Роль отсутствия циркадного ритма материнского мелатонина в генезе раннего скачка роста у детей

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

В обзоре представлены результаты экспериментальных и клинических исследований, показавших, что отсутствие циркадианной продукции мелатонина у беременной, связанное с имеющейся у нее патологией (ожирение, сахарный диабет, метаболический синдром, гестоз, хроническая плацентарная недостаточность и т. п.), не только приводит к задержке становления ритмической активности специфических генов плода, но и лежит в основе дерегуляции метаболических процессов в организме ребенка и программирования патологии в последующие годы жизни. Значение этого фактора в патофизиологических механизмах скачка роста уже в первые месяцы жизни определяет новый подход к оценке риска ожирения и обусловливает необходимость изучения последствий нарушения развития мозга и других функциональных систем у плодов, родившихся ранее 26-й недели беременности и вследствие этого лишенных материнского мелатонина — ключевой сигнальной молекулы, направляющей и координирующей генетический процесс развития в самый критический период раннего онтогенеза.

Полный текст

Анализ причин повышения частоты развития ожирения у детей показал связь с избыточной прибавкой массы тела именно в первые месяцы жизни. Это явление получило название «ранний скачок роста» (catch-up growth) [1–4]. Было установлено, что избыточная прибавка массы наблюдается у детей, внутриутробное развитие которых протекало в неблагоприятных условиях — при наличии у матерей ожирения, сахарного диабета, метаболического синдрома, хронических заболеваний трех и более функциональных систем (сердечно-сосудистой системы, желудочно-кишечного тракта, иммунной системы и т. п.), а также в случае осложнения беременности хронической плацентарной недостаточностью, преэклампсией, гестационным сахарным диабетом [5–7]. При этом у одних детей уже при рождении масса тела была значительно выше должной для данного гестационного возраста, тогда как у других, напротив, масса тела отставала от роста, то есть наблюдалась асимметричная форма задержки внутриутробного развития [8–10]. Вместе с тем у всех детей отмечено появление висцерального ожирения уже в первые месяцы жизни [11–13], а в последующие годы — сахарного диабета 2-го типа, метаболического синдрома, патологии сердечно-сосудистой и нервной систем [14–16].

На основании изучения различных механизмов, определяющих программирование данной патологии и ее неблагоприятных последствий [17–20], предложено несколько гипотез, объясняющих этиопатогенез скачка роста и его влияние на последующее развитие. Так, согласно гипотезе «экономного фенотипа» в условиях недостаточного поступления питательных веществ адаптивный ответ плода направлен на оптимизацию роста и развития таких органов, как сердце, мозг, в ущерб висцеральным (печень, поджелудочная железа и др.), что в период адаптации ребенка к новым условиям окружающей среды ведет к морфофункциональным изменениям последних, способствует нарушению метаболических процессов и избыточному накоплению жировой ткани [21, 22]. Другие гипотезы касаются роли сахарного диабета, избыточного питания и высокожировой диеты беременной в развитии гипергликемии, гиперинсулинемии, гиперлептинемии и повышении уровня кортизола у плода с последующей модуляцией метаболического ответа нейронов гипоталамуса [23–26]. Считают, что скачок роста связан с избыточным потреблением белка (early protein hypothesis) в раннем постнатальном периоде. Высокий уровень белка в рационе младенца приводит к повышению концентрации инсулиногенных аминокислот в плазме крови, которые стимулируют продукцию инсулиноподобного фактора роста и инсулина, что и ведет к ожирению. Отсутствие грудного вскармливания и повышенный уровень белка при искусственном вскармливании рассматривают как высокий риск развития ожирения [8].

Таким образом, именно в перинатальном периоде нарушение генетической программы развития гормональных и метаболических регуляторных механизмов функциональных систем ребенка определяет развитие ожирения в раннем детстве, причем основными механизмами формирования данной патологии являются оксидативный стресс, эпигенетическая регуляция, глюкокортикоидный эффект, а также участие нейроактивных стероидов, соматолактогенов и родственных им пептидов, а именно инсулиноподобного фактора роста (ИФР-1) и окситоцина [27–29]. При этом в каждом предполагаемом механизме представлена роль гормона мелатонина, отсутствие или недостаток которого способствует прогрессированию ожирения. Так, мелатонин, будучи поглотителем свободных радикалов кислорода, самым мощным антиоксидантом и активатором других антиоксидантов (каталазы, супероксиддисмутазы, глутатионпероксидазы), предотвращает развитие оксидативного стресса и митохондриальной дисфункции в системе мать – плацента – плод [30–32]. Он подавляет активность нейрональной и индуцибельной синтаз оксида азота и генерацию высокотоксичного пероксинитрита, но индуцирует активность эндотелиальной синтазы и тем самым способствует улучшению маточно-плацентарного кровообращения [33]. Благодаря присутствию G-протеин-связанных рецепторов в тканях плода мелатонин оказывает прямой модулирующий эффект на продукцию кортизола в надпочечниках и на липолиз в бурой жировой ткани [34]. Установлена патофизиологическая связь между мелатонином и функционированием гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковой системы [35]. Известно, что тяжелый оксидативный стресс может существенно изменить экспрессию генов, участвующих в контроле энергетического гомеостаза организма [36].

Исследования подтверждают влияние нарушений гомеостаза у матери и в плаценте на развитие эпигенетических процессов (метилирование ДНК, модификация гистона и др.) в перинатальном периоде. Так, установлены особенности экспрессии генов, участвующих в контроле дифференцировки и функционирования клеток жировой ткани, печени, а также гипоталамических нейропептидов и глюкокортикоидных рецепторов в генезе скачка роста [37–41]. Эпигенетические модификации структуры гистона (Н3К4) инсулиноподобного ростового фактора в печени ведут к повышению в крови отставших в развитии плодов уровня ИФР-1, что предопределяет у них скачок роста в первые месяцы жизни [42, 43]. Вместе с тем именно мелатонин играет ключевую роль в защите от эпигенетических изменений экспрессии генов, включая контролирующие часовые (clock-controlled) гены, которые участвуют в регуляции циркадных ритмов метаболических процессов [44, 45]. Таким образом, при низкой продукции мелатонина в единой системе мать – плацента – плод становится возможным неблагоприятное воздействие того или иного фактора в критические периоды развития плода, что приводит к «программированию» метаболических нарушений.

Мелатонин синтезируется в эпифизе, эндокринная функция которого зависит от светового режима. Световая информация от ганглиозных клеток сетчатки через ретино-гипоталамический тракт поступает в супрахиазматические ядра (СХЯ) гипоталамуса, которые являются генераторами циркадного ритма или биологическими часами. Оттуда сигналы идут в верхние цервикальные ганглии и затем по симпатическим норадренергическим путям достигают эпифиза, где и синтезируется мелатонин. Свет угнетает продукцию и секрецию мелатонина, поэтому его максимальный уровень в крови человека наблюдается ночью, а минимальный — в дневные часы. Суточный ритм продукции мелатонина служит маркером нормальной работы циркадной регуляции эндогенных биоритмов и их синхронизации [46]. Экстрапинеальный мелатонин обнаружен во всех органах и клетках [47]. Мелатонин синтезируется из аминокислоты триптофана, которая путем гидроксилирования (фермент триптофангидроксилаза) и декарбоксилирования (фермент 5-окситриптофандекарбоксилаза) превращается в серотонин. С помощью ферментов N-ацетилтрансферазы и оксииндол-О-метилтрансферазы из серотонина образуется мелатонин. Из пинеалоцитов эпифиза мелатонин выделяется в кровь и спинно-мозговую жидкость, а мелатонин, секретируемый в других клетках организма, попадает в кровь в незначительных количествах, оказывая в местах его синтеза паракринное и аутокринное влияние [48]. Мелатонин через связывание с рецепторами выполняет регулирующие функции во всех тканях и клетках. У человека определены два типа мембранных рецепторов (МТ1 и МТ2) и их хромосомная локализация (хромосомы 4q35 и 11q21-22), а также ядерные рецепторы (RORα) [49].

Мелатонин участвует в процессах морфофункционального развития плаценты и сохранении ее нейроиммуноэндокринной функции, направленной на становление жизненно важных функциональных систем плода. В процессе физиологически протекающей беременности циркадианные колебания МТ увеличиваются в 5–10 раз, и содержание гормона в сыворотке крови достигает максимальных значений перед родами [50, 51]. Установлено, что материнский МТ запускает генетический процесс морфологического и функционального развития эпифиза плода и циркадианное функционирование СХЯ. Благодаря этому уже с 26-й недели внутриутробного развития именно в ночное время суток материнский эпифизарный мелатонин включает циркадные ритмы клок-генов, участвующих в регуляции метаболических процессов и жизнедеятельности функциональных систем плода [52]. Это обеспечивает постнатальную адаптацию к новым условиям окружающей среды и интеграцию эндогенных биоритмов функциональных систем ребенка в циркадную систему, регулируемую собственными СХЯ в зависимости от изменения освещенности [53]. Отсутствие подобного воздействия материнского мелатонина у детей, родившихся ранее 26-й недели, очевидно, определяет высокую заболеваемость и последующую инвалидизацию.

Необходимо подчеркнуть, что при всех перечисленных выше заболеваниях и осложнениях беременности у женщин, дети которых предрасположены к ожирению, в ночное время суток уровень мелатонина в крови не повышается [30, 54–57]. Экспериментальные исследования показали, что в подобной ситуации и у потомства также наблюдается низкая продукция эпифизарного мелатонина, отсутствует его циркадианный ритм не только при рождении, но и в последующей жизни, что определяет раннюю реализацию метаболического программирования [58–60]. Формирование циркадианного ритма продукции эпифизарного мелатонина в норме продолжается ускоренными темпами в первые дни и недели жизни, а материнское влияние на этот процесс осуществляется через грудное вскармливание. Известно, что в грудном молоке содержится более 60 биологически активных факторов, причем концентрация соматотропного гормона, пролактина, ИФР-1, инсулина, лептина, релаксина, эпидермального фактора роста в грудном молоке выше, чем в периферической крови матери [61–64]. У здоровых матерей в грудном молоке, особенно в молозиве, выявлены высокие уровни триптофана и мелатонина, подверженные циркадным изменениям [65, 66]. Именно поэтому четкий суточный ритм продукции мелатонина формируется на фоне грудного вскармливания уже к концу второго месяца жизни, чему способствует и соблюдение режима кормления [50].

Мелатонин, являясь ключевым регулятором углеводного и жирового обмена, контролирует дифференцировку адипоцитов, липогенез, липолиз, захват жирных кислот и глюкозы, а также влияние инсулина и запасы энергии, одновременно осуществляет циркадную организацию метаболизма в мышцах, жировой ткани, печени, поджелудочной железе [67]. Связываясь со специфическими ядерными рецепторами (RORα/RZR), мелатонин контролирует клеточный рост и дифференциацию клеток [68], что открывает широкие возможности его участия в эпигенетической модификации ДНК и гистонов, имеющей непосредственное отношение к развитию различных патологий.

Задержка генетического процесса становления циркадианного ритма продукции мелатонина ведет к десинхронизации метаболических процессов, нарушению энергетического обмена и избыточной прибавке массы тела [63, 69, 70]. Кроме того, у матерей с низкой продукцией мелатонина, как правило, снижена лактация, и большинство из них вынуждены докармливать ребенка молочными смесями, в которых уровень белка превышает его содержание в материнском молоке, что способствует еще большему скачку роста. С учетом патофизиологического механизма программирования и развития ожирения детям этих матерей необходимо использовать смеси с уровнем белка, близким к таковому в женском молоке, обогащенные альфа-лактальбумином с высоким содержанием триптофана и, кроме того, включающие олигосахариды. Последние значительно оптимизируют формирование микрофлоры кишечника, активно участвующей в синтезе и метаболизме мелатонина [71, 72]. В последние годы внимание исследователей привлечено к изучению в эксперименте эффекта применения мелатонина во время беременности и в постнатальном онтогенезе с целью репрограммирования развития патологий [73–75], что позволит определить объективные критерии риска и разработать методы профилактики патологических процессов.

Заключение

Таким образом, отсутствие циркадианной продукции мелатонина у беременной, связанное с имеющейся у нее патологией (ожирение, сахарный диабет, метаболический синдром, гестоз, хроническая плацентарная недостаточность и т. п.), не только приводит к задержке становления ритмической активности специфических генов плода, но и лежит в основе дерегуляции метаболических процессов в организме ребенка и программирования патологии в последующие годы жизни. Значение этого фактора в патофизиологических механизмах скачка роста уже в первые месяцы жизни определяет новый подход к оценке риска ожирения и вызывает необходимость изучения последствий нарушения развития мозга и других функциональных систем у плодов, родившихся ранее 26-й недели беременности и тем самым лишенных материнского мелатонина — ключевой сигнальной молекулы, направляющей и координирующей генетический процесс развития в самый критический период раннего онтогенеза.

×

Об авторах

Инна Ивановна Евсюкова

ФГБНУ «НИИ АГиР им. Д.О. Отта»

Автор, ответственный за переписку.
Email: eevs@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-4456-2198
ResearcherId: 520074

д-р мед. наук, профессор, ведущий научный сотрудник отделения физиологии и патологии новорожденных

Россия, Санкт-Петербург

Эдуард Карпович Айламазян

ФГБНУ «НИИ АГиР им. Д.О. Отта»

Email: iagmail@ott.ru
ORCID iD: 0000-0002-9848-0860
SPIN-код: 9911-1160
ResearcherId: 80774

д-р мед. наук, профессор, заслуженный деятель науки РФ, академик РАН, научный руководитель отдела акушерства и перинатологии

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Bauman A, Rutter H, Baur L. Too little, too slowly: international perspectives on childhood obesity. Public Health Res Pract. 2019;29(1). pii:2911901. https://doi.org/10.17061/phrp2911901.
  2. De Onis M, Blossner M, Borghi E. Global prevalence and trends of overweight and obesity among preschool children. Am J Clin Nutr. 2010;92(5):12157-12164. https://doi.org/10.3945/ajcn.2010.29786.
  3. Okada T, Takahashi S, Nagano N, et al. Early postnatal alteration of body composition in preterm and small-for-gestational-age infants: implications of cath-up fat. Pediatr Res. 2015;77(1-2):136-142. https://doi.org/10.1038/pr.2014.164.
  4. Cho WK, Suh BK. Catch-up growth and catch-up fat in children born small for gestational age. Korean J Pediatr. 2016;59(1):1-7. https://doi.org/10.3345/kjp.2016.59.1.1.
  5. Tran BX, Dang KA, Le HT, et al. Global evolution of obesity research in children and youths: setting priorities for interventions and policies. Obes Facts. 2019;12(2):137-139. https://doi.org/10.1159/000497121.
  6. Whitaker RC, Dietz WH. Role of the prenatal environment in the development of obesity. J Pediatr. 1998;132(5):768-776. https://doi.org/10.1016/s0022-3476(98)70302-6.
  7. Oken E, Gillman MW. Fetal origins of obesity. Obes Res. 2003;11(4):496-506. https://doi.org/10.1038/oby.2003.69.
  8. Hales CN, Ozanne SE. The dangerous road of catch-up growth. J Physiology. 2003;547(1):5-10. https://doi.org/ 10.1113/jphysiol.2002.024406.
  9. Tappy L. Adiposity in children born small for gestational age. Int J Obes. (Lond). 2010;34(7):1230. https://doi.org/10.1038/sj.ijo.0803517.
  10. Hediger ML, Overpeck MD, McGlynn A, et al. Growth and fatness at three to six years of age of children born small- or large-for-gestational age. Pediatrics. 1999;104(3):e33. https://doi.org/10.1542/peds.104.3.e33.
  11. Kinra S, Baumer JH, Davey Smith G. Early growth and childhood obesity: a historical cohort study. Arch Dis Child. 2005;90(11):1122-1127. https://doi.org/10.1136/adc.2004.066712.
  12. Mierzynski R, Dluski D, Darmochwal-Kolarz D, et al. Intra-uterine growth retardation as a risk factor of postnatal metabolic disorders. Curr Pharm Biotechnol. 2016;17(7):587-596. https://doi.org/10.2174/1389201017666160301104323.
  13. Mericq V, Martinez-Aguayo A, Uauy R, et al. Long-term metabolic risk among children born premature or small for gestational age. Nat Rev Endocrinol. 2017;13(10):50-62. https://doi.org/10.1038/nrendo.2016.127.
  14. Longo S, Bollani L, Decembrino L, et al. Short-term and long-term sequelae in intrauterine growth retardation (IUGR). J Matern Fetal Neonatal Med. 2013;26(3):222-225. https://doi.org/10.3109/14767058.2012.715006.
  15. Voerman E, Santos S, Inskip H, et al. Association of gestational weight gain with adverse maternal and infant outcomes. JAMA. 2019;321(17):1702-1715. https://doi.org/10/1001/jama.2019.3820.
  16. Hong YH, Chung SC. Small for gestational age and obesity related comorbidities. Ann Pediatr Endocrinol Metab. 2018;23(1):4-8. https://doi.org/10.6065/apem.2018. 23.1.4.
  17. Koontz MB, Gunzler DD, Presley L, Catalano PM. Longitudinal changes in infant body composition: association with childhood obesity. Pediatr Obes. 2014;9(6):e141-e144. https://doi.org/10.1111/ijpo.253.
  18. Druet C, Stettler N, Sharp S, et al. Prediction of childhood obesity by infancy weight gain: an individual-level meta-analysis. Paediatr Perinat Epidemiol. 2012;26(1):19-26. https://doi.org/10.1111/j.1365-3016.2011.01213.
  19. Zhou J, Dang S, Zeng L, et al. Rapid infancy weight gain and 7- to 9-year childhood obesity risk: a prospective cohort study in rural western China. Medicine (Baltimore). 2016;95(16):e3425. https://doi.org/0.1097/000000000000 3425.
  20. Koletzko B, Shamir R, Truck D, Phillip M. (ed). Nutrition and Growth: Yearbook 2019. World Rev Nutr Diet. Vol. 119. Basel: Karger; 2019. Р. 119-137. https://doi.org/10.1159/000494312.
  21. Hales CN, Barker DJ. The thrifty phenotype hypothesis. Br Med Bull. 2001;60:5-20. https://doi.org/10.1093/bmb/60.1.5.
  22. Grino M. Prenatal nutritional programming of central obesity and the metabolic syndrome: role of adipose tissue glucocorticoid metabolism. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2005;289:R1233-R1235. https://doi.org/10.1152/ajpregu.00542.2005.
  23. Trandafir LM, Temneanu OR. Pre- and post-natal risk and determination of factors for child obesity. J Med Life. 2016;9(4):386-391. https://doi.org/10.22336/jml.2016.0412.
  24. Hellmuth C, Lindsay KL, Uhi O, et al. Maternal metabolomic profile and fetal programming of offspring adiposity: identification of potentially protective lipid metabolites. Mol Nutr Food Res. 2019;63(1):e1700889. https://doi.org/10.1002/mnfr.201700889.
  25. Page KC, Malik RE, Ripple JA, Anday EK. Maternal and postweaning diet interaction alters hypothalamic gene expression and modulates response to a high-fat diet in male offspring. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2009;297(4):R1049-1057. https://doi.org/10.1152/aipregu. 90585.2008.
  26. Desai M, Ross MG. Fetal programming of adipose tissue: effects of IUGR and maternal obesity/high fat diet. Semin Reprod Med. 2011;29(3):237-245. https://doi.org/10.1055/s-0031-1275517.
  27. McMullen S, Langley-Evans SC, Gambling L, et al. A common cause for a common phenotype: the gatekeeper hypothesis in fetal programming. Med Hypotheses. 2012;78(1):88-94. https://doi.org/10.1016/j.mehy.2011.09.047.
  28. Cottrell EC, Seckl JR. Prenatal stress, glucocorticoids and the programming of adult disease. Front Behav Neurosci. 2009;3:19. https://doi.org/10.3389/neuro.08.019.2009.
  29. Thompson LP, Al-Hasan Y. Impact of oxidative stress in fetal programming. J Pregnancy. 2012;2012.582748. https://doi.org/10.1155/2012/582748.
  30. Reiter RJ, Tan DX, Korkmaz A, Ma S. Obesity and metabolic syndrome: association with chronodisruption, sleep deprivation, and melatonin suppression. Ann Med. 2012;44(6):564-577. https://doi.org/10.3109/07853890.2011.586365.
  31. Arutjunyan AV, Evsyukova II, Polyakova VO. The role of melatonin in morphofunctional development of the brain in early ontogeny. Neurochem J. 2019;13(3):240-248. https://doi.org/10.1134/S1819712419030036.
  32. Richter HG, Hansell JA, Raut SM, Giussani DA. Melatonin improves placental efficiency and birth weight and increases the placental expression of antioxidant enzymes in undernourished pregnancy. J Pineal Res. 2009;46(4):357-364. https://doi.org/10.1111/j.1600-079X.200900671.x.
  33. Hracsko Z, Hermesz E, Ferencz A, et al. Endothelial nitric oxide synthase is up-regulated in the umbilical cord in pregnancies complicated with intrauterine growth retardation. In Vivo. 2009;23(5):727-732.
  34. Torres-Farfan C, Valenzuela FJ, Mondaca M, et al. Evidence of a role for melatonin in fetal sheep physiology: direct actions of melatonin on fetal cerebral artery, brown adipose tissue and adrenal gland. J Physiol. 2008;586(16):4017-4027. https://doi.org/10.1113/jphysiol.2008.154351.
  35. Wu TH, Kuo HC, Lin IC, et al. Melatonin prevents neonatal dexamethasone induced programmed hypertension: histone deacetylase inhibition. J Steroid Biochem Mol Biol. 2014;144(Pt B):253-259. https://doi.org/10.1016/j.jsbmb. 2014.07.008.
  36. Levin BE. Metabolic imprinting: critical impact of the perinatal environment on the regulation of energy homeostasis. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 2006;361(1471):1107-1121. https://doi.org/10.1098/rstb.2006.1851.
  37. Bol VV, Delattre AI, Reusens B, et al. Forced catch-up growth after fetal protein restriction alters the adipose tissue gene expression program leading to obesity in adult mice. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2009;297(2):R291-299. https://doi.org/10.1152/ajpregu.90497.2008.
  38. Classidy FC, Charalambous M. Genomic imprinting, growth and maternal-fetal interactions. J Exp Biol. 2018;221(Suppl 1). pii: jeb164517. https://doi.org/10.1242/jeb.164517.
  39. Hajj N, Pliushch G, Schneider E, et al. Metabolic programming of MEST DNA methylation by intrauterine exposure to gestational diabetes mellitus. Diabetes. 2013;62(4):1320-1328. https://doi.org/10.2337/ab12-0289.
  40. Peng Y, Yu S, Li H, et al. MicroRNAs: emerging roles in adipogenesis and obesity. Cell Signal. 2014;26(9):1888-1896. https://doi.org/10.1016/j.cellsig.2014.05.006.
  41. Stevens A, Begum G, White A. Epigenetic changes in the hypothalamic pro-opiomelanocortin gene: A mechanism linking maternal undernutrition to obesity in the offspring? Eur J Pharmacol. 2011;660(1):194-201. https://doi.org/10.1016/j.ejphar.2010.10.111.
  42. Tosh DN, Fu Q, Callaway CW, et al. Epigenetics of programmed obesity: alteration in IUGR rat hepatic IGF1 mRNA expression and histone structure in rapid vs delayed postnatal catch-up growth. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2010;299(5):G1023-G1029. https://doi.org/10.1152/ajpgi.00052.2010.
  43. Rustogi D, Yadav S, Ramji S, Misha TK. Growth patterns in small for gestational age babies and correlation with insulin-like growth fator-1 levels. Indian Pediatr. 2018;55(11):975-978. https://doi.org/10.1007/s13312-018-1422-1.
  44. Mazzoccoli G, Pazienza V, Vinciguerra M. Clock genes and clock-controlled genes in the regulation of metabolic rhytms. Chronobiol Intern. 2012;29(3):227-251. https://doi.org/10.3109/07420528.2012.658127.
  45. Korkmaz A, Reiter RJ. Epigenetic regulation: a new research area for melatonin? J Pineal Res. 2008;44(1):41-44. https://doi.org/10.1111/j.1600-079X.2007.00509.x.
  46. Анисимов В.Н. Мелатонин (роль в организме, применение в клинике). – СПб.: Система, 2007. – 40 с. [Anisimov VN. Melatonin (rol’ v organizme, primenenie v klinike). Saint Petersburg: Sistema; 2007. 40 р. (In Russ.)]
  47. Kvetnoy IM. Extrapineal melatonin: location and role within diffuse neuroendocrine system. Histochem J. 1999;31(1):1-12. https://doi.org/10.1023/a:1003431122334.
  48. Reiter RJ, Tan DX, Korkmaz A, Rosales-Corral SA. Melatonin and stable circadian rhythm optimize maternal, placental and fetal physiology. Hum Reprod Update. 2014;20(2):293-307. https://doi.org/10.1093/humupd/dmt054.
  49. Dubocovich ML. Melatonin receptors: role on sleep and circadian rhythm regulation. Sleep Med. 2007;8(Suppl 3):34-42. https://doi.org/10.1016/j.sleep.2007.10.007.
  50. Евсюкова И.И., Кветной И.М. Мелатонин и циркадианные ритмы в системе мать – плацента – плод // Молекулярная медицина. − 2018. − Т. 16. − № 6. − С. 9−13. [Evsyukova II, Kvetnoy IM. Melatonin and circadian rhythms in the system mother-placenta-fetus. Molekuliarnaia meditsina. 2018;16(6):9-13. (In Russ.)]. https://doi.org/10.29296/24999490-2018-06-02.
  51. Voiculescu SE, Zugouropoulos N, Zahiu CD, Zagrean AM. Role melatonin in embryo fetal development. J Med Life. 2014;7(4):488-492.
  52. Sagrillo-Fagundes L, Assuncao Salustiano EV, Yen PW, et al. Melatonin in pregnancy: effects on brain development and CNS programming disorders. Curr Pharm Des. 2016;22(8):978-986. https://doi.org/10.2174/1381612822666151214104624.
  53. Serón-Ferré M, Mendez N, Abarzua-Catalan L, et al. Circadian rhythms in the fetus. Mol Cell Endocrinol. 2012;349(1):68-75. https://doi.org/10.1016/j.mce.2011.07.039.
  54. Айламазян Э.К., Евсюкова И.И., Ярмолинская М.И. Роль мелатонина в развитии гестационного сахарного диабета // Журнал акушерства и женских болезней. − 2018. − Т. 67. − № 1. − С. 85–91. [Aulamazyan EK, Evsyukova II, Yarmolinskaya MI. The role of melatonin in development of gestational diabetes mellitus. Journal of obstetrics and women’s diseases. 2017;67(1):85-91. (In Russ.)]. https://doi.org/10.17816/JOWD67185-91.
  55. Forrestel AC, Miedlich SU, Yurcheshen M, et al. Chronomedicine and type 2 diabetes: shining some light on melatonin. Diabetologia. 2017;60(5):808-822. https://doi.org/10.1007/s00125-016-4175-1.
  56. Zeng K, Gao Y, Wan J, et al. The reduction in circulating levels of melatonin may be associated with the development of preeclampsia. J Hum Hypertens. 2016;30(11):666-671. https://doi.org/10.1038/jhh.2016.37.
  57. Lanoix D, Guerin P, Vaillancourt C. Placental melatonin production and melatonin receptor expression are altered in preeclampsia: new insights into the role of this hormone in pregnancy. J Pineal Res. 2012;53(4):417-425. https://doi.org/10.1111/j.1600-079X.2012.01012.x.
  58. Kennaway DJ. Programming of the fetal suprachiasmatic nucleus and subsequent adult rhythmicity. Trends Endocrinol Metab. 2002;13(9):398-402. https://doi.org/10.1016/s1043-2760(02)00692-6.
  59. Chen YC, Sheen JM, Tiao MM, et al. Role of melatonin in fetal programming in compromised pregnancies. Int J Mol Sci. 2013;14(3):5380-5401. https://doi.org/10.3390/ijms14035380.
  60. Mendez N, Halabi D, Spichiger C, et al. Gestational chronodisruption impairs circadian physiology in rat male offspring, increasing the risk of chronic disease. Endocrinology. 2016;157(12):4654-4668. https://doi.org/10.1210/en 2016-1282.
  61. Bagnell CA, Bartol FF. Relaxin and the “Milky-Way”: the lactocrine hypothesis and maternal programming of development. Mol Cell Endocrinol. 2019;487:18-23. https://doi.org/10.1016/j.mce.2019.01.003.
  62. Ellsworth L, Harman E, Padmanabhan V, Gregg B. Lactation programming of glucose homeostasis: a window of opportunity. Reproduction. 2018;156(2):R23-R42. https://doi.org/10.1530/REP-17-0780.
  63. Daniels KM, Farmer C, Jimenez-Flores R, Rijnkels M. Lactation biology symposium: the long-term impact of epigenetics and maternal influence on the neonate through milk-borne factors and nutrient status. J Anim Sci. 2013;91(2):673-675. https://doi.org/10.2527/jas.2013-6237.
  64. Grunewald M, Hellmuth C, Kirchberg FF, et al. Variation and interdependencies of human milk macronutrients, fatty acids, adiponectin, insulin, and IGF-II in the European PreventCD cohort. Nutrients. 2019;11(9). pii: E2034. https://doi.org/10.3390/nu11092034.
  65. Molad M, Ashkenazi L, Gover A, et al. Melatonin stability in human milk. Breastfeed Med. 2019;14(9):680-682. https://doi.org/10.1089/bfm.2019.0088.
  66. Illnerova H, Buresova M, Presl J. Melatonin rhythm in human milk. J Clin Endocrin Metab. 1993;77(3):838-841. https://doi.org/10.1210/jcem.77.3.8370707.
  67. Szewczyk-Golec K, Wozniak A, Reiter RJ. Inter-relationships of the chronobiotic, melatonin, with leptin and adiponectin: implications for obesity. J Pineal Res. 2015;59(3):277-291. https://doi.org/1./1111/jpi.12257.
  68. Cipolla-Neto J, Amaral FG, Afeche SC, et al. Melatonin, energy metabolism, and obesity: a review. J Pineal Res. 2014;56(4):371-381. https://doi.org/10.1111/jpi.12137.
  69. De Souza CA, Gallo CC, de Camargo LS, et al. Melatonin multiple effects on brown adipose tissue molecular machinery. J Pineal Res. 2019;66(2):e12549. https://doi.org/10.1111/jpi.12549.
  70. Cipolla-Neto J, Amaral FG. Melatonin as a hormone: new physiological and clinical insights. Endocr Rev. 2018;39(6):990-1028. https://doi.org/10.1210/er.2018-00084.
  71. Yin J, Li Y, Han H, et al. Melatonin reprogramming of gut microbiota improves lipid dysmetabolism in high-fat diet-fed mice. J Pineal Res. 2018;65(4):e12524 https://doi.org/10.1111/jpi.12524.
  72. Xu P, Wang J, Hong F, et al. Melatonin prevents obesity through modulation of gut microbiota in mice. J Pineal Res. 2017;62(4). https://doi.org/10.1111/jpi.12399.
  73. Тain YL, Huang LT, Hsu CN. Developmental programming of adult disease: reprogramming by melatonin? Int J Mol Sci. 2017;18(2). pii: 426. https://doi.org/10.3390/ijms.18020426.
  74. Cisternas CD, Compagnucci MV, Conti NR, et al. Protective effect of maternal prenatal melatonin administration rat pups born to mothers submitted to constant light during gestation. Braz J Med Biol Res. 2010; 43(9):874-882. https://doi.org/10.1590/s0100-879x2010007500083.
  75. Baxi DB, Singh PK, Vachhrajani KD, Ramachandran AV. Neonatal corticosterone programs for thrifty phenotype adult diabetic manifestations and oxidative stress: Countering effect of melatonin as a deprogrammer. J Matern Fetal Neonatal Med. 2012;25(9):1574-1585. https://doi.org/10.3109/14767058.2011.648235.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Евсюкова И.И., Айламазян Э.К., 2020

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 66759 от 08.08.2016 г. 
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия Эл № 77 - 6389
от 15.07.2002 г.



Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах