev S.S., et al. Stem rust in Western Siberia–race composition and effective resistance genes // Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2020. Vol. 24, No. 2. P. 131. doi: 10.18699/VJ20.608.
  43. Волкова Г.В., Синяк Е.В. Стеблевая ржавчина пшеницы // Защита и карантин растений. 2011. Т. 11. С. 14–16.
  44. Шаманин В.П., Моргунов А.И., Петуховский С.Л., и др. Селекция яровой мягкой пшеницы на устойчивость к стеблевой ржавчине в Западной Сибири // Редакционная коллегия. 2015. С. 287.
  45. Маркелова Т.С. Фитосанитарная ситуация в агроценозе злаковых культур Поволжья // Защита и карантин растений. 2015. Т. 5. С. 22–23.
  46. Волкова Г.В., Кудинова О.А., Мирошниченко О.О. Стеблевая ржавчина - особо опасное заболевание пшеницы // Достижения науки и техники АПК. 2020. Т. 34, № 1. С. 20–25. doi: 10.24411/0235-2451-2020-10104.
  47. Roelfs A.P., Singh R.P., Saari E.E. Rust diseases of wheat: concepts and methods of disease management. CIMMYT. 1992. 81 p.
  48. Zadoks C. Epidemiology of wheat rusts in Europe // Plant Protection Bulletin, F.A.O.. 1965, Vol. 13, No. 5. P. 97–108.
  49. Zadoks J.C., Bouwman J.J. Epidemiology in Europe // In: AP Roelfs, WR Bushnell, eds. The Cereal Rusts Vol. II: Distribution, Epidemiology and Control. Orlando, FL, USA: Academic Press. 1985. P. 329–369. doi: 10.1016/b978-0-12-148402-6.50019-5.
  50. Hermansen J.E. Studies on the Survival and Spread of Cereal Rust and Mildew Diseases in Denmark // Friesia, 1968. Vol. 8, No. 3. P. 5–206.
  51. Olivera P., Newcomb M., Szabo L.J., et al. Phenotypic and Genotypic Characterization of Race TKTTF of Puccinia graminis f. sp. tritici that Caused a Wheat Stem Rust Epidemic in Southern Ethiopia in 2013–14 // Phytopathology. 2015. Vol. 105, No. 7. P. 917–928. doi: 10.1094/phyto-11-14-0302-fi.
  52. Lewis C.M, Persoons A., Bebber D.P., et al. Potential for re-emergence of wheat stem rust in the United Kingdom // Commun. Biol. 2018. Vol. 1, No. 1. P. 13. doi: 10.1038/s42003-018-0013-y.
  53. Bhattacharya S. Deadly new wheat disease threatens Europe’s crops // Nature. 2017. Vol. 542, No. 7640. P. 145–146. doi: 10.1038/nature.2017.21424.
  54. Zamorski C., Schollenberger M., Nowicki B. The role of triticale as the host of wheat and rye pathogens // Genet. Pol. 1994. Vol. 35. P. 143–155.
  55. Skowrońska R., Tomkowiak A., Nawracała J., Kwiatek M.T. Molecular identification of slow rusting resistance Lr46/Yr29 gene locus in selected triticale (× Triticosecale Wittmack) cultivars // J. Appl. Genet. 2020. Vol. 61, No. 3. P. 359–366. doi: 10.1007/s13353-020-00562-8.
  56. Kjellström C. Population structure of Puccinia graminis, the cause of stem rust on wheat, barley, and rye in Sweden // SLU, Dept. of Forest Mycology and Plant Pathology. 2021. 41 p.
  57. Berlin A., Djurle A., Samils B., Yuen J. Genetic variation in Puccinia graminis collected from oats, rye, and barberry // Phytopathology. 2012. Vol. 102, No. 10. P. 1006–1012. doi: 10.1094/phyto-03-12-0041-r.
  58. Olivera P.D., Villegas D., Cantero‐Martínez C., et al. A unique race of the wheat stem rust pathogen with virulence on Sr31 identified in Spain and reaction of wheat and durum cultivars to this race // Plant Pathol. 2022. Vol. 71, No. 4. P. 873–889. doi: 10.1111/ppa.13530.
  59. Singh R.P., Hodson D.P., Jin Y., et al. Current status, likely migration and strategies to mitigate the threat to wheat production from race Ug99 (TTKS) of stem rust pathogen // CABI Reviews. 2006. Vol. 1. P. 1–13. doi: 10.1079/PAVSNNR20061054.
  60. Singh R.P., Hodson D.P., Huerta-Espino J., et al. Will stem rust destroy the world’s wheat crop? // Adv. Agron. 2008. Vol. 98. P. 271–309. doi: 10.1016/s0065-2113(08)00205-8.
  61. Gross M. Pests on the move // Curr. Biol. 2013. Vol. 23, No. 19. P. 855–857. doi: 10.1016/j.cub.2013.09.034.
  62. Bhavani S., Hodson D.P., Huerta-Espino J., Randhawa M.S., Singh R.P. Progress in breeding for resistance to Ug99 and other races of the stem rust fungus in CIMMYT wheat germplasm // Frontiers of Agricultural Science and Engineering. 2019. Vol. 6, No. 3. P. 210–224. doi: 10.15302/j-fase-2019268.
  63. Terefe T. G., Boshoff W. H. P., Park R. F., Pretorius Z. A., Visser B. Wheat Stem Rust Surveillance Reveals Two New Races of Puccinia graminis f. sp. tritici in South Africa During 2016 to 2020 // Plant Dis. 2024. Vol. 108. P. 20–29. doi: 10.1094/pdis-06-23-1120-sr.
  64. Figlan S. et al. Wheat stem rust in South Africa: Current status and future research directions // Afr. J. Biotechnol. 2014. Vol. 13. P. 4188–4199. doi: 10.5897/AJB2014.14100
  65. Рсалиев А.С., Рсалиев Ш.С. Основные подходы и достижения в изучении расового состава стеблевой ржавчины пшеницы // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2019. Т. 22. С. 967–977. doi: 10.18699/VJ18.439.
  66. Park R.F. Stem rust of wheat in Australia // Aust. J. Agric. Res. 2007. Vol. 58, No. 6. P. 558. doi: 10.1071/ar07117.
  67. Upadhyaya N.M., Garnica D.P., Karaoglu H., et al. Comparative genomics of Australian isolates of the wheat stem rust pathogen Puccinia graminis f. sp. tritici reveals extensive polymorphism in candidate effector genes // Frontiers in Plant Science. 2015. Vol. 5. P. 1–13. doi: 10.3389/fpls.2014.00759.
  68. Park R.F. Long term surveys of pathogen populations underpin sustained control of the rust diseases of wheat in Australia // J. Proc. R. Soc. N. S. W. 2015. Vol. 148. P. 15–27.
  69. McIntosh R.A., Wellings C.R., Park R.F. The genes for resistance to stem rust in wheat and triticale // Wheat Rusts: An atlas of resistance genes. Melbourne: CSIRO. 1995. P. 83–146.
  70. Terefe T., Pretorius Z.A., Paul I., et al. Occurrence and pathogenicity of Puccinia graminis f. sp. tritici on wheat in South Africa during 2007 and 2008 // Journal of Plant and Soil. 2010. Vol. 27, No 2. P. 163–167.
  71. Luig N., Watson I. The role of wild and cultivated grasses in the hybridization of formae speciales of Puccinia graminis // Aust. J. Biol. Sci. 1972. Vol. 25, No. 2. P. 335–342:335. doi: 10.1071/bi9720335.
  72. Roelfs A.P. Epidemiology in North America. The Cereal Rusts; Diseases, Distribution, Epidemiology, and Control. Academic Press, Orlando. 1985. Vol. II. P. 403–434. doi: 10.1016/b978-0-12-148402-6.50021-3.
  73. Saari E.E., Prescott J.M. World Distribution in relation to economic losses. The Cereal Rusts Vol. II; Diseases, Distribution, Epidemiology, and Control. Academic Press, Orlando. 1985. P. 259–298. doi: 10.1016/b978-0-12-148402-6.50017-1.
  74. Menzies J.G., Fetch T., Zegeye T. Virulence phenotypes of Puccinia graminis on barley, wheat and oat in Canada from 2020 to 2022 // Can. J. Plant Pathol. 2024. P. 1–7. doi: 10.1080/07060661.2024.2345350.
  75. Solodukhina O.V., Kobylyansky V.D. Problems of winter rye breeding for resistance to brown and stem rusts. In Proceedings of EUCARPIA rye meeting. 2001. P. 4–7.
  76. Boshoff W.H.P. Reaction of South African rye, triticale and barley forage cultivars to stem and leaf rust // S Afr J Plant Soil. 2019. Vol. 36, No. 2. P. 77–82. doi: 10.1080/02571862.2018.1522381.
  77. Gruner P., Schmitt A.K., Flath K., et al. Mapping Stem Rust (Puccinia graminis f. sp. secalis) resistance in self-fertile winter rye populations // Front Plant Sci. 2020. Vol. 11. doi: 10.3389/fpls.2020.00667.
  78. Ишкова Т.И., Берестецкая Л.И., Гасич Е.Л. и др. Диагностика основных грибных болезней хлебных злаков. Издание третье (исправленное). Санкт-Петербург: Всероссийский научно-исследовательский институт защиты растений РАСХН. 2008. 76 с. EDN UBCJJN.
  79. Borlaug N. An Assessment of Race Ug99 in Kenya and Ethiopia and the Potential for Impact in Neighboring Regions and Beyond //Sounding the Alarm on Global Stem Rust. 2005. 30 p.
  80. Góral H., Stojałowski S., Warzecha T., Larsen J., et al. The development of hybrid triticale // Triticale. 2015. P. 33–66. doi: 10.1007/978-3-319-22551-7_3.
  81. Randhawa H.S., Bona L., Graf R.J. Triticale breeding – Progress and prospect // Triticale. 2015. P. 15–32. doi: 10.1007/978-3-319-22551-7_2.
  82. Skowrońska R., Mariańska M., Ulaszewski W., et al. Development of triticale × wheat prebreeding germplasm with loci for slow-rusting resistance // Frontiers in Plant Science. 2020. Vol. 11. 8 p. doi: 10.3389/fpls.2020.00447.
  83. McIntosh R.A., Dubcovsky J., Rogers W., et al. Catalogue of gene symbols for wheat: 2015–2016 supplement // Ann. Wheat Newsl. 2016. Vol. 58. P. 1–18.
  84. McIntosh R.A., Luig N.H., Milne D.L., Cusick J. Vulnerability of triticales to wheat stem rust // Can. J. Plant Pathol. 1983. Vol. 5, No. 2. P. 61–69. doi: 10.1080/07060668309501629.
  85. Singh S.J., McIntosh R.A. Allelism of two genes for stem rust resistance in triticale // Euphytica. 1988. Vol. 38. P. 185-189. doi: 10.1007/bf00040190.
  86. Adhikari K. N., McIntosh R. A. Inheritance of wheat stem rust resistance in triticale // Plant Breed. 1998. Vol. 117, No. 6. P. 505–513. doi: 10.1111/j.1439-0523.1998.tb02199.x.
  87. Zhang J., Wellings C.R., McIntosh R.A., Park R.F. Seedling resistances to rust diseases in international triticale germplasm // Crop Pasture Sci. 2010. Vol. 61, No. 12. P. 1036–1048. doi: 10.1071/CP10252.
  88. Zhang W., Chen S., Abate Z., Nirmala J., Rouse M.N., Dubcovsky J. Identification and characterization of Sr13, a tetraploid wheat gene that confers resistance to the Ug99 stem rust race group // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2017. Vol. 114, No. 45. P. 9483–9492. doi: 10.1073/pnas.1706277114.
  89. Chen S., Rouse M.N., Zhang W., et al. Fine mapping and characterization of Sr21, a temperature-sensitive diploid wheat resistance gene effective against the Puccinia graminis f. sp. tritici Ug99 race group // Theor. Appl. Genet. 2015. Vol. 128, No. 4. P. 645–656. doi: 10.1007/s00122-015-2460-x.
  90. Savin T., Zotova L., Zhumalin A., Gajimuradova A., et al. Effectiveness of the influence of Sr and Lr genes on the field resistance of wheat to stem and leaf rust // Caspian Journal of Environmental Sciences. 2024. Vol. 22, No. 1. P. 43–51. doi: 10.22124/cjes.2024.7481.
  91. Spetsov P., Daskalova N. Resistance to pathogens in wheat-rye and triticale genetic stocks // J. Plant Pathol. 2022. Vol. 104, No. 1. P. 99–114. doi: 10.1007/s42161-021-01019-5.
  92. Marais G.F. An evaluation of three Sr27-carrying wheat × rye translocations // South African Journal of Plant and Soil. 2001. Vol. 18, No. 3. P.135–136. doi: 10.1080/02571862.2001.10634417.
  93. Mago R., Spielmeyer W., Lawrence G., et al. Identification and mapping of molecular markers linked to rust resistance genes located on chromosome 1RS of rye using wheat-rye translocation lines // Theor. Appl. Genet. 2002. Vol. 104, No. 8. P. 1317–1324. doi: 10.1007/s00122-002-0879-3.
  94. Баранова О.А., Лапочкина И.Ф., Анисимова А.В., и др. Идентификация генов Sr у новых источников устойчивости мягкой пшеницы к расе стеблевой ржавчины Ug99 с использованием молекулярных маркеров // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2015. Т. 19, № 3. С. 316–322. doi: 10.18699/vj15.041.
  95. Baranova O, Solyanikova V, Kyrova E, et al. Evaluation of resistance to stem rust and identification of Sr genes in Russian spring and winter wheat cultivars in the Volga region // Agriculture. 2023. Vol. 13, No. 3. P. 635. doi: 10.3390/agriculture13030635.
  96. Jin Y., Pretorius Z. A., Singh R. P. New virulence within race TTKS (Ug99) of the stem rust pathogen and effective resistance genes // Phytopathology. 2007. Vol. 97, No. 7. P. 137.
  97. Olivera P.D., Sikharulidze Z., Dumbadze R., et al. Presence of a Sexual Population of Puccinia graminis f. sp. tritici in Georgia Provides a Hotspot for Genotypic and Phenotypic Diversity // Phytopathology. 2019. Vol. 109, No. 12. P. 2152–2160. doi: 10.1094/phyto-06-19-0186-r.
  98. McIntosh R.A., Wellings C.R., Park R.F. Wheat rusts: an atlas of resistance genes. CSIRO publishing. 1995. 200 p.
  99. Upadhyaya N.M., Mago R., Panwar V., et al. Genomics accelerated isolation of a new stem rust avirulence gene – wheat resistance gene pair // Nature Plants. 2021. Vol. 7, No. 9. P. 1220–1228. doi: 10.1038/s41477-021-00971-5.
  100. Isaiah A., James O.O., Pascal P.O.O. Evaluation of triticale (x. Triticosecale Wittmack) genotypes for adult plant resistance to stem rust (Puccinia graminis f. sp. tritici) // Afr. J. Plant Sci. 2019. Vol. 13, No. 3. P. 70–80. doi: 10.5897/ajps2018.1733.
  101. Simons K., Abate Z., Chao S., et al. Genetic mapping of stem rust resistance gene Sr13 in tetraploid wheat (Triticum turgidum ssp. durum L.) // Theor. Appl. Genet. 2010. Vol. 122, No. 3. P. 649–658. doi: 10.1007/s00122-010-1444-0.
  102. The T.T., Latter B.D.H., McIntosh R.A., et al. Grain yields of near-isogenic lines with added genes for stem rust resistance. In: Proceedings of the seventh international wheat genetics symposium, held at Cambridge, UK. 1988. P. 901–906.
  103. Brown G.N. A seedling marker for gene Sr2 in wheat. Proceedings of the 10th Australian plant breeding conference. 1993. P. 139–140. doi: 10.1007/s00122-010-1482-7.
  104. Roelfs A.P., Casper D.H., Long D.L., Roberts J.J. . Races of Puccinia graminis in the United States in 1989 // Plant Dis. 1991. Vol. 75. P. 1127–1130. doi: 10.1094/PD-75-1127.
  105. Harder D.E., Dunsmore K.M. Incidence and virulence of Puccinia graminis. f. sp. tritici on wheat and barley in Canada in 1991 // Can. J. Plant Pathol. 1993. Vol. 15, No. 1. P. 37–40. doi: 10.1080/07060669309500848.
  106. Nirmala J., Chao S., Olivera P., et al. Markers Linked to Wheat Stem Rust Resistance Gene Sr11 Effective to Puccinia graminis f. sp. tritici Race TKTTF // Phytopathology. 2016. Vol. 106, No. 11. P. 1352–1358. doi: 10.1094/phyto-04-16-0165-r.
  107. Долматович Т.В., Булойчик А.А. ДНК-технология идентификации генов устойчивости пшеницы к возбудителю бурой ржавчины. Методические рекомендации. Министерство сельского хозяйства и продовольствия Республики Беларусь, Национальная академия наук Беларуси, Институт генетики и цитологии НАН Беларуси. Минск. 2013. 64 с.
  108. Olivera P.D., Szabo L.J., Kokhmetova A., et al. Puccinia graminis f. sp. tritici population causing recent wheat stem rust epidemics in Kazakhstan is highly diverse and includes novel virulence pathotypes // Phytopathology. 2022. Vol. 112, No. 11. P. 2403–2415. doi: 10.1094/phyto-08-21-0320-r.
  109. Саенко К.Ю., Дудников М.В. Гены восприимчивости злаков к ржавчинным болезням (S-гены) // Защита растений от вредных организмов. 2023. С. 342–344.
  110. Саенко К.Ю., Дудников М.В. Поиск генов устойчивости идентифицированных у пшеницы в геноме тритикале // Биотехнология в растениеводстве, животноводстве и сельскохозяйственной микробиологии : Сборник тезисов докладов XXII Всероссийской международной конференции молодых ученых, посвященной памяти академика РАСХН Георгия Сергеевича Муромцева, Москва, 07–09 декабря 2022 года. Москва: ФГБНУ ВНИИСБ. 2022. С. 69–70.
  111. Тырышкин Л.Г., Колесова М.А. Использование молекулярно-генетического и фитопатологического методов для идентификации генов эффективной устойчивости к листовой ржавчине у образцов эгилопсов // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. 2020. Т. 181. № 2. С. 87–95.
  112. Долматович Т.В., Булойчик, А.А., Гриб, и др., Скрининг сортообразцов конкурсного испытания озимого и ярового тритикале на присутствие генов устойчивости к бурой, стеблевой и желтой ржавчине пшеницы // Земледелие и селекция в Беларуси. 2022. № 52. С. 225–231.
  113. Долматович Т.В., Булойчик А.А. ДНК-анализ сортов озимого и ярового тритикале, районированных на территории Республики Беларусь, на наличие генов устойчивости к бурой, стеблевой и желтой ржавчине // Вестник защиты растений. 2016. Т. 89. №. 3. С. 65–66.
  114. Волкова Г.В. и др. Устойчивость к ржавчинам образцов пшеницы и тритикале в разные фазы онтогенеза // Юг России Экология Развитие. 2024. Т. 18. С. 161–172. doi: 10.18470/1992-1098-2023-4-161-172.
  115. Yerzhebayeva R.S., Abekova A.M., Bastaubaeva S.O., et al. Identification of the leaf and stem rust resistance genes in breeding lines of triticale // Sakh. Svekla. 2017. Vol. 8. P. 32–37.
  116. Yerzhebayeva R.S., Bazylova T.A., Babissekova D.I., et al. Studying a Spring Triticale Collection for Resistance to Leaf and Stem Rusts using Allele-Specific Markers // Cytology and Genetics. 2020. Vol. 54, No. 6. P. 546–554. doi: 10.3103/s0095452720060043.
  117. Mago R., Brown-Guedira G., Dreisigacker S., et al. An accurate DNA marker assay for stem rust resistance gene Sr2 in wheat // Theoretical and Applied Genetics. 2010. Vol. 122, No. 4. P. 735–744. doi: 10.1007/s00122-010-1482-7.
  118. Weng Y., Azhaguvel P., Devkota R.N., Rudd J.C. PCR‐based markers for detection of different sources of 1AL.1RS and 1BL.1RS wheat-rye translocations in wheat background // Plant Breed. 2007. Vol. 126, No. 5. P. 482–486. doi: 10.1111/j.1439-0523.2007.01331.x.
  119. Mago R., Zhang P., Vautrin S. et al. The wheat Sr50 gene reveals rich diversity at a cereal disease resistance locus // Nature Plants. 2015. Vol. 1. P. 1–3. doi: 10.1038/nplants.2015.186.
  120. Stakman E.C., Stewart D.M., Loegering W.Q. Identification of physiologic races of Puccinia graminis var. tritici. Identification of physiologic races of Puccinia graminis var. tritici. Washington: USDA. 1962. 53 p.
  121. Terefe T.G., Visser B., Pretorius Z.A. Variation in Puccinia graminis f. sp. tritici detected on wheat and triticale in South Africa from 2009 to 2013 // Crop Prot. 2016. Vol. 86. P. 9–16. doi: 10.1016/j.cropro.2016.04.006.
  122. Miedaner T., Flath K., Gruner P., Schmitt A. K., Schulz P. Looking ahead: races and resistances to stem rust in European wheat and triticale. Proceedings of the 73rd conference of the vereinigung der pflanzenzüchter und saatgutkaufleute österreichs, Raumberg-Gumpenstein, Irdning, Austria, 21-23 November 2022. P. 23–24. DOI:0.5281/zenodo.7875597.
  123. Kwiatek M.T., Noweiska A., Bobrowska R., et al. Novel Tetraploid triticale (Einkorn wheat × Rye) – A source of stem rust resistance // Plants. 2023. Vol. 12, No. 2. P. 278. doi: 10.3390/plants12020278.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Эко-Вектор,


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 89324 от 21.04.2025.