Клинико-иммунологические критерии использования иммуноглобулинов для внутривенного введения у женщин с репродуктивными неудачами

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Обоснование. В акушерстве и репродуктологии применение препаратов иммуноглобулинов для внутривенного введения остается спорным. Нет четко разработанных показаний и схем терапии иммуноглобулинами. Поиск иммунологических критериев для назначения данной терапии является актуальной задачей.

Цель исследования — оценить эффективность использования иммуноглобулинов для внутривенного введения в комплексной терапии женщин с многократными репродуктивными потерями, ассоциированными с изменением количественных и функциональных параметров естественных киллеров (NK-клеток).

Материалы и методы. В группу 1 включена 61 женщина с привычным выкидышем, в группу 2 — 40 женщин с двумя неудачами экстракорпорального оплодотворения и более, в группу 3 — 27 здоровых фертильных женщин. Оценивали активность NK-клеток крови по экспрессии CD107a до и после активации. Пациентки с измененной активностью NK-клеток получали терапию иммуноглобулинами для внутривенного введения под контролем динамики иммунологических показателей.

Результаты. По количеству NK-клеток, экспрессирующих CD107а до и после активации, женщины групп 1 и 2 отличались от здоровых фертильных женщин. У пациенток, получавших иммуноглобулин для внутривенного введения, гестационные осложнения наблюдали реже, а частота наступления биохимической беременности была выше.

Заключение. У пациенток с репродуктивными потерями в ранние сроки (привычным выкидышем, неудачами экстракорпорального оплодотворения) и иммунологическими отклонениями в виде изменений активности NK-клеток применение иммуноглобулинов для внутривенного введения оказывает иммуномодулирующий и клинический эффекты.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Алана Олеговна Агнаева

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: dr.agnaeva@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-8978-3221
SPIN-код: 1130-8280

канд. мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Олеся Николаевна Беспалова

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: shiggerra@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6542-5953
SPIN-код: 4732-8089
Scopus Author ID: 57189999252
ResearcherId: D-3880-2018

д-р мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Дмитрий Игоревич Соколов

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: falcojugger@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-5749-2531
SPIN-код: 3746-0000
Scopus Author ID: 14020604500
ResearcherId: E-9050-2014

д-р биол. наук

Россия, Санкт-Петербург

Валентина Анатольевна Михайлова

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: mva_spb@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1328-8157
SPIN-код: 1749-5100
Scopus Author ID: 55598998100
ResearcherId: L-3245-2015

канд. биол. наук

Россия, Санкт-Петербург

Сергей Владимирович Чепанов

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Автор, ответственный за переписку.
Email: chepanovsv@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-6087-7152
SPIN-код: 6642-6837
Scopus Author ID: 56399329700
ResearcherId: M-3471-2015

канд. мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Сергей Алексеевич Сельков

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: selkovsa@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1560-7529
SPIN-код: 7665-0594
Scopus Author ID: 6507854443
ResearcherId: G-2059-2014

д-р мед. наук, профессор, засл. деят. науки РФ

Россия, Санкт-Петербург

Игорь Юрьевич Коган

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: ikogan@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-7351-6900
SPIN-код: 6572-6450
Scopus Author ID: 56895765600
ResearcherId: P-4357-2017

д-р мед. наук, профессор, чл.-корр. РАН

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Recurrent pregnancy loss: causes, controversies and treatment / ed. by H. Carp. New York: CRC Press, 2000. doi: 10.1201/9780429450303
  2. Makrigiannakis A., Petsas G., Toth B., et al. Recent advances in understanding immunology of reproductive failure // J. Reprod. Immunol. 2011. Vol. 90. No. 1. P. 96–104. doi: 10.1016/j.jri.2011.03.006
  3. Bashiri A., Halper K.I., Orvieto R.. Recurrent Implantation failure-update overview on etiology, diagnosis, treatment and future directions // Reprod. Biol. Endocrinol. 2018. Vol. 16. No. 1. doi: 10.1186/s12958-018-0414-2
  4. Coughlan C., Ledger W., Wang Q., et al. Recurrent implantation failure: definition and management // Reprod. Biomed. Online. 2014. Vol. 28. No. 1. P. 14–38. doi: 10.1016/j.rbmo.2013.08.011
  5. Brosens I., Puttemans P., Benagiano G. Placental bed research: I. The placental bed: from spiral arteries remodeling to the great obstetrical syndromes // Am. J. Obstet. Gynecol. 2019. Vol. 221. No. 5. P. 437–456. doi: 10.1016/j.ajog.2019.05.044
  6. Kwak-Kim J., Sung N., Saab W., et al. Introduction of the special issue, “Clinical reproductive immunology” // Am. J. Reprod. Immunol. 2021. Vol. 85. No. 4. doi: 10.1111/aji.13415
  7. Koopman L.A., Kopcow H.D., Rybalov B., et al. Human decidual natural killer cells are a unique NK cell subset with immunomodulatory potential // J. Exp. Med. 2003. Vol. 198. No. 8. P. 1201–1212. doi: 10.1084/jem.20030305
  8. Beer A.E., Kwak J.Y., Ruiz J.E. Immunophenotypic profiles of peripheral blood lymphocytes in women with recurrent pregnancy losses and in infertile women with multiple failed in vitro fertilization cycles // Am. J. Reprod. Immunol. 1996. Vol. 35. No. 4. P. 376–382. doi: 10.1111/j.1600-0897.1996.tb00497.x
  9. Sacks G., Yang Y., Gowen E., et al. Detailed analysis of peripheral blood natural killer cells in women with repeated IVF failure // Am. J. Reprod. Immunol. 2012. Vol. 67. No. 5. P. 434–442. doi: 10.1111/j.1600-0897.2012.01105.x
  10. Perricone C., De Carolis C., Giacomelli R., et al. High levels of NK cells in the peripheral blood of patients affected with anti-phospholipid syndrome and recurrent spontaneous abortion: a potential new hypothesis // Rheumatology (Oxford). 2007. Vol. 46. No. 10. P. 1574–1578. doi: 10.1093/rheumatology/kem197
  11. Recurrent pregnancy loss evidence-based evaluation, diagnosis and treatment / ed. by A. Bashiri, A. Harlev, A. Agarwal. New York: Springer International Publishing, 2016. doi: 10.1007/978-3-319-27452-2
  12. Tang A.W., Alfirevic Z., Quenby S. Natural killer cells and pregnancy outcomes in women with recurrent miscarriage and infertility: a systematic review // Hum. Reprod. 2011. Vol. 26. No. 8. P. 1971–1980. doi: 10.1093/humrep/der164
  13. Seshadri S., Sunkara S.K. Natural killer cells in female infertility and recurrent miscarriage: a systematic review and meta-analysis // Hum. Reprod. Update. 2014. Vol. 20. No. 3. P. 429–438. doi: 10.1093/humupd/dmt056
  14. Ушкалова Е.А. Шифман Е.М. Проблема нерегламентированного применения иммуноглобулина для внутривенного введения в акушерстве // Акушерство и Гинекология. 2011. № 3. C. 6–11.
  15. Stephenson M.D., Fluker M.R. Treatment of repeated unexplained in vitro fertilization failure with intravenous immunoglobulin: a randomized, placebo-controlled Canadian trial // Fertil. Steril. 2000. Vol. 74. No. 6. P. 1108–1113. doi: 10.1016/s0015-0282(00)01622-8
  16. Porter T.F., LaCoursiere Y., Scott J.R. Immunotherapy for recurrent miscarriage // Cochrane Database Syst Rev. 2006. No. 2. doi: 10.1002/14651858.CD000112.pub2
  17. Wong L.F., Porter T.F., Scott J.R. Immunotherapy for recurrent miscarriage // Cochrane. Database Syst. Rev. 2014. Vol. 2014. No. 10. doi: 10.1002/14651858.CD000112.pub3
  18. Saab W., Seshadri S., Huang C., et al. A systemic review of intravenous immunoglobulin G treatment in women with recurrent implantation failures and recurrent pregnancy losses // Am. J. Reprod. Immunol. 2021. Vol. 85. No. 4. doi: 10.1111/aji.13395
  19. Hutton B., Sharma R., Fergusson D., et al. Use of intravenous immunoglobulin for treatment of recurrent miscarriage: a systematic review // BJOG. 2007. Vol. 114. No. 2. P. 134–142. doi: 10.1111/j.1471-0528.2006.01201.x
  20. Coulam C.B., Acacio B. Does immunotherapy for treatment of reproductive failure enhance live births? // Am. J. Reprod. Immunol. 2012. Vol. 67. No. 4. P. 296–304. doi: 10.1111/j.1600-0897.2012.01111.x
  21. Achilli C., Duran-Retamal M., Saab W., et al. The role of immunotherapy in in vitro fertilization and recurrent pregnancy loss: a systematic review and meta-analysis // Fertil Steril. 2018. Vol. 110. No. 6. P. 1089–1100. doi: 10.1016/j.fertnstert.2018.07.004
  22. Graphou O., Chioti A., Pantazi A., et al. Effect of intravenous immunoglobulin treatment on the Th1/Th2 balance in women with recurrent spontaneous abortions // Am. J. Reprod. Immunol. 2003. Vol. 49. No. 1. P. 21–29. doi: 10.1034/j.1600-0897.2003.01169.x
  23. Чугунова А.А., Зайнулина М.С., Селютин А.В., и др. Влияние иммуномодулирующей терапии на клинико-лабораторные показатели беременных с невынашиванием и антифосфолипидным синдромом // Журнал акушерства и женских болезней. 2011. Т. 60. № 3. С. 152–160.
  24. Ahmadi M., Ghaebi M., Abdolmohammadi-Vahid S., et al. NK cell frequency and cytotoxicity in correlation to pregnancy outcome and response to IVIG therapy among women with recurrent pregnancy loss // J. Cell Physiol. 2019. Vol. 234. No. 6. P. 9428–9437. doi: 10.1002/jcp.27627
  25. Reed J.L., Winger E.E. IVIg therapy increases delivery birthweight in babies born to women with elevated preconception proportion of peripheral blood (CD56+/CD3–) natural killer cells // Clin. Exp. Obstet. Gynecol. 2017. Vol. 44. No. 3. P. 384–391.
  26. Lash G.E., Otun H.A., Innes B.A., et al. Interferon-gamma inhibits extravillous trophoblast cell invasion by a mechanism that involves both changes in apoptosis and protease levels // FASEB J. 2006. Vol. 20. No. 14. P. 2512–2518. doi: 10.1096/fj.06-6616com
  27. Uterine endometrial function / ed. by H. Kanzaki. Osaka: Springer Japan, 2016. doi: 10.1007/978-4-431-55972-6
  28. Srikrishna G., Freeze H.H. Endogenous damage-associated molecular pattern molecules at the crossroads of inflammation and cancer // Neoplasia. 2009. Vol. 11. No. 7. P. 615–628. doi: 10.1593/neo.09284
  29. Horton N.C., Mathew P.A. NKp44 and natural cytotoxicity receptors as damage-associated molecular pattern recognition receptors // Front. Immunol. 2015. Vol. 6. P. 31. doi: 10.3389/fimmu.2015.00031
  30. Tao Y., Li Y.H., Piao H.L., et al. CD56(bright)CD25+ NK cells are preferentially recruited to the maternal/fetal interface in early human pregnancy // Cell. Mol. Immunol. 2015. Vol. 12. No. 1. P. 77–86. doi: 10.1038/cmi.2014.26

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Количественные показатели NK-клеток в крови здоровых женщин и женщин с репродуктивными нарушениями. * группа 2 отличается от групп 1 и 3 (p < 0,05); *** группа 2 отличается от групп 1 и 3 (p < 0,001); группа 1 отличается от групп 2 и 3 (p < 0,001)

Скачать (137KB)
3. Рис. 2. Динамика содержания NK-клеток в начале и после окончания лечения внутривенными иммуноглобулинами в группах 1 (a) и 2 (b)

Скачать (60KB)

© Эко-Вектор, 2023



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 66759 от 08.08.2016 г. 
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия Эл № 77 - 6389
от 15.07.2002 г.



Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах