Comparison of methods for assessing the inflammatory response of the lower parts of the female reproductive tract

Cover Page

Abstract


Hypothesis/aims of study. A lack of timely diagnosis and treatment of inflammatory diseases of the lower genital tract in a woman can lead to serious reproductive disorders. The detection of inflammation is an important component of the diagnosis of these diseases. This study was undertaken to compare methods for detection of local inflammation in women with complaints of vaginal discharge.

Study design, materials, and methods. A total of 87 women having vaginal discharge were enrolled in the study. For the detection of inflammation, vaginal discharge was examined using microscopy and reverse transcriptase polymerase chain reaction (the ImmunoQuantex® test, DNA-Technology Ltd., Moscow, Russia).

Results. Vaginal infections caused by opportunistic microorganisms were detected in 27 women (31%), as follows: candidal vulvovaginitis (CVV) in 10 patients (11.5%), aerobic vaginitis (AV) in 14 patients (16.1%), and bacterial vaginosis (BV) in 14 patients (16.1%), with 8 (9.2%) of them having BV combined with CVV, AV or both infections. The results of the two methods fully agreed in the analysis of samples from women with CVV and AV as vaginal infections characterized by local inflammation. Testing samples from women with BV, which is a non-inflammatory syndrome, as well as women without vaginal infections resulted in significant discrepancies between the two methods. The sensitivity and specificity of the ImmunoQuantex® test compared to the microscopic method were 85.7% and 48.9%, respectively.

Conclusion. The new reverse transcriptase polymerase chain reaction based test for the evaluation of expression profiles of selected genes of immune response enables to assess the local immune status in the vagina. Determination of the presence or absence of inflammatory reaction in the vagina can be used as a diagnostic criterion for resolving discrepancies between laboratory data and clinical manifestations, as well as for choosing effective therapy.


Введение

Воспалительные заболевания нижних отделов генитального тракта женщин занимают лидирующее место в структуре гинекологической патологии [1] и могут протекать как с выраженными клиническими проявлениями, так и бессимптомно. Несвоевременные диагностика и лечение способны привести к возникновению серьезных нарушений репродуктивной сферы.

Нормальная микрофлора женских половых путей чрезвычайно разнообразна и представлена аэробными и анаэробными бактериями. У большинства здоровых женщин детородного возраста вагинальный биотоп на 95–98 % представлен лактобациллами. Именно они выполняют основную барьерную функцию и обеспечивают высокий уровень противомикробной защиты [2]. При нарушении баланса между физиологической и условно-патогенной микрофлорой влагалища возникают дисбиотические состояния, такие как бактериальный вагиноз (БВ), а также развиваются воспалительные процессы во влагалище, такие как аэробный вагинит (АВ). Эти заболевания характеризуются значительным уменьшением количества лактобацилл, что приводит к снижению концентрации молочной кислоты и перекиси водорода и, как следствие, повышению рН среды влагалища, что способствует размножению условно-патогенных микроорганизмов. Принципиальным различием между этими состояниями является наличие выраженной воспалительной реакции при АВ и ее отсутствие при БВ. БВ и АВ, наряду с кандидозным вульвовагинитом (КВВ), относятся к инфекционным заболеваниям влагалища, при которых женщины предъявляют различные жалобы. Самой частой причиной обращения к врачу становятся жалобы на наличие патологических выделений из половых путей.

Микроскопическое исследование отделяемого влагалища служит основным методом лабораторной диагностики этих заболеваний. До недавнего времени микроскопия вагинального мазка была единственным методом, позволяющим по числу лейкоцитов оценить выраженность воспалительной реакции влагалища, хотя до сих пор не существует четких норм вагинальных лейкоцитов и критериев их подсчета. В связи с этим наиболее информативным следует считать количество лейкоцитов относительно количества эпителиальных клеток влагалища [3].

Альтернативным исследованием с целью обнаружения воспалительного процесса является способ определения иммунологических показателей в отделяемом влагалища методом количественной ОТ-ПЦР, дающий возможность идентифицировать локальную воспалительную реакцию по интегральной оценке транскрипционных профилей генов иммунного ответа [4].

Инфекции, вызванные условно-патогенны ми микроорганизмами, служат своеобразным маркером дефекта иммунной системы. Препятствуя проникновению патогена, клетки слизистой оболочки влагалища не только создают механический барьер, но и запускают целый ряд системных и локальных механизмов защиты, представленных компонентами врожденного и приобретенного иммунитета [5]. При проникновении патогена в организм включается первая линия иммунологической защиты. Первичный воспалительный ответ на инфекционный агент опосредован специфическими толл-подобными рецепторами (toll-like receptors, TLRs), которые активируются при контакте с клеточной стенкой микроорганизмов и распознают патоген. В результате этого начинается синтез провоспалительных цитокинов, способствующих дальнейшей активации клеток врожденного иммунитета. При этом цитокины выполняют две основные функции: вовлекают в защитную реакцию другие клетки (например, эпителиальные, эндотелиальные, дендритные) и способствуют миграции лейкоцитов из кровотока в очаг воспаления [6]. Изменение экспрессионного профиля генов иммунного ответа может быть объективным признаком локального воспаления. Недавно разработанная отечественная тест-система «ИммуноКвантэкс» (ООО «НПО ДНК-Технология», Москва) позволяет провести объективную диагностику воспалительного процесса молекулярно-биологическим методом на основе интегральной оценки экспрессии мРНК генов врожденного иммунитета (IL-1β, IL-10, IL-18, TNF-α, TLR4, GATA3, CD68).

Целью исследования было сравнение теста на основе ОТ-ПЦР, предназначенного для оценки локального воспаления нижних отделов репродуктивного тракта, с микроскопическим методом у женщин, предъявляющих жалобы на выделения из половых путей.

Материалы и методы

Обследованная популяция

В исследовании участвовали женщины репродуктивного возраста, обратившиеся к гинекологу с жалобами на выделения из половых путей, зуд/жжение, неприятный запах, дизурию , диспареунию. Критериями исключения были беременность, выявление возбудителей инфекций, передаваемых половым путем (ИППП) (Chlamydia trachomatis, Neisseria gonorrhoeae, Trichomonas vaginalis, Mycoplasma genitalium), клинические признаки цервицита (слизисто-гнойные выделения из цервикального канала и/или кровоточивость шейки матки), прием интравагинальных и/или системных анти биотиков и интравагинальных пробиотиков в течение последних 4 недель, использование гормональных внутриматочных или вагинальных контрацептивов.

Клинические материалы

Клиническим материалом для исследования служило отделяемое влагалища, полученное двумя стерильными одноразовыми тампонами с заднебоковых стенок влагалища. Часть биоматериала с одного тампона наносили на два предметных стекла, которые окрашивали по Граму и метиленовым синим для проведения микроскопического исследования, после чего тампон помещали в транспортную среду с муколитиком ТСМ (ООО «Интерлабсервис», Москва) для анализа на ДНК возбудителей ИППП. Содержимое второго тампона использовали для оценки профиля экспрессии мРНК генов иммунного ответа с применением теста «ИммуноКвантэкс». Во избежание деградации РНК биоматериал переносили в пластиковые пробирки объемом 1,5 мл, содержащие 500 мкл среды для стабилизации РНК в биопробах (ООО «НПО ДНК-Технология»).

Методы

При микроскопической оценке воспалительной реакции влагалища воспаление констатировали при соотношении количества полиморфноядерных лейкоцитов и эпителиальных клеток > 1 [3]. Диагностику БВ проводили с применением метода Нуджента. Он основан на микроскопической оценке в препарате трех морфотипов микроорганизмов: 1) морфотип лактобациллы — крупные грамположительные палочки; 2) морфотип Gardnerella и Bacteroides — мелкие грамотрицательные или грамвариабельные палочки, кокки и коккобациллы; 3) морфотип Mobiluncus — изогнутые грамотрицательные или грамвариабельные палочки. При обнаружении данных морфотипов по каждой позиции присваивали баллы, которые затем суммировали. Число баллов от 0 до 3 расценивали как нормоценоз, от 4 до 6 — промежуточный вариант, а от 7 до 10 — БВ [7].

Диагностику АВ осуществляли при помощи микроскопического исследования по методу G. Donders [8]. Метод учитывает соотношение лактобациллярной и нелактобациллярной микрофлоры, количество лейкоцитов и их соотношение с количеством эпителиальных клеток, лизосомальную активность лейкоцитов (токсичные лейкоциты выглядят округлыми и раздутыми с лизосомами внутри), отношение количества парабазальных эпителиоцитов к количеству эпителиоцитов поверхностных и средних слоев. Суммирование баллов по каждой позиции дает общий счет от 0 до 10. Данные критерии также оценивают баллами и суммируют. При числе баллов < 3 констатировали отсутствие АВ, 3 или 4 — легкую форму АВ, 5 или 6 — умеренную форму АВ, > 6 — тяжелую форму АВ (соответствует десквамативному вагиниту).

Для выявления ДНК Chlamydia trachomatis, Neisseria gonorrhoeae, Trichomonas vaginalis, Mycoplasma genitalium использовали тест «Фемофлор СКРИН» (ООО «НПО ДНК-Техно ло гия», Москва), основанный на количественной ПЦР в реальном времени. ДНК для ПЦР выделяли с применением набора реагентов ДНК-сорб-АМ (ООО «НекстБио», Москва).

Для определения локальной воспалительной реакции методом ОТ-ПЦР использовали тест «ИммуноКвантэкс» (ООО «НПО ДНК-Тех нология»). РНК выделяли при помощи набора реагентов Проба-МЧ-НК-200S (ООО «НПО ДНК-Технология»). При постановке теста «ИммуноКвантэкс» после выделения суммар ного пула ДНК/РНК проводили реакцию обрат ной транскрипции для получения матрицы мРНК, комплементарной ДНК, которую в дальнейшем амплифицировали методом ПЦР. После этапа амплификации по показателю инди каторного цикла рассчитывали уровень экспрессии мРНК генов врожденного иммунитета: интерлейкинов IL-1β, IL-10, IL-18, фактора некроза опухоли – α, толл-подобных рецепторов TLR4, транскрипционного фактора GATA3, гена, кодирующего трансмембранный белок CD68. В качестве референтного гена исполь зовали ген β2-микроглобулина. На основе интегральной оценки уровней экспрессии генов получали автоматическое заключение о наличии или отсутствии локальной воспалительной реакции по величине индекса воспаления (ИВ). Значение ИВ менее 50 % оценивали как отсут ствие воспалительной реакции, ИВ более 60 % — как наличие воспаления, а диапазон значения 50–60 % — как «нельзя исключить воспаление» (серая зона).

Результаты

В исследование было включено 87 женщин в возрасте от 19 до 46 лет (средний возраст — 32 года). Жалобы на выделения из половых путей предъявляли 98,3 % женщин, зуд/жжение — 38,3 %, неприятный запах выделений — 23,3 %, дизурию — 6,7 %, диспареунию — 8,3 %. При гинекологическом осмотре у 91,7 % женщин регистрировали патологические выделения из влагалища, у 3,3 % — гиперемию вульвы и/или влагалища.

У всех пациенток были исключены возбудители ИППП. Вагинальные инфекции, вызванные условно-патогенными микроорганизмами, были выявлены у 27 женщин (31 %): КВВ — у 10 (11,5 %), АВ — у 14 (16,1 %) и БВ — у 14 (16,1 %), при этом у 8 (9,2%) из них БВ сочетался с КВВ, АВ или с обеими инфекциями. Структура вагинальных инфекций в обследованной популяции представлена на рис. 1.

 

Рис. 1. Структура вагинальных инфекций в обследованной популяции: БВ — бактериальный вагиноз; КВВ — кандидозный вульвовагинит; АВ — аэробный вагинит

Fig. 1. Vaginal infection structure in the study patient population: BV — bacterial vaginosis; CVV — candidal vulvovaginitis; AV — aerobic vaginitis

 

Результаты исследования вагинальных образцов на наличие воспаления с использованием микроскопического метода и теста «ИммуноКвантэкс», стратифицированные по различным вагинальным инфекциям и их сочетаниям, представлены в табл. 1. Результаты, полученные при помощи обоих методов, полностью совпали при анализе проб от женщин с КВВ и АВ — вагинальных инфекций, для которых характерно воспаление. В то же время при тестировании проб от женщин с БВ — невоспалительным синдромом, а также женщин, у которых вагинальные инфекции не выявлялись, наблюдались существенные расхождения. Так, все 6 проб от пациенток, у которых обнаружили только БВ, были отрицательны на наличие воспаления микроскопическим методом и положительны — методом ОТ-ПЦР. Далее, 6 из 22 проб (27,3 %) от пациенток без вагинальных инфекций, положительных при микроскопическом исследовании, были отрицательны при тестировании методом ОТ-ПЦР, а 16 из 38 проб (42 %), отрицательных при микроскопическом исследовании, были положительны при тестировании методом ОТ-ПЦР. Анализ суммарных результатов тестирования вагинальных проб с применением двух методов продемонстрировал, что из 42 проб, положительных на наличие воспаления при исследовании микроскопическим методом, 36 были положительны при использовании метода ОТ-ПЦР (чувствительность — 85,7 %), а из 45 проб, отрицательных при исследовании микроскопическим методом, 22 были отрицательны при использовании метода ОТ-ПЦР (специфичность — 48,9 %).

 

Таблица 1. Результаты исследования вагинальных образцов на наличие воспаления с использованием микроскопического метода и метода обратно-транскриптазной полимеразной цепной реакции (тест «ИммуноКвантэкс®»)

Table 1. Results of testing vaginal samples for the presence of inflammation using microscopy and reverse transcriptase polymerase chain reaction (the ImmunoQuantex® test)

Вагинальная инфекция

ПМЯЛ/ЭК > 1 (есть воспаление)

ПМЯЛ/ЭК ≤ 1 (нет воспаления)

ИВ ≥ 60 (есть воспаление)

ИВ < 50 (нет воспаления)

ИВ ≥ 60 (есть воспаление)

ИВ < 50 (нет воспаления)

БВ

0

0

6

0

КВВ

5

0

0

1

АВ

7

0

0

0

БВ и КВВ

1

0

0

0

БВ и АВ

4

0

0

0

БВ, КВВ и АВ

3

0

0

0

Не выявлены

16

6

16

22

Всего

36

6

22

23

Примечание. ПМЯЛ/ЭК — отношение числа полиморфноядерных лейкоцитов к числу эпителиальных клеток, определенное с помощью микроскопического метода; ИВ — индекс воспаления, вычисленный с применением ОТ-ПЦР (тест «ИммуноКвантэкс»); БВ — бактериальный вагиноз; АВ — аэробный вагинит; КВВ — кандидозный вульвовагинит.

 

Обсуждение результатов

С целью оценки состояния местного иммунитета был исследован уровень содержания цитокинов и количество лейкоцитов в отделяемом влагалища у женщин с жалобами на выделения из половых путей. В ходе исследования про водили сравнение нового отечественного теста «ИммуноКвантэкс», основанного на методе ОТ-ПЦР, с микроскопией окрашенных мазков. Оба лабораторных метода позволяют определить наличие локального воспаления нижних отделов женского репродуктивного тракта.

При анализе проб от женщин с вагинальными инфекциями (КВВ и АВ) наблюдалось полное совпадение результатов обоих методов, которые указывали на наличие воспаления во влагалище: повышенное количество лейкоцитов при микроскопии и выявление профиля экспрессии генов, соответствующего картине локального воспаления при постановке теста «ИммуноКвантэкс». Воспалительная реакция при AB связана с увеличением в составе микрофлоры аэробных микроорганизмов, таких как Enterobacteriaceae spp., Staphylococcus spp., Streptococcus spp., Enterococcus spp. Полагают, что аэробные микроорганизмы способны вызвать воспалительную реакцию при сравнительно умеренном их количестве 105 КОЕ/мл [9]. Грибы рода Candida также являются аэробами и могут вызывать как самостоятельную инфекцию КВВ, так и сочетаться с БВ и АВ. При кандидозе характер иммунного ответа может варьировать от толерантности цитокинов к антигенам кандид до резко выраженной воспалительной реакции [10].

В нашем исследовании были получены абсо лютно противоположные результаты при тестировании биоматериала от женщин, у которых обнаружили только БВ: все пробы были отрицательны на наличие воспаления микроскопическим методом и положительны — методом ОТ-ПЦР. Данные микроскопического исследования подтверждают мнение большинства исследователей о том, что БВ — это невоспалительный синдром. БВ характеризуется резким снижением или полным отсутствием лактобацилл и их заменой на полимикробные ассоциации анаэробов, таких как Gargenerella vaginalis, Atopobium vaginae, Mobiluncus spp., Bacteroides spp., Fusobacterium spp., Prevotella spp., Prophyromanas spp., Peptostreptococcus spp. и др. [2, 11]. Основное клиническое проявление БВ представлено специфическими, гомогенными с неприятным запахом выделениями из влагалища. При осмотре пациенток с БВ не отмечается воспаления слизистой вульвы и влагалища. В половине случаев заболевание протекает бессимптомно. Хотя сам по себе БВ не является непосредственной причиной воспалительных заболеваний органов малого та за, но даже при бессимптомном носительстве наличие БВ ассоциировано с высоким риском цервицита и воспалительных заболеваний орга нов малого таза [12, 13]. БВ повышает риск заражения ИППП [14–18], вирусом иммунодефицита человека ВИЧ-1 [19], вирусом простого герпеса II типа [20], вирусом папилломы человека [21], может стать причиной преждевременных родов [22, 23]. Полагают, что анаэробные бактерии, ассоциированные с БВ, выделяют вещества, ингибирующие миграцию нейтрофилов во влагалище [24]. Так, G. vaginalis может продуцировать гемолизин, способный разрушать лейкоциты, а сиалидазы, продуцируемые G. vaginalis и некоторыми другими анаэробами, ингибируют фагоцитоз. Это объясняет отсутствие повышенного количества лейкоцитов в вагинальном биотопе при выявлении воспалительного профиля генов цитокинов.

Далее, при оценке проб от женщин без ва гинальных инфекций мы также получили существенные расхождения результатов на наличие воспалительной реакции: 27,3 % проб, положительных при микроскопическом исследовании, были отрицательны при тестировании методом ОТ-ПЦР, и 42 % проб, отрицательных при микроскопии, были положительны при определении транскрипционного профиля генов иммунного ответа. Большинство (98 %) обратившихся женщин предъявляли жалобы на выделения, и почти у всех из них (91,8 %) эти жалобы были подтверждены при осмотре. Это может объясняться тем, что изменения в транскрипции генов цитокинов опережают появление нейтрофилов и служат отличительным признаком ранней стадии воспаления [4], в связи с чем можно говорить о более высокой информативности молекулярно-биологического метода. Также нужно учитывать, что у части пациенток из группы женщин без БВ, АВ или КВВ тестом «Фемофлор СКРИН» были выявлены Mycoplasma spp. или Ureaplasma spp. в небольшом количестве (102,0–104,0) (данные по микоплазмам и уреаплазмам не представлены в результатах, так как оценка воспаления при колонизации этими бактериями не входила в задачи исследования). По мнению некоторых авторов, микоплазмы и уреаплазмы считаются комменсальными бактериями и маловирулентны [25], но все-таки способны инициировать неблагоприятные воспалительные реакции в зависимости от микробной нагрузки, продолжительности воздействия, полимикробной ассоциации и общего состояния иммунной системы женщины [26]. Положительный результат при микроскопии, не подтвержденный ОТ-ПЦР, может свидетельствовать о том, что воспалительная лейкоцитарная реакция во влагалище, вероятно, соответствует профилю экспрессии генов цитокинов, не вошедших в состав данной диагностической тест-системы (например, IL-6 или IL-8) [27].

Таким образом, при клинически выраженных формах воспаления влагалища результаты ОТ-ПЦР и микроскопического исследования были идентичны, а при наличии незначительной и умеренной воспалительной реакции, в отсутствие АВ и КВВ, методом ОТ-ПЦР было получено большее количество положительных результатов, чем при оценке лейкоцитарной реакции. Чувствительность и специфичность нового теста «ИммуноКвантэкс» относительно широко распространенного микроскопического метода при оценке локальной воспалительной реакции во влагалище составили 85,7 и 48,9 % соответственно.

Несмотря на то что микроскопия зачастую является практически единственным методом лабораторной диагностики, позволяющим оценить выраженность воспалительной реакции во влагалище, необходимо учитывать ряд факторов, влияющих на количество лейкоцитов, видимых в окрашенном препарате: это техника взятия биоматериала, нанесение его на стекло и проведение процедуры окрашивания препарата. Также стоит помнить об отсутствии четких критериев норм содержания лейкоцитов в вагинальном отделяемом и изменении их количества в зависимости от дня менструального цикла женщины.

Таким образом, оценка роли локального иммунного статуса в патогенезе воспалительных заболеваний нижних отделов генитального тракта женщин представляет собой важный диагностический критерий, позволяющий отли чить бессимптомное носительство условно-патогенной микрофлоры от проявлений вагинита, что способствует оптимизации выбора эффективной терапии и профилактике рецидивов. С помощью теста на основе ОТ-ПЦР можно определить профиль экспрессии генов иммун ного ответа в отделяемом влагалища и дать объективную оценку локального воспалительного статуса. Он может быть предложен в случаях рецидивирования БВ и других инфек ций или при расхождении данных лабораторных исследований и клинических проявлений у пациенток.

Olga V. Budilovskaya

Research Institute of Obstetrics, Gynecology, and Reproductology named after D.O. Ott

Author for correspondence.
Email: o.budilovskaya@gmail.com

Russian Federation, Saint Petersburg

Researcher. The Laboratory of Microbiology

Elena V. Shipitsyna

Research Institute of Obstetrics, Gynecology, and Reproductology named after D.O. Ott

Email: shipitsyna@inbox.ru

Russian Federation, Saint Petersburg

PhD, DSci (Biology), Leading Researcher. The Laboratory of Microbiology

Nadezhda A. Pereverzeva

Microbiomed Ltd

Email: studentugpi@mail.ru

Russian Federation, Saint Petersburg

MD

Nadezda E. Vorobyova

Research Institute of Obstetrics, Gynecology, and Reproductology named after D.O. Ott

Email: sergiognezdo@yandex.ru

Russian Federation, Saint Petersburg

MD, PhD, Researcher. The Department of Endocrinology of Reproduction

Elena V. Spasibova

Research Institute of Obstetrics, Gynecology, and Reproductology named after D.O. Ott

Email: elena.rybina@gmail.com

Russian Federation, Saint Petersburg

MD. The Laboratory of Microbiology

Aleksey N. Grigoryev

Research Institute of Obstetrics, Gynecology, and Reproductology named after D.O. Ott

Email: galexey08081978@gmail.com

Russian Federation, Saint Petersburg

Researcher. The Laboratory of Microbiology

Alevtina M. Savicheva

Research Institute of Obstetrics, Gynecology, and Reproductology named after D.O. Ott

Email: savitcheva@mail.ru

Russian Federation, Saint Petersburg

MD, PhD, DSci (Medicine), Professor, Honoured Scholar of the Russian Federation, the Head of the Laboratory of Microbiology

  1. Бантьева М.Н., Прилипко Н.С. Возрастные аспекты заболеваемости взрослого населения по обращаемости в амбулаторно-поликлинические учреждения // Социальные аспекты здоровья населения. - 2013. - Т. 32. - № 4. - С. 7-21. [Bantyeva MN, Prilipko NS. Age aspects of the disease incidence rate of adult population. Sotsial’nye aspekty zdorov’ya naseleniya. 2013;32(4):7-21. (In Russ.)]
  2. Кира Е.Ф. Бактериальный вагиноз. - М.: МИА, 2012. [Kira EF. Bakterial’nyy vaginoz. Moscow: MIA; 2012. (In Russ.)]
  3. Савичева А.М., Соколовский Е.В., Домейка М. Порядок проведения микроскопического исследования мазков из урогенитального тракта: методические рекомендации для лечащих врачей. - СПб.: Изд-во Н-Л, 2007. [Savicheva AM, Sokolovskiy EV, Domeyka M. Poryadok provedeniya mikroskopicheskogo issledovaniya mazkov iz urogenital’nogo trakta: metodicheskie rekomendatsii dlya lechashchikh vrachey. Saint Petersburg: Izdatel’stvo N-L; 2007. (In Russ.)]
  4. Bourmenskaya O, Bayramova G, Nepsha O, et al. Vaginal smear TNF-alpha, IL18, TLR4, and GATA3 mRNA levels correlate with local inflammation. International Journal of Biomedicine. 2014;4(4):204-208.
  5. Донецкова А.Д., Шарова Н.И., Бурменская О.В., и др. Выработка цитокинов эпителиальными клетками тимуса человека // Российский аллергологический журнал. - 2007. - № 3-1. - С. 70. [Donetskova AD, Sharova NI, Burmenskaya OV, et al. Vyrabotka tsitokinov epitelial’nymi kletkami timusa cheloveka. Rossiiskii allergologicheskii zhurnal. 2007;(3-1):70. (In Russ.)]
  6. Ярилин А.А. Иммунология: учебник. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2010. [Yarilin AA. Immunologiya: uchebnik. Moscow: GEOTAR-Media; 2010. (In Russ.)]
  7. Nugent RP, Krohn MA, Hillier SL. Reliability of diagnosing bacterial vaginosis is improved by a standardized method of gram stain interpretation. J Clin Microbiol. 1991;29(2):297-301.
  8. Donders GG. Definition and classification of abnormal vaginal flora. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol. 2007;21(3):355-373. doi: 10.1016/j.bpobgyn.2007.01.002.
  9. Lamont RF, Taylor-Robinson D. The role of bacterial vaginosis, aerobic vaginitis, abnormal vaginal flora and the risk of preterm birth. BJOG. 2010;117(1):119-120. doi: 10.1111/j.1471-0528.2009.02403.x.
  10. Бурменская О.В., Байрамова Г.Р., Непша О.С., и др. Состояние локального иммунитета при хроническом рецидивирующем вульвовагинальном кандидозе // Иммунология. - 2011. - Т. 32. - № 3. - С. 154-159. [Burmenskaya OV, Bairamova GR, Nepsha OS, et al. The state of local immunity in patients presenting with chronic recurring vulvovaginal candidosis. Immunologiia. 2011;32(3):154-159. (In Russ.)]
  11. Савичева А.М., Тапильская Н.И., Шипицына Е.В., Воробьева Н.Е. Бактериальный вагиноз и аэробный вагинит как основные нарушения баланса вагинальной микрофлоры. Особенности диагностики и терапии // Акушерство и гинекология. - 2017. - № 5. - C. 24-31. [Savicheva AM, Tapil’skaya NI, Shipitsyna EV, Vorobyeva NE. Bacterial vaginosis and aerobic vaginitis as major vaginal microflora balance disorders: Diagnostic and therapeutic characteristics. Obstetrics and Gynecology. 2017;(5): 24-31. (In Russ.)]. doi: 10.18565/aig.2017.5.24-31.
  12. Marrazzo JM, Wiesenfeld HC, Murray PJ, et al. Risk factors for cervicitis among women with bacterial vaginosis. J Infect Dis. 2006;193(5):617-624. doi: 10.1086/500149.
  13. Taylor BD, Darville T, Haggerty CL. Does bacterial vaginosis cause pelvic inflammatory disease? Sex Transm Dis. 2013;40(2):117-122. doi: 10.1097/OLQ.0b013e31827c5a5b.
  14. Bautista CT, Wurapa E, Sateren WB, et al. Bacterial vaginosis: a synthesis of the literature on etiology, prevalence, risk factors, and relationship with chlamydia and gonorrhea infections. Mil Med Res. 2016;3:4. doi: 10.1186/s40779-016-0074-5.
  15. Bitew A, Abebaw Y, Bekele D, Mihret A. Prevalence of Bacterial Vaginosis and Associated Risk Factors among Women Complaining of Genital Tract Infection. Int J Microbiol. 2017;2017:4919404. doi: 10.1155/2017/4919404.
  16. Mastromarino P, Di Pietro M, Schiavoni G, et al. Effects of vaginal lactobacilli in Chlamydia trachomatis infection. Int J Med Microbiol. 2014;304(5-6):654-661. doi: 10.1016/j.ijmm.2014.04.006.
  17. Breshears LM, Edwards VL, Ravel J, Peterson ML. Lactobacillus crispatus inhibits growth of Gardnerella vaginalis and Neisseria gonorrhoeae on a porcine vaginal mucosa model. BMC Microbiol. 2015;15:276. doi: 10.1186/s12866-015-0608-0.
  18. Brotman RM, Bradford LL, Conrad M, et al. Association between Trichomonas vaginalis and vaginal bacterial community composition among reproductive-age women. Sex Transm Dis. 2012;39(10):807-812. doi: 10.1097/OLQ.0b013e3182631c79.
  19. Shukair SA, Allen SA, Cianci GC, et al. Human cervicovaginal mucus contains an activity that hinders HIV-1 movement. Mucosal Immunol. 2013;6(2):427-434. doi: 10.1038/mi.2012.87.
  20. Cherpes TL, Meyn LA, Krohn MA, et al. Association between acquisition of herpes simplex virus type 2 in women and bacterial vaginosis. Clin Infect Dis. 2003;37(3):319-325. doi: 10.1086/375819.
  21. Kero K, Rautava J, Syrjanen K, et al. Association of asymptomatic bacterial vaginosis with persistence of female genital human papillomavirus infection. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2017;36(11):2215-2219. doi: 10.1007/s10096-017-3048-y.
  22. Bretelle F, Rozenberg P, Pascal A, et al. High Atopobium vaginae and Gardnerella vaginalis Vaginal Loads are Associated with Preterm Birth. Clin Infect Dis. 2015;60(6):860-867. doi: 10.1093/cid/ciu966.
  23. Тютюнник В.Л., Курчакова Т.А., Кан Н.Е., и др. Локальные факторы врожденного иммунитета в прогнозировании преждевременных родов // Акушерство и гинекология. - 2016. - № 10. - С. 59-63. [Tyutyunnik VL, Kurchakova TA, Kan NE, et al. Local factors of innate immunity in the prediction of preterm birth. Obstetrics and Gynecology. 2016;(10):59-63. (In Russ.)]. doi: 10.18565/aig.2016.10.59-63.
  24. Mirmonsef P, Gilbert D, Zariffard MR, et al. The effects of commensal bacteria on innate immune responses in the female genital tract. Am J Reprod Immunol. 2011;65(3):190-195. doi: 10.1111/j.1600-0897.2010.00943.x.
  25. Marovt M, Kese D, Kotar T, et al. Ureaplasma parvum and Ureaplasma urealyticum detected with the same frequency among women with and without symptoms of urogenital tract infection. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2015;34(6):1237-1245. doi: 10.1007/s10096-015-2351-8.
  26. Glaser K, Silwedel C, Fehrholz M, et al. Ureaplasma isolates stimulate pro-inflammatory CC chemokines and matrix metalloproteinase-9 in neonatal and adult monocytes. PLoS One. 2018;13(3):e0194514. doi: 10.1371/journal.pone.0194514.
  27. Тютюнник В.Л., Карапетян А.Е., Донников А.Е., и др. Изменения локального и системного иммунитета при оппортунистических инфекциях влагалища у беременных // Акушерство и гинекология. - 2013. - № 8. - С. 25-29. [Tyutyunnik VL, Karapetyan TE, Donnikov AE, et al. Local and systemic immune changes in opportunistic vaginal infections in pregnant women. Obstetrics and Gynecology. 2013;(8):25-29. (In Russ.)]

Supplementary files

Supplementary Files Action
1. Fig. 1. Vaginal infection structure in the study patient population: BV — bacterial vaginosis; CVV — candidal vulvovaginitis; AV — aerobic vaginitis View (69KB) Indexing metadata

Views

Abstract - 161

PDF (Russian) - 115

PlumX


Copyright (c) 2018 Budilovskaya O.V., Shipitsyna E.V., Pereverzeva N.A., Vorobyova N.E., Spasibova E.V., Grigoryev A.N., Savicheva A.M.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.