Содержание ретинола и альфа-токоферола у женщин с разными уровнями фосфатидилэтанола в I триместре беременности

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Обоснование. Алкоголь негативно влияет на плод, особенно на начальном сроке гестации. Этанол способствует образованию свободных радикалов, инактивируемых системой антиоксидантной защиты. Важными компонентами этой системы являются жирорастворимые витамины — ретинол и альфа-токоферол, поэтому проблема оптимизации обеспеченности такими витаминами во время беременности чрезвычайно актуальна. Как гипо-, так и гипервитаминоз могут способствовать развитию осложнений беременности и возникновению аномалий развития плода.

Цель — оценить содержание ретинола и альфа-токоферола в крови у женщин в I триместре беременности в зависимости от уровня фосфатидилэтанола (биомаркера потребления алкоголя).

Материалы и методы. В исследование включены 167 беременных в I триместре и 37 небеременных женщин репродуктивного возраста. Для выявления факта и количества употребления алкоголя определяли уровень фосфатидилэтанола 16:0/18:1 в плазме крови методом высокоэффективной жидкостной хроматографии-масс-спектрометрии. В зависимости от концентрации фосфатидилэтанола выделены группы женщин, употребляющих разные дозы алкоголя: первая группа — ≤8 нг/мл (непьющие; n=63), вторая — от 8 до 45 нг/мл (пьющие менее одной дозы; n=68); третья — ≥45 нг/мл (пьющие более одной дозы; n=36). Содержание ретинола и альфа-токоферола определяли флуориметрическим методом.

Результаты. Уровни альфа-токоферола и ретинола были выше во второй и третьей группах, чем в группе контроля (р <0,05). При сравнении содержания исследуемых витаминов относительно показателя в группе небеременных женщин оказалось, что уровень альфа-токоферола был ниже в группах непьющих беременных (р <0,001) и пьющих менее одной дозы алкоголя (р=0,012), а ретинола — только в группе непьющих женщин (р <0,001).

Заключение. Употребление беременными алкоголя даже в малых дозах влияет на содержание ретинола и альфа-токоферола, что может повышать риск осложнений гестационного процесса и развития пороков со стороны плода.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Ольга Андреевна Никитина

Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека

Автор, ответственный за переписку.
Email: olga_tolpygina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1926-9694
SPIN-код: 1799-4973

канд. биол. наук

Россия, Иркутск

Наталья Викторовна Семёнова

Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека

Email: natkor_84@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6512-1335
SPIN-код: 6606-0160

д-р биол. наук

Россия, Иркутск

Анастасия Николаевна Карачева

Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека

Email: kalkova_nastya@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-7626-020X
SPIN-код: 3082-0796
Россия, Иркутск

Елизавета Анатольевна Новикова

Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека

Email: yelizaveta_novikova_2001@bk.ru
ORCID iD: 0009-0001-1207-3309
SPIN-код: 2734-2998
Россия, Иркутск

Анаит Юрьевна Марянян

Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека

Email: anait_24@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-9544-2172
SPIN-код: 2584-6861

д-р мед. наук, доцент

Россия, Иркутск

Сергей Иванович Колесников

Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека

Email: sikolesnikov2012@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-2124-6328
SPIN-код: 1752-6695

д-р мед. наук, профессор, академик РАН, засл. деят. науки РФ

Россия, Иркутск

Татьяна Ананьевна Баирова

Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека

Email: iphr@sbamsr.irk.ru
ORCID iD: 0000-0003-3704-830X
SPIN-код: 2039-3728

д-р мед. наук

Россия, Иркутск

Алексей Владимирович Бельских

Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека

Email: alex590750@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-3678-7274
SPIN-код: 2004-1578

канд. хим. наук

Россия, Иркутск

Елена Владимировна Беляева

Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека

Email: belyeva_irk@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-6050-5287
SPIN-код: 7865-3241

канд. биол. наук

Россия, Иркутск

Александра Юрьевна Самбялова

Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека

Email: sambialova95@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-5790-6282
SPIN-код: 3435-5028

MD

Россия, Иркутск

Оксана Александровна Ершова

Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека

Email: oksana111088@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-0690-4636
SPIN-код: 3002-7757

канд. биол. наук

Россия, Иркутск

Любовь Ильинична Колесникова

Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека

Email: iphr@sbamsr.irk.ru
ORCID iD: 0000-0003-3354-2992
SPIN-код: 1584-0281

д-р мед. наук, профессор, академик РАН, засл. деят. науки РФ

Россия, Иркутск

Список литературы

  1. Grodnitskaya EE, Palchik EA, Duyanova OP. Micronutrient provision in a woman during pregravid preparation, pregnancy and breastfeeding. Challenges and prospects. Gynecology, Obstetrics and Perinatology. 2021;20(1):122–128. EDN: NELFEO doi: 10.20953/1726-1678-2021-1-122-128
  2. Korytko OO. Implications of vitamin D deficiency during pregnancy and lactation. International journal of endocrinology. (Ukraine). 2021;16(7):551–555. EDN: KQTYMC doi: 10.22141/2224-0721.16.7.2020.219009
  3. Sokur TN, Dubrovina NV. Vitamins and minerals: importance of use during pregnancy. Gynecology. 2015;17(6):27–31. EDN: VKAFWV doi: 10.26442/2079-5696_17.6.27-31
  4. Karcz К, Królak-Olejnik В. Paluszyńska D. Vegetarian diet in pregnancy and lactation – safety and rules of balancing meal plan in the aspect of optimal fetal and infant development. Pol Merkur Lekarski. 2019;46(271):45–50.
  5. Izvekova EV, Bolshakova LS. Clinical microsymptoms of vitamin deficiency in pregnant and fertile women. Education and Science Without Borders: Fundamental and Applied Research. 2016;(4):227–230. EDN: VHUMRU
  6. Turchenkova KV, Bulycheva OS. The problem of vitamin provision during pregnancy. International student scientific bulletin. 2016;(4–2):196–196a. EDN: WCIVKV
  7. Kovaleva IV, Bakleicheva MO, Bespalova ON. Assessment of the vitamin D levels effect on the course of the first trimester of pregnancy. Medical Council. 2021;(21–2):131–137. EDN: BGUURN doi: 10.21518/2079-701X-2021-21-2-131-137
  8. Zhukova NV, Miklin OP, Kostyukova EA, et al. The need for vitamin D use in women of reproductive age and pregnant women (Part 2). Crimean Journal of Internal Diseases. 2023;(4):35–37. (In Russ).
  9. Badyan AS, Borshchenko IN, Kovaleva YY. Vitamin D and pregnancy: current concepts (literature review). In: Modern aspects of women’s reproductive health. Collection of articles. Rostov-on-Don; 2022. P. 25–33. (In Russ.)
  10. Han SM, Huang F, Derraik JGB, et al. A nutritional supplement during preconception and pregnancy increases human milk vitamin D but not B-vitamin concentrations. Clin Nutr. 2023;42(12):2443–2456. EDN: ITBAXO doi: 10.1016/j.clnu.2023.09.009
  11. Mansur JL, Oliveri B, Giacoia E, et al. Vitamin D: before, during and after pregnancy: effect on neonates and children. Nutrients. 2022;14(9):1900. EDN: PPOYHN doi: 10.3390/nu14091900
  12. Dzhabbarova YuK, Ismoilova ShT, Ziyaeva ShT, et al. Efficiency of using progesterone as an immunosuppressant for the prevention of preeclampsia in pregnant women with iron deficiency anemia. Journal of Obstetrics and Women’s Diseases. 2023;72(4):15–24. EDN: LQGITY doi: 10.17816/JOWD321223
  13. Laganà AS, Vitale SG, Frangež HB, et al. Vitamin D in human reproduction: the more, the better? An evidence-based critical appraisal. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2017;21(18):4243–4251.
  14. Maltsev SV. Current perspectives of using vitamin D in clinical practice. Russian Journal of Woman and Child Health. 2022;5(3):244–252. EDN: HWFHAZ doi: 10.32364/2618-8430-2022-5-3-244-252
  15. Shushpanova TV, Solonsky AV, Shumilova SN, et al. Embriogenesis of neuronal elements (glioblasts and gabaa receptors) in the human brain neuroimmune system under prenatal alcohol exposure. Medical Immunology. 2021;23(4):871–880. EDN: FYVQFP doi: 10.15789/1563-0625-EON-2329
  16. Litvinenko VYu. Impact of alcohol consumption by a pregnant woman on fetal development during the prenatal period of pregnancy. Scientific Almanac. 2021;5–2(79):81–83. EDN: VVPLLS
  17. Goncharenko GA, Chumakova GA, Kolesnikova OI, et al. Toxic risk factors for congenital heart defects in children. Mother and Child in Kuzbass. 2015;(3):4–7. EDN: VDANLV
  18. Bandoli G, Coles CD, Kable JA, et al. Patterns of prenatal alcohol use that predict infant growth and development. Pediatrics. 2019;143(2):e20182399. EDN: KDYNBK doi: 10.1542/peds.2018-2399
  19. Moore EM, Glass L, Infante MA, et al. Cross-sectional analysis of spatial working memory development in children with histories of heavy prenatal alcohol exposure. Alcohol Clin Exp Res. 2021;45(1):215–223. EDN: CAGPTD doi: 10.1111/acer.14506
  20. Marianian AYu, Kalkova AN, Rashidova MA, et al. Assessment of the course of the gestational process using survey method and depending on the laboratory confirmed prenatal alcohol use (cross-section study). Acta Biomedica Scientifica. 2023;8(4):49–58. EDN: WCYRBL doi: 10.29413/ABS.2023-8.4.6
  21. Caputo C, Wood E, Jabbour L. Impact of fetal alcohol exposure on body systems: a systematic review. Birth Defects Res C Embryo Today. 2016;108(2):174–180. doi: 10.1002/bdrc.21129
  22. González-Flores D, Márquez A, Casimiro I. Oxidative effects in early stages of embryo development due to alcohol consumption. Int J Mol Sci. 2024;25(7):4100. EDN: SGJAPA doi: 10.3390/ijms25074100
  23. Andresen-Streichert H, Müller А, et al. Alcohol biomarkers in clinical and forensi c contexts. Dtsch Arztebl Int. 2018;115(18): 309–315. doi: 10.3238/arztebl.2018.0309
  24. Petukhov AE, Nadezhdina AV, Bogstrand ST, et al. Phosphatidylethanol as the new alcohol abuse biomarker. Narcology. 2017;16(2):42–47. EDN: YHEZEZ
  25. Perilli M, Toselli F, Franceschetto L, et al. Phosphatidylethanol (PEth) in blood as a marker of unhealthy alcohol use: a systematic review with novel molecular insights. Int J Mol Sci. 2023;24(15):12175. EDN: JBIRWD doi: 10.3390/ijms241512175
  26. Razvodovsky YE. Phosphatidylethanol as a perspective biochemical marker of alcoholism. Academic Journal of Western Siberia. 2022;18(1):48–53. EDN: TTVFSD doi: 10.32878/sibir.22-18-01(94)-48-53
  27. Khapkina AV, Mikhailov AV, Ilyukhin DM, et al. Use of laboratory biomarkers in the diagnostics of chronic abuse of alcohol. Proceedings of the Tula State University. Natural Sciences. 2019;(4):45–57. EDN: CVDCDV
  28. Hahn JA, Murnane PM, Vittinghoff E, et al. Factors associated with phosphatidylethanol (PEth) sensitivity for detecting unhealthy alcohol use: an individual patient data meta-analysis. Alcohol Clin Exp Res. 2021;45(6):1166–1187. EDN: UPXHLV doi: 10.1111/acer.14611
  29. Casati S, Ravelli A, Angeli I, et al. An automated sample preparation approach for routine liquid chromatography tandem-mass spectrometry measurement of the alcohol biomarkers phosphatidylethanol 16:0/18:1, 16:0/16:0 and 18:1/18:1. J Chromatogr A. 2019;1589:1–9. doi: 10.1016/j.chroma.2018.12.048
  30. Bakhireva LN, Leeman L, Savich RD, et al. The validity of phosphatidylethanol in dried blood spots of newborns for the identification of prenatal alcohol exposure. Alcohol Clin Exp Res. 2014; 38(4):1078–1085. doi: 10.1111/acer.12349
  31. Cherniauskene RCh, Varshkyavichene ZZ, Gribauskas PS. Simultaneous determination of concentrations of vitamins E and A in blood serum. Lab Case. 1984;6:362–365. (In Russ).
  32. Bastos Maia S, Rolland Souza AS, Costa Caminha MF, et al. Vitamin A and pregnancy: a narrative review. Nutrients. 2019;11(3):681. doi: 10.3390/nu11030681
  33. Yang Y, Jin H, Qiu Y, et al. Reactive oxygen species are essential for placental angiogenesis during early gestation. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2022;2022:4290922. EDN: RRQFWW doi: 10.1155/2022/4290922
  34. Tishkova OG, Dikareva LV, Tepliy DD. The role of free-radical oxidation processes in the pathogenesis of early miscarriage. Astrakhan Medical Journal. 2023;18(1):27–38. EDN: GGIXEU doi: 10.29039/1992-6499-2023-1-27-38
  35. Chiarello DI, Abad C, Rojas D, et al. Oxidative stress: Normal pregnancy versus preeclampsia. Biochim Biophys Acta Mol Basis Dis. 2020;1866(2):165354. EDN: IVCTHN doi: 10.1016/j.bbadis.2018.12.005
  36. Fisher JJ, Bartho LA, Perkins AV, Holland OJ. Placental mitochondria and reactive oxygen species in the physiology and pathophysiology of pregnancy. Clin Exp Pharmacol Physiol. 2020;47(1):176–184. EDN: APVNWX doi: 10.1111/1440-1681.13172
  37. Das А, Roychoudhury Sh. Reactive oxygen species in the reproductive system: sources and physiological roles. Adv Exp Med Biol. 2022:1358:9–40. EDN: KEUQAM doi: 10.1007/978-3-030-89340-8_2
  38. Hussain T, Murtaza Gh, Metwally E, et al. The role of oxidative stress and antioxidant balance in pregnancy. Mediators Inflamm. 2021;2021:9962860. EDN: MJMWJE doi: 10.1155/2021/9962860
  39. Basu J, Bendek B, Agamasu E, et al. Placental oxidative status throughout normal gestation in women with uncomplicated pregnancies. Obstet Gynecol Int. 2015;2015:276095. doi: 10.1155/2015/276095
  40. Nikitina OA, Darenskaya MA, Semenova NV, et al. Antioxidant defense system: regulation of metabolic processes, genetic determinants, methods of determination. Siberian Scientific Medical Journal. 2022;42(3):1–17. EDN: SHHAVE doi: 10.18699/SSMJ20220301
  41. Slotkowski R, Van Ormer M, Akbar A, et al. Retinol and pro-vitamin A carotenoid nutritional status during pregnancy is associated with newborn hearing screen results. Nutrients. 2023;15(4):800. EDN: MMXUNP doi: 10.3390/nu15040800
  42. Sapin V, Alexandre MC, Chaïb S, et al. Effect of vitamin A status at the end of term pregnancy on the saturation of retinol binding protein with retinol. Am J Clin Nutr. 2000;71(2):537–43. doi: 10.1093/ajcn/71.2.537
  43. Tekgündüz KS, Dilek D, Kara M, et al. Factors that affect placental retinol transfer in preterm infants and mothers with retinol deficiency. Turk J Med Sci. 2022;52(2):294–302. EDN: MALWJB doi: 10.55730/1300-0144.5315
  44. Kolesnikova LI, Darenskaya MA, Grebenkina LA, et al. Study of lipid peroxidation processes at various ethnic groups women with threatened miscarriage. Bulletin of the East Siberian Scientific Center of the Siberian Branch of the Russian Academy of Medical Sciences. 2010;(6–2):31–33. EDN: OPYDDP
  45. Marceau G, Gallot D, Lemery D, et al. Metabolism of retinol during mammalian placental and embryonic development. Vitam Horm. 2007:75:97–115. doi: 10.1016/S0083-6729(06)75004-X
  46. Labygina AV, Kolesnikova LI, Grebenkina LA, et al. Retinol content and reproductive disorders in residents of Eastern Siberia (literature review). Human Ecology. 2018;(4):51–58. EDN: YXBKNW doi: 10.33396/1728-0869-2018-4-51-58
  47. Kolesnikova LI, Semenova NV, Labigina AV, et al. Estimation of the antioxidant status at women with endocrine sterility. Journal of Obstetrics and Women’s Diseases. 2010;59(4):57–60. EDN: NEBLFF
  48. Clagett-Dame M, Knutson D. Vitamin A in Reproduction and development. Nutrients. 2011;3(4):385–428. doi: 10.3390/nu3040385
  49. Huashu M, Qiao Z, Li N, et al. The relationship between changes in vitamin A, vitamin E, and oxidative stress levels, and pregnancy outcomes in patients with gestational diabetes mellitus. Ann Palliat Med. 2021;10(6):6630–6636. EDN: XFWJDT doi: 10.21037/apm-21-1036
  50. Melis M, Tang X-H, Attarwala N, et al. A retinoic acid receptor β2 agonist protects against alcohol liver disease and modulates hepatic expression of canonical retinoid metabolism genes. Biofactors. 2022;48(2):469–480. EDN: IISSWR doi: 10.1002/biof.1794
  51. Petrelli B, Bendelac L, Hicks GG, et al. Insights into retinoic acid deficiency and the induction of craniofacial malformations and microcephaly in fetal alcohol spectrum disorder. Genesis. 2019;57(1):e23278. EDN: DTVDGD doi: 10.1002/dvg.23278
  52. Fainsod A, Bendelac-Kapon L, Shabtai Y. Fetal alcohol spectrum disorder: embryogenesis under reduced retinoic acid signaling conditions. Subcell Biochem. 2020;95:197–225. EDN: BXXWMQ doi: 10.1007/978-3-030-42282-0_8
  53. Kolesnikov SI, Ivanov VV, Semenjuk AV, et al. Pregnancy and toxicants. Novosibirsk: Science; 1986. 160 p. (In Russ.) EDN: PYKCQR
  54. Shchegolev AI, Tumanova UN. The role of alcohol in the occurrence of damage to the placentes. International Journal of Applied and Fundamental Research. 2018;(2):208–212. EDN: YUCLGS
  55. Burd L, Roberts D, Olson M, et al. Ethanol and the placenta: a review. J Matern Fetal Neonatal Med. 2007;20(5):361–375. doi: 10.1080/14767050701298365
  56. Popova S, Charness ME, Burd L, et al. Fetal alcohol spectrum disorders. Nat Rev Dis Primers. 2023;9(1):11. EDN: BRRIVJ doi: 10.1038/s41572-023-00420-x
  57. Martín-Estal I, Castilla-Cortázar I, Castorena-Torres F. The placenta as a target for alcohol during pregnancy: the close relation with IGFs signaling pathway. Rev Physiol Biochem Pharmacol. 2021;180:119–153. doi: 10.1007/112_2021_58
  58. Asp J, Bergman L, Lager S, et al. Alcohol exposure prior to pregnancy-does hazardous consumption affect placenta- and inflammatory-mediated pregnancy outcomes? A Swedish population-based cohort study. Acta Obstet Gynecol Scand. 2022;101(12):1386–1394. EDN: ISLFBU doi: 10.1111/aogs.14451
  59. Florensov VV, Protopopova NV, Kolesnikova LI. Lipoperoxidation and antioxidizing system at the pregnant women at uncomplicated pregnancy and placental insufficiency. Journal of Obstetrics and Women’s Diseases. 2005;54(2):44–49. EDN: HVGQBX doi: 10.17816/JOWD81941
  60. Novikova EA, Semenova NV, Karacheva AN, et al. Lipid peroxidation products and superoxide dismutase activity in women depending on the phosphatidylethanol level in the first trimester of pregnancy. Acta Biomedica Scientifica. 2024;9(6):130–137. EDN: EIMCEY doi: 10.29413/ABS.2024-9.6.13

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Содержание альфа-токоферола у женщин с разными уровнями фосфатидилэтанола в крови (≤8 нг/мл в первой группе, от 8 до 45 нг/мл во второй группе, >45 нг/мл в третьей группе) в I триместре беременности.

Скачать (76KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Содержание ретинола у женщин с разными уровнями фосфатидилэтанола в крови (≤8 нг/мл в первой группе, от 8 до 45 нг/мл во второй группе, >45 нг/мл в третьей группе) в I триместре беременности.

Скачать (79KB)
Метаданные

© Эко-Вектор, 2025


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 66759 от 08.08.2016 г. 
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия Эл № 77 - 6389 от 15.07.2002 г.