Видовой состав вагинальных лактобацилл в I, II и III триместрах как маркер исходов беременности

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Обоснование. Лактобациллы — основной и самый важный компонент вагинальной микробиоты у женщин в репродуктивном возрасте. Во время беременности состав микробиоты влагалища изменяется и приобретает дополнительное значение, выступая в качестве барьера против инфекции как для матери, так и для плода и способствуя нормальному течению беременности, восстановлению в послеродовом периоде и первичной колонизации новорожденного. Изменения в составе и количестве вагинальных лактобацилл во время беременности могут привести к серьезным нарушениям. Несмотря на множество исследований роли вагинальной микробиоты, детали изменения состава и разнообразия лактобацилл, которые могут повлиять на исходы беременности, изучены недостаточно.

Цель — оценить состав и стабильность лактофлоры влагалища в каждом триместре для прогнозирования исходов беременности.

Материалы и методы. В открытом проспективном исследовании участвовали 100 женщин, вставших на диспансерный учет при сроке до 12 нед. беременности. Для определения типа микробиоценоза и видового состава лактобацилл изучали отделяемое влагалища микроскопическим методом и методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени.

Результаты. У 86 (86 %) беременных тип микробиоценоза влагалища соответствовал нормоценозу, у 4 (4 %) — промежуточному типу и у 10 (10 %) пациенток установлен бактериальный вагиноз. Частота невынашивания беременности составила 19 %, из них преждевременные роды были у 7 % женщин, выкидыши — у 12 %. Концентрация лактобацилл во влагалище каждой беременной в течение трех триместров оставалась относительно стабильной. Среди доминирующей микрофлоры к III триместру увеличилась частота обнаружения Lactobacillus crispatus. Выявление Lactobacillus iners связано с увеличением частоты преждевременных родов и может рассматриваться как неблагоприятный фактор.

Заключение. Исследование лактобациллярного состава микробиоты влагалища у беременных групп риска по невынашиванию с помощью полимеразной цепной реакции обладает прогностической ценностью и может свидетельствовать о возможном скрининговом характере данного теста.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Наталья Руслановна Беляева

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Автор, ответственный за переписку.
Email: natascha778@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-4277-1474
SPIN-код: 4126-3035
Россия, Санкт-Петербург

Ольга Викторовна Будиловская

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д. О. Отта

Email: o.budilovskaya@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-7673-6274
SPIN-код: 7603-6982

канд. мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Татьяна Алексеевна Хуснутдинова

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: husnutdinovat@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-2742-2655
SPIN-код: 9533-9754

канд. мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Анна Александровна Крысанова

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: krusanova.anna@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4798-1881
SPIN-код: 2438-0230

канд. мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Кира Валентиновна Шалепо

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: 2474151@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-3002-3874
SPIN-код: 2527-7198

канд. мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Алевтина Михайловна Савичева

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: savitcheva@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-3870-5930
SPIN-код: 8007-2630

д-р мед. наук, профессор, засл. деят. науки РФ

Россия, Санкт-Петербург

Наталья Игоревна Тапильская

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: tapnatalia@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-5309-0087
SPIN-код: 3605-0413

д-р мед. наук, профессор

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Полякова Т.В. Анализ динамики самопроизвольных выкидышей в России // Актуальные исследования. 2021. № 50 (77). С. 42–44 [дата обращения 12.09.2023]. Доступ по ссылке: https://apni.ru/article/3434-analiz-dinamiki-samoproizvolnikh-vikidishej
  2. Grewal K., Lee Y.S., Smith A., et al. Chromosomally normal miscarriage is associated with vaginal dysbiosis and local inflammation // BMC Med. 2020. Vol. 20. No. 1. P. 38. doi: 10.1186/s12916-021-02227-7
  3. Gomez-Lopez N., Galaz J., Miller D., et al. The immunobiology of preterm labor and birth: intra-amniotic inflammation or breakdown of maternal-fetal homeostasis // Reproduction. 2022. Vol. 164. No. 2. P. R11–R45. doi: 10.1530/REP-22-0046
  4. Tchirikov M., Schlabritz-Loutsevitch N., Maher J., et al. Mid-trimester preterm premature rupture of membranes (PPROM): etiology, diagnosis, classification, international recommendations of treatment options and outcome // J. Perinat. Med. 2018. Vol. 46. No. 5. P. 465–488. doi: 10.1515/jpm-2017-0027
  5. Romero R., Pacora P., Kusanovic J.P., et al. Clinical chorioamnionitis at term X: microbiology, clinical signs, placental pathology, and neonatal bacteremia – implications for clinical care // J. Perinat. Med. 2021. Vol .49. No. 3. P. 275–298. doi: 10.1515/jpm-2020-0297
  6. Romero R., Gomez-lopez N., Winters A.D., et al. Evidence that intra-amniotic infections are often the result of an ascending invasion – a molecular microbiological study // J. Perinat. Med. 2019. Vol. 47. No. 9. P. 915–931. doi: 10.1515/jpm-2019-0297
  7. Fan S.R., Liu P., Yan S.M., et al. Diagnosis and management of intraamniotic infection // Maternal-Fetal Medicine. 2020. Vol. 2. No. 4. P. 223–230 doi: 10.1097/FM9.0000000000000052
  8. Михалев С.А., Бабиченко И.И., Шахпазян Н.К., и др. Роль урогенитальной инфекции в развитии спонтанных преждевременных родов // Проблемы репродукции. 2019. Т. 25. № 2. С. 93–99. doi: 10.17116/repro20192502193
  9. Кира Е.Ф. Бактериальный вагиноз. Москва: МИА, 2012.
  10. Chee W.J.Y., Chew S.Y., Than L.T.L. Vaginal microbiota and the potential of Lactobacillus derivatives in maintaining vaginal health // Microb. Cell Fact. 2020. Vol. 19. No. 1. P. 203. doi: 10.1186/s12934-020-01464-4
  11. Ravel J., Gajer P., Abdo Z., et al. Vaginal microbiome of reproductive-age women // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2011. Vol. 108. No. 1. P. 4680–4687. doi: 10.1073/pnas.1002611107
  12. France M.T., Ma B., Gajer P, et al. VALENCIA: a nearest centroid classification method for vaginal microbial communities based on composition // Microbiome. 2020. Vol. 8. No. 1. P. 166. doi: 10.1186/s40168-020-00934-6
  13. Aagaard K., Riehle K., Ma J., et al. A metagenomic approach to characterization of the vaginal microbiome signature in pregnancy // PLoS One. 2012. Vol. 7. No. 6. doi: 10.1371/journal.pone.0036466
  14. Serrano M.G., Parikh H.I., Brooks J.P., et al. Racioethnic diversity in the dynamics of the vaginal microbiome during pregnancy // Nat. Med. 2019. Vol. 25. No. 6. P. 1001–1011. doi: 10.1038/s41591-019-0465-8
  15. Kiss H., Kögler B., Petricevic L., et al. Vaginal lactobacillus microbiota of healthy women in the late first trimester of pregnancy// BJOG. 2007. Vol. 114. No. 11. P. 1402–1407. doi: 10.1111/j.1471-0528.2007.01412.x
  16. Veščičík P., Kacerovská Musilová I., Stráník J., et al. Lactobacillus crispatus dominant vaginal microbiota in pregnancy // Česka Gynekol. 2020. Vol. 85. No. 1. P. 67–70.
  17. Будиловская О.В., Шипицына Е.В., Герасимова Е.Н., и др. Видовое разнообразие вагинальных лактобацилл в норме и при дисбиотических состояниях // Журнал акушерства и женских болезней. 2017. Т. 66. № 2. C. 24–32. doi: 10.17816/JOWD66224-32
  18. Мелкумян А.Р., Припутневич Т.В., Анкирская А.С., и др. Видовой состав лактобактерий при различном состоянии микробиоты влагалища у беременных // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2013. Т. 15. № 1. С. 72–79.
  19. Ворошилина Е.С., Зорников Д.Л., Плотко Е.Э. Нормальное состояние микробиоценоза влагалища: оценка с субъективной, экспертной и лабораторной точек зрения // Вестник Российского государственного медицинского университета. 2017. № 2. С. 42–46. doi: 10.24075/brsmu.2017-02-06
  20. Синякова А.А., Шипицына Е.В., Будиловская О.В., и др. Клинико-анамнестические и микробиологические предикторы невынашивания беременности // Журнал акушерства и женских болезней. 2019. Т. 68. № 2. С. 59–70. doi: 10.17816/JOWD68259-70
  21. Edwards V.L., Smith S.B., McComb E.J., et. al. The cervicovaginal microbiota host interaction modulates Chlamydia trachomatis infection // mBio. 2019. Vol. 10. No. 4. doi: 10.1128/mBio.01548-19
  22. Wang S., Wang Q., Yang E., et al. Antimicrobial compounds produced by vaginal Lactobacillus crispatus are able to strongly inhibit candida albicans growth, hyphal formation and regulate virulence-related gene expressions // Front. Microbiol. 2017. Vol. 8. P. 564. doi: 10.3389/fmicb.2017.00564
  23. Borgdorff H., Tsivtsivadze E., Verhelst R., et al. Lactobacillus-dominated cervicovaginal microbiota associated with reduced HIV/STI prevalence and genital HIV viral load in African women // ISME J. 2014. Vol. 8. No. 9. P. 1781–1793. doi: 10.1038/ismej.2014.26
  24. Amerson-Brown M.H., Miller A.L., Maxwell C.A., et al. Cultivated human vaginal microbiome communities impact zika and herpes simplex virus replication in ex vivo vaginal mucosal cultures // Front. Microbiol. 2019. Vol. 9. P. 3340. doi: 10.3389/fmicb.2018.03340
  25. Пестрикова Т.Ю., Котельникова А.В. Видовой состав вагинальной лактофлоры у женщин с заболеваниями влагалища и шейки матки // Женское здоровье и репродукция: сетевое издание. 2021. № 2(49) [дата обращения 12.09.2023]. Доступ по ссылке: http://whfordoctors.su/statyi/vidovoj-sostav-vaginalnoj-laktoflory-u-zhenshhin-s-patologiej-vlagalishha-i-shejki-matki/
  26. Tamarelle J., Thiébaut A.C.M., de Barbeyrac B., et al. The vaginal microbiota and its association with human papillomavirus, Chlamydia trachomatis. Neisseria gonorrhoeae and Mycoplasma genitalium infections: a systematic review and meta-analysis // Clin. Microbiol. Infect. 2019. Vol. 25. No. 1. P. 35–47. doi: 10.1016/j.cmi.2018.04.019
  27. van Houdt R., Ma B., Bruisten S.M., et al. Lactobacillus iners-dominated vaginal microbiota is associated with increased susceptibility to Chlamydia trachomatis infection in Dutch women: a case-control study // Sex. Transm. Infect. 2018. Vol. 4. No. 2. P. 117–123. doi: 10.1136/sextrans-2017-053133
  28. Kwak W., Han Y.H., Seol D., et al. Complete genome of Lactobacillus iners KY using flongle provides insight into the genetic background of optimal adaption to vaginal econiche // Front. Microbiol. 2020. Vol. 11. P. 1048. doi: 10.3389/fmicb.2020.01048
  29. Nugent R.P., Krohn M.A., Hillier S.L. Reliability of diagnosing bacterial vaginosis is improved by a standardized method of gram stain interpretation // J. Clin. Microbiol. 1991. Vol. 29. No. 2. P. 297–301. doi: 10.1128/jcm.29.2.297-301.1991
  30. Witkin S.S., Moron A.F., Linhares I.M., et al. Influence of Lactobacillus crispatus, Lactobacillus iners and Gardnerella vaginalis on bacterial vaginal composition in pregnant women // Arch. Gynecol. Obstet. 2021. Vol. 304. No. 2. P. 395–400. doi: 10.1007/s00404-021-05978-z
  31. Gupta P., Singh M.P., Goyal K. Diversity of vaginal microbiome in pregnancy: deciphering the obscurity // Front. Public. Health. 2020. Vol. 8. P. 326. doi: 10.3389/fpubh.2020.00326
  32. Fettweis J.M., Serrano M.G., Brooks J.P., et al. The vaginal microbiome and preterm birth // Nat. Med. 2019. Vol. 25. No. 6. P. 1012–1021. doi: 10.1038/s41591-019-0450-2
  33. Parolin C., Frisco G., Foschi C., et al. Lactobacillus crispatus BC5 interferes with chlamydia trachomatis infectivity through integrin modulation in cervical cells // Front. Microbiol. 2018. Vol. 9. P. 2630. doi: 10.3389/fmicb.2018.02630
  34. MacIntyre D.A., Chandiramani M., Lee Y.S., et al. The vaginal microbiome during pregnancy and the postpartum period in a European population // Sci. Rep. 2015. Vol. 5. P. 8988. doi: 10.1038/srep08988
  35. Ходжаева З.С., Гусейнова Г.Э., Муравьева В.В., и др. Характеристика микробиоты влагалища у беременных с досрочным преждевременным разрывом плодных оболочек // Акушерство и гинекология. 2019. № 12. С. 66–74. doi: 10.18565/aig.2019.12.66-74
  36. Bayar E., Bennett P.R., Chan D., et al. The pregnancy microbiome and preterm birth // Semin. Immunopathol. 2020. Vol. 42. No. 4. P. 487–499. doi: 10.1007/s00281-020-00817-w
  37. Zierden H.C., DeLong K., Zulfiqar F., et. al. Cervicovaginal mucus barrier properties during pregnancy are impacted by the vaginal microbiome // Front. Cell. Infect. Microbiol. 2013. Vol. 13. doi: 10.3389/fcimb.2023.1015625
  38. France M.T., Mendes-Soares H., Forney L. J. Genomic comparisons of Lactobacillus crispatus and Lactobacillus iners reveal potential ecological drivers of community composition in the vagina // Appl. Environ. Microbiol. 2016. Vol. 82. No. 24. P. 7063–7073. doi: 10.1128/AEM.02385-16
  39. Goodfellow L., Verwijs M.C., Care A., et al. Vaginal bacterial load in the second trimester is associated with early preterm birth recurrence: a nested case-control study // BJOG. 2021. Vol. 128. No. 13. P. 2061–2072. doi: 10.1111/1471-0528.16816
  40. Chan D., Bennett P.R., Lee Y.S., et al. Microbial-driven preterm labor involves crosstalk between the innate and adaptive immune response // Nat. Commun. 2022. Vol. 13. No. 1. P. 975. doi: 10.1038/s41467-022-28620-1
  41. Witkin S., Linhares I. Why do lactobacilli dominate the human vaginal microbiota? // BJOG. 2016. Vol. 124. No. 4. P. 606–611. doi: 10.1111/1471-0528.14390
  42. Smith S.B., Ravel J. The vaginal microbiota, host defence and reproductive physiology // J. Physiol. 2017. Vol. 595. No. 2. P. 451–463. doi: 10.1113/JP271694
  43. Witkin S.S., Mendes-Soares H., Linhares I.M., et. al. Influence of vaginal bacteria and D-and L-lactic acid isomers on vaginal extracellular matrix metalloproteinase inducer: implications for protection against upper genital tract infections // MBio. 2013. Vol. 4. No. 4. doi: 10.1128/mBio.00460-13
  44. Baud A., Hillion K. H., Plainvert C., et. al. Microbial diversity in the vaginal microbiota and its link to pregnancy outcomes// Scientific Reports. 2023. Vol. 13. No. 1. P. 9061. doi: 10.1038/s41598-023-36126-z
  45. Al-Memar M., Bobdiwala S., Fourie H., et al. The association between vaginal bacterial composition and miscarriage: a nested case-control study // BJOG. 2020. Vol. 127. No. 2. P. 264–274. doi: 10.1111/1471-0528.15972

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Распределение доминирующих видов лактобацилл в зависимости от типа микробиоценоза влагалища у женщин в I триместре беременности

Скачать (85KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Оценка состава лактобациллярной микрофлоры в течение беременности в общей группе пациенток (десятичный логарифм концентрации)

Скачать (336KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Динамика концентрации Lactobacillus vaginalis в общей группе беременных

Скачать (73KB)
Метаданные
5. Рис. 4. Различия в динамике Lactobacillus iners в группах срочных и преждевременных родов

Скачать (98KB)
Метаданные
6. Рис. 5. Доминирование видов лактобацилл в течение беременности во всех группах женщин

Скачать (298KB)
Метаданные
7. Рис. 6. Динамика доминирования Lactobacillus crispatus в течение беременности во всех группах женщин

Скачать (66KB)
Метаданные
8. Рис. 7. Различия в частоте доминирования Lactobacillus iners в I и во II триместрах беременности у женщин с преждевременными родами (вторая группа)

Скачать (99KB)
Метаданные
9. Рис. 8. Сравнение частоты доминирования разных видов лактобацилл в зависимости от исхода беременности в виде выкидыша

Скачать (204KB)
Метаданные

© Эко-Вектор, 2023

Ссылка на описание лицензии: https://eco-vector.com/for_authors.php#07
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 66759 от 08.08.2016 г. 
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия Эл № 77 - 6389 от 15.07.2002 г.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах