Полиморфизм гена GC, кодирующего витамин D-связывающий белок, у коренного населения Cибири

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Проведен анализ нуклеотидных последовательностей экзонов и прилегающих к ним некодирующих участков гена GC у 108 представителей различных этнических групп коренного населения Сибири. Полиморфизм обнаружен в четырех нуклеотидных позициях: несинонимичные замены в локусах rs4588 и rs7041, синонимичная замена в локусе rs4752 и замена в некодирующей области в локусе rs3733359. Выявлено семь гаплотипов гена GC. Из них 4 гаплотипа кодируют изоформу Gc1F, 2 гаплотипа — изоформу Gc1S и 1 гаплотип — изоформу Gc2. Обнаружены межрегиональные различия по распределению вариантов гена GC: на северо-востоке и в центральной части Сибири наблюдается самая высокая распространенность вариантов Gc1F и Gc1F/Gc1F, а на юге и западе Сибири чаще всего распространены варианты Gc2, Gc1S/Gc2 и Gc2/Gc2. По всей видимости, в случае гена GC ген-средовые взаимодействия направлены на формирование баланса между активностью витамин D-связывающего белка и уровнем 25-гидроксивитамина D в сыворотке крови.

Полный текст

ВВЕДЕНИЕ

Витамин D имеет важнейшее значение в функционировании организма, поскольку участвует в процессах обмена кальция и фосфора, транспорта кальция в костную ткань, иммуномодуляции и регуляции энергетического метаболизма клетки. Поступление витамина D в организм осуществляется двумя путями: холекальциферол D3 синтезируется в коже под воздействием ультрафиолетового излучения, а эргокальциферол D2 поступает в организм только с пищей. Поскольку на территории Северной Евразии (севернее 35° с. ш.) уровень ультрафиолетового излучения недостаточен для круглогодичного синтеза холекальциферола D3 в коже, то большое значение приобретает экзогенное потребление человеком витамина D [1]. Транспортная форма витамина D (25(OH)D, кальцидиол) синтезируется в печени, а затем в почках превращается в активную гормональную форму витамина D (1,25(OH)2D), кальцитриол). Кальцитриол далее участвует в активации рецепторов витамина D (VDR), которые, в свою очередь, задействованы в процессах регуляции транскрипции различных генов [2].

Основным переносчиком витамина D3 и его производных является витамин D-связывающий белок (DBP), относящийся к Gc-глобулинам крови (Group-specific component) [3]. Этот полифункциональный гликопротеин состоит из трех структурных доменов, отвечающих за связывание с витамином D и жирными кислотами, актином, а также с клеточной мембраной нейтрофилов [4]. Белок DBP кодируется расположенным на хромосоме 4 геном GC, представленном 13 экзонами [5]. Установлено, что гликопротеин DBP представляет собой смесь модифицированных полипептидов, степень гликозилирования которых определяется генотипом [5]. Описаны три основных изоформы DBP: Gc1F, Gc1S и Gc2. Белковые варианты Gc1F и Gc1S, характеризующиеся аминокислотной заменой D432E, могут быть превращены в активный белок GcMAF — макрофаг-активирующий фактор, который играет большую роль в развитии антиракового ответа, при некоторых вирусных и нейродегенеративных заболеваниях [6, 7]. Между тем, вариант Gc2 не может быть превращен в GcMAF, поскольку в нем отсутствует основной сайт О-связанного гликозилирования сахаридов из-за аминокислотной замены T436K. В связи с этим генотипы Gc2/Gc2 ассоциируются с повышенным риском развития некоторых заболеваний [6, 7].

Исследования показали, что в распределении Gc-вариантов в популяциях человека имеются региональные особенности, которые, по всей видимости, обусловлены различиями Gc-вариантов по способности связывать 25(OH)D. В ряде исследований было показано, что содержание Gc в плазме крови определяется генотипически: самые высокие концентрации Gc наблюдаются у носителей аллеля Gc1F, самые низкие — у носителей аллеля Gc2 [8, 9]. Соответственно, самым высоким сродством к 25(OH)D характеризуются носители вариантов Gc1F и Gc1S, а самым низким — варианты Gc2. Распределение частот вариантов Gc коррелирует с экологическими и климатогеографическими факторами (интенсивность солнечной радиации, высота над уровнем моря, тип питания и др.) [10–12]. Самые высокие частоты варианта Gc1F выявлены в наиболее темнопигментированных группах населения, а самые высокие частоты Gc2 — у населения регионов с относительно низкой солнечной освещенностью [10, 13, 14]. В.А. Спицыным установлена также положительная корреляция частоты аллеля Gc2 с географической широтой, и отрицательная — с уровнем среднегодовой температуры [11].

Следует отметить, что за годы исследований иммунобиохимического полиморфизма (с использованием методов электрофореза и изоэлектрофокусирования белков) накоплены большие массивы данных о частотах вариантов Gc1 и Gc2 в популяциях Северной Евразии, включая популяции бывшего Советского Союза [15]. В последние годы базы данных генетического полиморфизма пополнились результатами полногеномных и полноэкзомных исследований, в связи с чем у исследователей имеется возможность оценить распространенность генетических вариантов локусов rs4588 и rs7041, определяющих основные Gc-варианты, в популяциях человека. Между тем, в международных базах данных сведений об аллельном и гаплотипическом разнообразии гена GC в популяциях России пока очень мало. В настоящей работе представлены результаты анализа полиморфизма гена GC у коренного населения Сибири, основываясь на данных о полноэкзомном полиморфизме [16–18].

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Проанализированы опубликованные ранее с участием автора настоящей работы данные о полноэкзомном полиморфизме в популяциях коренного населения Северо-Восточной Сибири (эскимосы, чукчи, коряки; n = 28), Центральной Сибири (эвены, эвенки, якуты; n = 32), Южной Сибири (тувинцы, шорцы, алтайцы, буряты; n = 28) и Западной Сибири (кеты, ханты, манси, селькупы, ненцы, нганасаны; n = 20) [16–18]. Выполнен анализ полиморфизма всех экзонов и прилегающих к ним участков интронов гена GC, расположенного на хромосоме 4 между позициями 72607410 и 72669758. Нумерация нуклеотидов приводится согласно референтной последовательности генома человека GRCh37.p13 (hg19).

Для выявления гаплотипов из генотипов гена GC с неизвестной гаметной фазой применяли алгоритм ELB пакета программ Arlequin 3.01 [19]. Статистическую значимость различий частот аллелей и генотипов анализируемых локусов гена GC в сравниваемых группах определяли с помощью точного критерия Фишера. Степень межпопуляционной дифференциации по частотам вариантов гена GC оценивали с помощью значений FST (Arlequin 3.01).

Для сравнительного анализа использовали информацию о частотах вариантов популяционного полиморфизма гена GC, находящуюся в базах данных dbSNP (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/snp/), 1000 Genomes (https://www.internationalgenome.org/), gnomAD и ExAC (https://gnomad.broadinstitute.org), ALFRED (https://alfred.med.yale.edu).

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

Анализ нуклеотидных последовательностей экзонов и прилегающих к ним некодирующих участков гена GC у 108 представителей различных этнических групп коренного населения Сибири показал наличие полиморфизма в 4 нуклеотидных позициях (табл. 1). В экзонах обнаружено три замены (несинонимичные замены в локусах rs4588 и rs7041 и синонимичная замена в локусе rs4752) и одна замена выявлена в некодирующей области (rs3733359). Как видно из распределения частот аллелей гена GC в региональных выборках Сибири (табл. 2), вариант rs4588-T значимо реже встречается на северо-востоке и в центральной части Сибири, чем на юге и западе Сибири (р < 0,003, точный тест Фишера) и в других восточноазиатских популяциях, и также редок, как и в африканских популяциях. Аллель rs4752-G с самой высокой частотой обнаружен в центрально-сибирской выборке (у эвенов, эвенков и якутов), а на юге и западе Сибири его частота значимо ниже (р < 0,0004). По сведениям базы данных ALFRED, в Восточной Азии наиболее высокие частоты аллеля rs4752-G характерны для якутов (32 и 47,6 % в разных выборках). Аллель rs3733359-A чаще всего наблюдался на северо-востоке Сибири (32,1 %) и реже всего в западносибирской выборке (7,5 %) (табл. 2). По данным базы ALFRED, частота этого варианта у тувинцев и якутов составила 17 и 19,5 % соответственно, что находится в диапазоне частот, зарегистрированных в сибирских выборках по результатам настоящей работы.

 

Таблица 1

Полиморфизм гена GC у коренного населения Сибири

№ позиции

Нуклеотидная позиция хромосомы 4

Идентификатор полиморфизма

Локализация замены

Тип нуклеотидной и аминокислотной замен

1

72618323

rs4588

Экзон

G → T, Thr436Lys

2

72618334

rs7041

Экзон

A → C, Asp432Glu

3

72622566

rs4752

Экзон

A → G, Cys318Cys

4

72649774

rs3733359

5′-utr

G → A

Примечание. Тип замены показан в направлении от предкового к производному варианту. 5′-utr — 5′-нетранслируемый участок.

 

Таблица 2

Распространенность аллелей гена GC в популяциях

Аллель

Частота аллелей, %

Северо-Восточная Сибирь (n = 28)

Центральная Сибирь (n = 32)

Южная Сибирь (n = 28)

Западная Сибирь (n = 20)

Восточная Азия (n = 1008)*

Африка (n = 1322)*

rs4588-T

5,4

3,1

28,6

27,5

26,1

6,7

rs7041-C

28,6

39,1

30,4

52,5

30,0

9,4

rs4752-G

32,1

46,9

16,1

12,5

7,9

29,7

rs3733359-A

32,1

17,2

25,0

7,5

40,0

27,4

Примечание. n — размер выборки. Приводятся частоты производных аллелей согласно данным табл. 1. *База данных dbSNP (www.ncbi.nlm.nih.gov/projects/SNP).

 

Анализ нуклеотидных последовательностей гена GC позволил выявить 7 гаплотипов, характеризующихся различными сочетаниями аллелей в локусах rs4588, rs7041, rs4752 и rs3733359 (табл. 3). Как известно, комбинации вариантов полиморфизма в локусах rs4588 и rs7041 определяют основные варианты изоформ DBP: диплотипу rs4588-G/rs7041-A соответствует вариант Gc1F, rs4588-G/rs7041-C — вариант Gc1S и rs4588-T/rs7041-A — вариант Gc2. Поэтому на основании генотипических данных распределение Gc-аллелей и генотипов в исследованных сибирских выборках реконструируется таким образом, как это показано в табл. 4. Как видно, выборки существенно различаются по частотам Gc2, Gc1S/Gc2 и Gc2/Gc2: самые высокие частоты этих вариантов обнаружены на юге и западе Сибири. И, наоборот, самая высокая распространенность вариантов Gc1F и Gc1F/Gc1F наблюдается на северо-востоке и в центральной части Сибири. Эти результаты, в целом, соответствуют полученным ранее данным, что минимальные частоты Gc2 характерны для населения северо-восточной части Сибири [12].

 

Таблица 3

Частота гаплотипов гена GC у коренного населения Сибири

№ гаплотипа*

Гаплотип

Кодируемая изоформа белка Gc

Частота гаплотипа в популяции, %

Северо-Восточная Сибирь (n = 28)

Центральная Сибирь (n = 32)

Южная Сибирь (n = 28)

Западная Сибирь (n = 20)

1

GAGG

Gc1F

32,0

45,4

16,0

12,5

2

GCAG

Gc1S

28,6

35,9

28,6

52,5

3

GAAG

Gc1F

3,6

0

1,8

2,5

4

GAAA

Gc1F

30,4

10,9

23,2

5,0

5

TAAG

Gc2

5,4

3,1

28,6

25,0

6

GAGA

Gc1F

0

1,6

0

0

7

GCAA

Gc1S

0

3,1

1,8

2,5

Примечание. n — размер выборки. * Номера гаплотипов, сформированных аллельными вариантами локусов, указанных в том же порядке, как в табл. 1.

 

Таблица 4

Частота изоформ и генотипов белка Gc у коренного населения Сибири

Изоформы и генотипы Gc

Частота в популяции, %

Северо-Восточная Сибирь (n = 28)

Центральная Сибирь (n = 32)

Южная Сибирь (n = 28)

Западная Сибирь (n = 20)

Gc1F

66,0

57,8

41,0

20,0

Gc1S

28,6

39,1

30,4

55,0

Gc2

5,4

3,1

28,6

25,0

Gc1F/Gc1F

42,9

28,1

10,7

0

Gc1F/Gc1S

35,7

53,1

21,4

30,0

Gc1S/Gc1S

10,7

12,5

14,3

25,0

Gc1F/Gc2

10,7

6,3

39,3

10,0

Gc1S/Gc2

0

0

10,7

25,0

Gc2/Gc2

0

0

3,6

10,0

 

Анализ генетической дифференциации исследованных выборок населения Сибири по частотам указанных в табл. 3 гаплотипов гена GC показал, что выборки дифференцируются в две группы (табл. 5). Северо-восточная и центральносибирская выборки по значениям FST значимо отличаются от выборок из Южной и Западной Сибири (р < 0,05). Вклад в дифференциацию вносят не только локусы rs4588 и rs7041, но и два других локуса (rs4752 и rs3733359), указанных в табл. 3. Так, изоформа Gc1F кодируется четырьмя гаплотипами, но самыми частыми из них являются два гаплотипа, характеризующиеся производными аллелями в локусах rs4752 и rs3733359 (гаплотипы 1 и 4). Примечательно, что комбинация производных аллелей rs4752-G и rs3733359-A наблюдалась лишь однократно в гаплотипе 6. Для изоформы Gc1S в сибирских выборках наблюдаются два гаплотипа, различающиеся заменами в локусе rs3733359 (гаплотипы 2 и 7), а Gc2 кодируется единственным гаплотипом 5 (табл. 3).

 

Таблица 5

Попарные различия FST по распределению гаплотипов гена GC в популяциях Сибири

Популяция

1

2

3

4

1. Северо-Восточная Сибирь

0

2. Центральная Сибирь

0,023

0

3. Южная Сибирь

0,038*

0,098**

0

4. Западная Сибирь

0,111**

0,119**

0,035

0

Примечание. Уровни значимости: * р < 0,05, ** р < 0,01.

 

Полиморфизм локусов rs4588 и rs7041 имеет функциональное значение, поскольку определяемые ими изоформы Gc характеризуются различным сродством к 25(OH)D. Между тем, в отношении локусов rs4752 и rs3733359 информации довольно мало, но известно, что оба локуса содержат замены, повышающие риск развития артрита периферических суставов и увеита у корейских пациентов с анкилозирующим спондилитом — группы заболеваний суставов и позвоночника [20]. Так, для носителей варианта rs3733359-A показано уменьшение риска периферического артрита, а у носителей варианта rs4752-G выявлен увеличенный риск увеита. Эти данные могут иметь отношение к сибирским популяциям, поскольку среди коренного населения Северо-Востока Сибири (у эскимосов, чукчей и коряков) обнаружена достаточно высокая распространенность спондилоартропатий [21].

Таким образом, проведенное исследование показало, что распределение аллелей и генотипов гена GC у коренного населения Сибири имеет региональный характер, что, по всей видимости, связано с особенностями метаболизма витамина D и его производных в тех или иных группах населения. Размеры исследованных выборок невелики, в связи с чем продолжение исследований полиморфизма гена GC на популяционном уровне имеет большие перспективы в плане изучения ген-средовых взаимодействий с учетом D-витаминного статуса коренного населения, этнической принадлежности, влияния экологических условий (уровня естественного освещения и сезонности), специфики питания [22]. О влиянии такого рода факторов на распределение вариантов полиморфизма гена GC свидетельствуют полученные в настоящей работе данные о высокой распространенности гаплотипов, кодирующих Gc1F-изоформу, на Северо-Востоке Азии в условиях низкой интенсивности солнечной радиации. Кроме этого, важным фактором, способствующим дефициту витамина D, может быть сравнительно высокое содержание меланина в коже представителей арктических народов, который препятствует проникновению в кожу ультрафиолетовых лучей и затрудняет тем самым синтез витамина D3 [23]. В какой-то мере дефицит витамина D у аборигенов Севера мог быть компенсирован особенностями традиционной диеты, включающей богатые витамином D продукты морского зверобойного промысла, рыбы и оленины, однако вклад пищевого фактора в формирование D-витаминного статуса коренных народов Сибири пока изучен мало. Представляется очень важным также расширить исследования гаплотипического разнообразия гена GC, основываясь на результатах секвенирования как кодирующих, так и некодирующих участков гена. Это обусловлено тем, что отбор наиболее оптимальных вариантов гена GC (не только для основных локусов rs4588 и rs7041, но и для дополнительных локусов, расположенных в интронах и регуляторных участках) в различных региональных группах человека является результатом балансирования между активностью витамин D-связывающего белка и уровнем 25(OH)D в крови [24]. Полученные в настоящей работе данные также свидетельствуют, что особенности распределения гаплотипов по четырем локусам гена GC в сибирских популяциях могут иметь функциональный смысл.

×

Об авторах

Борис Аркадьевич Малярчук

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки «Институт биологических проблем Севера» Дальневосточного отделения Российской академии наук

Автор, ответственный за переписку.
Email: malyarchuk@ibpn.ru
ORCID iD: 0000-0002-0304-0652

д-р биол. наук, заведующий лабораторией генетики

Россия, Магадан

Список литературы

  1. Козлов А.И., Атеева Ю.А. Витамин D и особенности питания различных групп коми // Вестник Московского университета. Серия XXIII. Антропология. – 2011. – № 4. – С. 25–34. [Kozlov AI, Ateeva JuA. Vitamin D i osobennosti pitaniya razlichnykh grupp komi. Vestnik Moskovskogo universiteta. Seriya 23. Antropologiya. 2011;(4):25-34. (In Russ.)]
  2. Zenata O, Vrzal R. Fine tuning of vitamin D receptor (VDR) activity by post-transcriptional and post-translational modifications. Oncotarget. 2017;8(21):35390-35402. https://doi.org/10.18632/oncotarget.15697.
  3. Daiger SP, Schanfield MS, Cavalli-Sforza LL. Group-specific component (Gc) proteins bind vitamin D and 25-hydroxyvitamin D. Proc Natl Acad Sci USA. 1975;72(6):2076-2080. https://doi.org/10.1073/pnas.72.6.2076.
  4. Verboven C, Rabijns A, De Maeyer M, et al. A structural basis for the unique binding features of the human vitamin D-binding protein. Nat Struct Biol. 2002;9(2):131-136. https://doi.org/10.1038/nsb754.
  5. Malik S, Fu L, Juras DJ, et al. Common variants of the vitamin D binding protein gene and adverse health outcomes. Crit Rev Clin Lab Sci. 2013;50(1):1-22. https://doi.org/10.3109/10408363.2012.750262.
  6. Останин А.А., Кирикович С.С., Долгова Е.В., и др. Тернистый путь макрофаг-активирующего фактора (GcMAF): от открытия к клинической практике // Вавиловский журнал генетики и селекции. – 2019. – Т. 23. – № 5. – С. 624–631. [Ostanin AA, Kirikovich SS, Dolgova EV, et al. A thorny pathway of macrophage activating factor (GcMAF): from bench to bedside. Vavilov journal of genetics and breeding. 2019;23(5):624-631. (In Russ.)]. https://doi.org/10.18699/VJ19.535.
  7. Morales EM. GcMAF: a polemic or a highly promising molecule? World Scientific News. 2017;65:20-36.
  8. Kueppers F, Harpel B. Group-specific component (Gc)’subtypes’ of Gc1 by isoelectric focusing in US blacks and whites. Hum Hered. 1979;29(4): 242-249. https://doi.org/10.1159/000153052.
  9. Coppenhaver D, Kueppers F, Schidlow D, et al. Serum concentrations of vitamin D-binding protein (group-specific component) in cystic fibrosis. Hum Genet. 1981;57(4):399-403. https://doi.org/10.1007/bf00281693.
  10. Constans J, Lefevre-Witier P, Richard P, Jaeger G. Gc (vitamin D binding protein) subtype polymorphism and variants distribution among Saharan, Middle East, and African populations. Am J Phys Anthropol. 1980;52(3):435-441. https://doi.org/10.1002/ajpa.1330520315.
  11. Спицын В.А. Биохимический полиморфизм человека. – М.: Изд-во МГУ, 1985. – 216 с. [Spitsyn VA. Biokhimicheskiy polimorfism cheloveka. Moscow: Publishing house Moscow State University; 1985. 216 p. (In Russ.)]
  12. Спицын В.А., Лебедева И.А., Шнейдер Ю.В., и др. Полиморфизм белков и ферментов сыворотки крови // Генофонд и геногеография народонаселения / под ред. Ю.Г. Рычкова. Т. 1. Генофонд и геногеография населения России и сопредельных стран. – СПб.: Наука, 2000. – С. 146–181. [Spitsyn VA, Lebedeva IA, Shneider YuV, et al. Polymorphism of blood serum proteins and enzymes. In: Yu.G. Rychkov, editor. Gene Pool and Genegeography of population. Vol. 1. Gene pool of population of Russia and contiguous countries. Saint Petersburg: Nauka; 2000. Р. 146-181. (In Russ.)]
  13. Спицын В.А., Ирисова О.В. Этнографический аспект в изучении группоспецифического компонента (Gc) // Вопросы антропологии. – 1973. – № 45. – С. 85–93. [Spitsyn VA, Irisova OV. Etnograficheskiy aspekt v izuchenii gruppospetsificheskogo komponenta (Gc). Voprosy antropologii. 1973;(45): 85-93. (In Russ.)]
  14. Mourant AE, Tills D, Domaniewska-Sobczak K. Sunshine and the geographical distribution of the alleles of the Gc system of plasma proteins. Hum Genet. 1976;33(3):307–314. https://doi.org/10.1007/bf00286857.
  15. Шнейдер Ю.В., Лебедева И.А., Петрищев В.Н., Раутиан Г.С. Системы белков и ферментов сыворотки крови // Генофонд и геногеография народонаселения / под ред. Ю.Г. Рычкова. Т. 1. Генофонд и геногеография населения России и сопредельных стран. – СПб.: Наука, 2000. – С. 512-539. [Shneider YuV, Lebedeva IA, Petrishchev VN, Rautian GS. Systems of blood proteins and enzymes. In: Rychkov YuG, editor. Gene Pool and Genegeography of population. Vol. 1. Gene pool of population of Russia and contiguous countries. Saint Petersburg: Nauka; 2000. P. 512-539. (In Russ.)]
  16. Clemente FJ, Cardona A, Inchley CE, et al. A selective sweep on a deleterious mutation in the CPT1A gene in Arctic populations. Am J Hum Genet. 2014;95(5):584-589. https://doi.org/10.1016/j.ajhg.2014.09.016.
  17. Малярчук Б.А., Деренко М.В., Денисова Г.А., Литвинов А.Н. Распространенность арктического варианта гена CPT1A в популяциях коренного населения Сибири // Вавиловский журнал генетики и селекции. – 2016. – Т. 20. – № 5. – С. 571–575. [Malyarchuk BA, Derenko MV, Denisova GA, Litvinov AN. Distribution of the arctic variant of the CPT1A gene in indigenous populations of Siberia. Vavilov journal of genetics and breeding. 2016;20(5): 571-575.(In Russ.)]. https://doi.org/10.18699/VJ16.130.
  18. Pagani L, Lawson DJ, Jagoda E, et al. Genomic analyses inform on migration events during the peopling of Eurasia. Nature. 2016;538(7624): 238-242. https://doi.org/10.1038/nature19792.
  19. Excoffier L, Laval G, Schneider S. Arlequin (version 3.0): an integrated software package for population genetics data analysis. Evol Bioinform Online. 2005;(1):47-50. https://doi.org/10.1177/117693430500100003.
  20. Jung KH, Kim TH, Sheen DH, et al. Associations of vitamin d binding protein gene polymorphisms with the development of peripheral arthritis and uveitis in ankylosing spondylitis. J Rheumatol. 2011;38(10):2224-2229. https://doi.org/10.3899/jrheum.101244.
  21. Фефелова В.В., Хамнагадаев И.И., Поликарпов Л.С. Антиген HLA-B27 и спондилоартропатии у арктических монголоидов // Бюллетень СО РАМН. – 2010. – Т. 30. – № 6. – С. 136–139. [Fefelova VV, Khamnagadaev II, Polikarpov LS. HLA-B27 antigen and spondylarthropathies in arctic mongoloids. Byulleten’ SO RAMN. 2010;30(6): 136-139. (In Russ.)]
  22. Козлов А.И., Вершубская Г.Г. 25-гидроксивитамин D в различных группах населения Севера России // Физиология человека. - 2019. – Т. 45. – № 5. – С. 125–136. [Kozlov AI, Vershubsky GG. Systematic review on 25-hydroxyvitamin D levels in various populations of the Russian North. Human Physiology. 2019;45(5):125-136. (In Russ.)]. https://doi.org/10.1134/S0131164619050060.
  23. Clemens TL, Adams JS, Henderson SL, Holick MF. Increased skin pigment reduces the capacity of skin to synthesise vitamin D3. Lancet. 1982;319(8263):74-76. https://doi.org/ 10.1016/s0140-6736(82)90214-8.
  24. Mozzi A, Forni D, Cagliani R, et al. Albuminoid genes: evolving at the interface of dispensability and selection. Genome Biol Evol. 2014;6(11):2983-2997. https://doi.org/10.1093/gbe/evu235.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Малярчук Б.А., 2020

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 65617 от 04.05.2016.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах