Коррекция дисбиоза влагалища кавитированным раствором хлоргексидина в первом триместре беременности: эффективность и безопасность
- Авторы: Ворошилина Е.С.1, Зорников Д.Л.1, Плотко Е.Э.1
-
Учреждения:
- ГБОУ ВПО УГМУ Минздрава России
- Выпуск: Том 63, № 5 (2014)
- Страницы: 29-37
- Раздел: Статьи
- Статья получена: 15.12.2014
- Статья опубликована: 15.12.2014
- URL: https://journals.eco-vector.com/jowd/article/view/2693
- DOI: https://doi.org/10.17816/JOWD63529-37
- ID: 2693
Цитировать
Полный текст
Открытый доступ
Доступ предоставлен
Доступ платный или только для подписчиков
Доступ предоставлен
Доступ платный или только для подписчиков
Аннотация
Цель исследования - оценить изменения качественного и количественного состава вагинального микробиоценоза у беременных в первом триместре беременности после обработки влагалища 0,05%-м раствором хлоргексидина, кавитированным низкочастотным ультразвуком (НУЗ), и обосновать необходимость дотации лактобацилл на втором этапе коррекции дисбиоза влагалища. Материалы и методы. Для оценки эффективности коррекции вагинального микробиоценоза с помощью обработки влагалища кавитированным раствором хлоргексидина 0,05% и необходимости последующей дотации лактофлоры у беременных в I триместре было обследовано 104 пациентки, планировавших искусственное прерывание беременности (ИПБ) в сроках от 5 до 12 недель методом вакуум-аспирации. С целью подготовки к прерыванию беременности всем женщинам проводили обработку влагалища и экзоцервикса 0,05%-м водным раствором хлоргексидина, кавитированным НУЗ. Состояние микробиоценоза влагалища до и после обработки оценивали путем микроскопического исследования препаратов, окрашенных метиленовым синим и по Романовскому-Гимзе, а также методом ПЦР с детекцией результатов в реальном времени (ПЦР-РВ, тест-система Фемофлор-16, НПО «ДНК-Технология», Москва). Результаты. У пациенток с нормоценозом количество лактофлоры после обработки снижалось соответственно уменьшению общей колонизации влагалища, при этом доля лактобацилл в составе микробиоценоза влагалища практически не изменялась и составляла более 90% у всех обследованных беременных. У пациенток с дисбиозом влагалища снижение степени колонизации после обработки кавитированным УЗ водным раствором хлоргексидина происходит преимущественно за счет абсолютного и относительного содержания условно патогенных микроорганизмов в составе микробиоценоза. Однако исходно низкое содержание лактобацилл при тяжелых формах дисбиоза влагалища не позволяет достичь их оптимального уровня после первого этапа лечения. В этих случаях необходимость дотации лактобацилл на втором этапе терапии не вызывает сомнений. Заключение. Полученные в ходе настоящего исследования данные демонстрируют безопасность обработки влагалища кавитированным НУЗ водным 0,05%-м раствором хлоргексидина у беременных с точки зрения воздействия на нормофлору влагалища, что позволяет использовать метод как профилактический перед проведением инвазивных процедур вне зависимости от исходного состояния вагинальной микробиоты. Данный метод оказался эффективным в лечении дисбиоза влагалища, однако сохраняющийся дефицит лактофлоры диктует необходимость ее дотации на втором этапе.
Полный текст
Об авторах
Екатерина Сергеевна Ворошилина
ГБОУ ВПО УГМУ Минздрава России
Email: voroshilina@gmail.com
д. м. н., доцент кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии, заведующая лабораторией
Данила Леонидович Зорников
ГБОУ ВПО УГМУ Минздрава Россииаспирант кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии
Евгений Эдуардович Плотко
ГБОУ ВПО УГМУ Минздрава Россиид. м. н., доцент кафедры акушерства и гинекологии
Список литературы
- Ворошилина Е. С., Донников А. Е., Плотко Е. Э., Тумбинская Л. В., Хаютин Л. В. Биоценоз влагалища с точки зрения количественной полимеразной цепной реакции: что есть норма? Акушерство и гинекология. 2011; № 1: 57-65.
- Ворошилина Е. С., Тумбинская Л. В., Донников А. Е. Современные возможности диагностики бактериального вагиноза: исследование количественного и качественного состава сложных микробных сообществ. Уральский медицинский журнал. 2011; № 13 (91): 70-5.
- Кира Е. Ф., Бактериальный вагиноз. Санкт-Петебург; 2001.
- Обоскалова Т. А., Глухов Е. Ю., Лаврентьева И. В. Лечение воспалительных заболеваний женских половых органов с использованием лекарственных растворов, кавитированных низкочастотным ультразвуком. Екатеринбург: Vip-Ural; 2012.
- Обоскалова Т. А., Глухов Е. Ю., Лаврентьева И. В., Нефф Е. И., Судаков Ю. Е. Плотко Е. Э. Растворы, кавитированные низкочастотным ультразвуком, - альтернатива антибиотикам? StatusPraesens. 2012; № 3 (9): 65-9.
- Плотко Е. Э. Прогнозирование, профилактика, диагностика и лечение осложнений искусственного прерывания беременности. Автореф. дис… док. мед. наук. М.; 2013.
- Савичева А. М., Соколовский Е. В., Домейка М. Порядок проведения микроскопического исследования мазков из урогенитального тракта. Методические рекомендации для лечащих врачей. Санкт-Петербург: Издательство Н-Л; 2007.
- Радзинский В. Е., ред. Санация перед родами и гинекологическими операциями: нужна? Не нужна? Вредна? Диагностика и коррекция нарушений влагалищного биоценоза в рамках подготовки к родоразрешению и гинекологическим операциям. М.: Медиабюро StatusPraesens; 2011.
- Широкова Д. В., Калинина Е. А., Плотко Е. Э. Эффективность низкочастотной ультразвуковой кавитации при коррекции нарушений влагалищной флоры. В кн.: Материалы XIV Всероссийского научного форума «Мать и дитя». М.; 2013; 369-370.
- Aroutcheva AA, Simoes JA, Faro S. Antimicrobial protein produced by vaginal Lactobacillus acidophilus that inhibits Gardnerella vaginalis. Infect Dis Obstet Gynecol. 2001; 9: 33-9.
- Bartley J, Young D. Ultrasound as a treatment for chronic rhinosinusitis. Med. Hypotheses. 2009; 73 (1): 15-17.
- Bradshaw CS, Morton AN., Hocking J., Garland SM, Morris MB, Moss LM, Horvath LB, Kuzevska I, Fairley CK. High recurrence rates of bacterial vaginosis over the course of 12 months after oral metronidazole therapy and factors associated with recurrence. J Infect Dis. 2006; 193: 1478-86.
- Bradshaw CS, Tabrizi SN, Fairley CK, Morton AN, Rudland E, Garland SM. The association of Atopobium vaginae and Gardnerella vaginalis with bacterial vaginosis and recurrence after oral metronidazole therapy. J Infect Dis. 2006; 194: 828-36.
- Brooun A, Liu S, Lewis K. A dose-response study of antibiotic resistance in Pseudomonas aeruginosa biofilms. Antimicrob. Agents Chemother. 2000; 44 (3): 640-646.
- Burton JP, Reid G. Evaluation of the bacterial vaginal flora of postmenopausal women by direct (Nugent score) and molecular (polymerase chain reaction and denaturing gradient gel electrophoresis) techniques. J Infect Dis. 2002; 186: 1770-80.
- Doderlein A. Das scheidensekret und seine bedeutung fur puerperalfieber. ZentblBakteriolMicrobiolHygAbt. 1892; 11: 699.
- Du Plessis EM, Dicks LM. Evaluation of random amplified polymorphic DNA (RAPD)-PCR as a method to differentiate Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus crispatus, Lactobacillus amylovorus, Lactobacillus gallinarum, Lactobacillus gasseri, and Lactobacillus johnsonii. Curr Microbiol. 1995; 31: 114-8.
- Falsen E, Pascual C, Sjoden B, Ohlen M, Collins MD. Phenotypic and phylogenetic characterization of a novel Lactobacillus species from human sources: description of Lactobacillus iners sp. nov. Int J Syst Bacteriol. 1999; 49: 217-21.
- Hawes SE, Hillier SL, Benedetti J, Stevens CE, Koutsky LA, Wolner-Hanssen P, Holmes KK. Hydrogen peroxide-producing lactobacilli and acquisition of vaginal infections. J Infect Dis. 1996; 174: 1058-63.
- Rodriguez JM, Collins MD, Sjoden B, Falsen E. Characterization of a novel Atopobium isolate from the human vagina: description of Atopobium vaginae sp. nov. Int J Syst Bacteriol. 1999; 49: 1573-6.
- Sanchez S, Garcia PJ, Thomas KK, Catlin M, Holmes KK. Intravaginal metronidazole gel versus metronidazole plus nystatin ovules for bacterial vaginosis: a randomized controlled trial. Am J Obstet Gynecol. 2004; 191: 1898-906.
- Schleifer KH, Ludwig W. Phylogeny of the genus Lactobacillus and related genera. Syst Appl Microbiol. 1995; 18: 461-7.
- Skarin A, Sylwan J. Vaginal lactobacilli inhibiting growth of Gardnerella vaginalis, Mobiluncus and other bacterial species cultured from vaginal content of women with bacterial vaginosis. Acta Pathol Microbiol Immunol Scand B. 1986; 94 (6): 399-403.
- Sobel JD, Ferris D, Schwebke J, Nyirjesy P, Wiesenfeld HC, Peipert J, Soper D, Ohmit SE, Hillier SL. Suppressive antibacterial therapy with 0.75 % metronidazole vaginal gel to prevent recurrent bacterial vaginosis. Am J Obstet Gynecol. 2006; 194: 1283-9.
- Swidsinski A, Mendling W, Loening-Baucke V, Ladhoff A, Swidsinski S, Hale LP, Lochs H. Adherent biofilms in bacterial vaginosis. Obstet. Gynecol. 2005; 106: 1013-1023.
- Turovskiy Y, Noll KS, Chikindas ML. The etiology of bacterial vaginosis. J. Appl. Microbiol. 2011; 110: 1105-1128.