俄罗斯B组链球菌毒力岛PAI-A和PAI-A1的流行率
- 作者: Kuleshevich E.V.1, Ilyasov Y.Y.1, Linnik D.S.1, Malchenkova A.A.1, Arzhanova O.N.2, Briko N.I.3, Glushkova E.V.3, Priputnevich T.V.4, Suvorov A.N.1,5
-
隶属关系:
- Institute of Experimental Medicine
- Research Institute of Obstetrics, Gynecology, and Reproductology named after D.O. Ott, Saint Petersburg State University
- I.M. Sechenov First Moscow State Medical University
- National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named after Academician V.I. Kulakov
- Saint Petersburg State University
- 期: 卷 70, 编号 4 (2021)
- 页面: 65-72
- 栏目: Original Research
- ##submission.dateSubmitted##: 25.02.2021
- ##submission.dateAccepted##: 30.06.2021
- ##submission.datePublished##: 05.10.2021
- URL: https://journals.eco-vector.com/jowd/article/view/61875
- DOI: https://doi.org/10.17816/JOWD61875
- ID: 61875
如何引用文章
详细
组链球菌B或Streptococcus agalactiae是新生儿和成人严重疾病的病原体。组链球菌B的移动遗传元件中发现了分别含有sspB1和sspB1a基因的致病岛PAI-A和PAI-A1。SspB基因的存在与泌尿生殖道感染相关。本研究的目的是确定与来自圣彼得堡的菌株相比,在莫斯科流通的具有致病性岛PAI-A和PAI-A1的组链球菌菌株B的出现频率。莫斯科菌株的基因组中未检测到sspB1基因以及PAI-A致病岛。临床菌株基因组中sspB1a基因和PAI-A1致病岛的出现频率是定植菌株基因组的3倍。因此,可以假设sspB家族的基因更具有定植孕妇和新生儿的B组链球菌的特征。
全文:
论证
长期以来,B族链球菌(GBS)被认为是奶牛乳腺炎的唯一病原体,但后来人们发现,这种病原体可引起人类多种疾病,影响多种器官和组织[1]。
GBS感染或的新生儿分为早期(生命的前六天) 和晚期(从生命的第七天到三个月)。对于早期感染,GBS可导致败血症、肺炎,脑膜炎较少见,而晚期感染可导致脑膜炎。GBS感染的新 生儿发生率为0.53例/1000活产,患病者死亡率为9.6%[2,3]。GBS引起的新生儿疾病在世界范围内广泛存在,孕妇GBS定植发生率在美国从10%到30%不等,在欧洲从6.5%到36%不等,在亚洲从7.1%到16%不等,从9.1起中东为25.3%,非洲为11.9%至31.6%[3,4]。
孕妇和年轻母亲中,GBS会导致侵袭性(血流感染、脑膜炎、骨髓炎和心内膜炎)和非侵袭性感染(菌尿、筋膜炎、蜂窝织炎、子宫内膜炎和伤口感染)[4]。
成人中GBS可引起关节炎、心内膜炎、肺炎、细菌、泌尿道、软组织、皮肤和骨骼感染。风险人群包括免疫力低下的人群和老年人[4]。
目前,已知10种GBS血清型:Ia、Ib、II–IX。GBS血清型的流行和优势因地理区域而异。因此,血清型Ia、Ib、II、III和V在美国和欧洲的定殖菌株中占优势,VI和VIII - 在日本的孕妇中,IV和V - 在阿联酋和埃及的孕妇中分别占优势。新生儿迟发性脑膜炎的大多数病例是由侵袭性血清型III菌株引起的,而在其他情况下(非孕妇),Ia和V血清型的侵袭性分离株占优势。然而,最近的研究表明,在新生儿和成人中都出现了侵入性菌株,以及IV血清型的定植菌株。马来西亚,在主要定植菌株中发现了VI血清型,它是成人中第二大最常见的由GBS引起的皮肤和软组织感染的分离株。在埃及血清型VI是女性常见的定植血清型。最近在台湾中部,在定殖和侵入性分离株中发现了VI血清型的传播。几项研究已经在定植和侵袭性GBS疾病的病原体中鉴定了散发的VIII血清型菌株。美国和欧洲也发现了类似的V血清型[4]。
所有地理区域97%的新生儿侵袭性B链球菌感染的病原体是五种血清型(Ia、Ib、II、III和V) 的GBS,其中血清型III占主导地位[5]。
大多数由GBS引起的成人疾病病例是由GBS血清型V、Ia、III引起的[6]。
由于血清型在世界不同地理区域的分布不同,科学家正在开发多组分疫苗,以预防主要血清型的GBS。
制药公司葛兰素史克(GlaxoSmithKline,GSK)已完成针对GBS(血清型Ia、Ib和III)的CPS-CRM197三价结合疫苗的I/II期临床试验,并正在计划对五价疫苗(血清型Ia、Ib、II、III和V)[6]。
制药公司辉瑞(Pfizer)还宣布了一项五价结合疫苗(血清型Ia、Ib、II、III和V)的临床试验,以评估耐受性和免疫原性的安全性[6]。
GBS对各种生态位的快速适应可以用许多致病因素来解释。其中一些描述如下。
Bac蛋白与人体免疫系统的以下成分相互作用:免疫球蛋白A的Fc片段和因子H[7]。
ScaAB脂蛋白参与二价金属的运输和粘附过程[8]。
丝氨酸蛋白酶C5a-肽酶裂解,并灭活人类补体的C5a成分[9,10]。它还结合纤连蛋白并促进细菌入侵上皮细胞[7]。
还有另一种丝氨酸蛋白酶CspA,可裂解纤连蛋白的细胞外基质[11]。
表面蛋白SspB1包括α螺旋结构、葡聚糖结合域和LPXTG细胞壁中的锚定位点,这使得将该蛋白归类为粘附素成为可能。SspB1a蛋白是其同源物;它们在蛋白质水平上的同一性为72%[12]。作者认为sspB家族基因的存在不会显着影响妊娠过程,但会导致胎儿和新生儿发生宫内感染[13]。这些蛋白质可以促进对泌尿生殖道上皮的粘附。SspB基因的存在与泌尿生殖道感染相关[12]。
由于世界不同地区血清型的变异性,不可能研制出通用疫苗,因此我们转而研制基于表面蛋白的重组疫苗。
因此,在分子微生物学系,Institute of Experimental Medicine,开发了五价重组和重组嵌合疫苗(基于五种表面蛋白:Bac、ScaAB、SspB1、 ScpB、CspA),以及基于益生菌菌株屎肠球菌L3的活疫苗[14-16]。
GBS的许多致病因素都集中在可移动的遗传元件上;因此,水平基因转移有助于形成新的高毒株。二十一世纪初在GBS中发现了14到15个致病岛[17,18]。
GBS的移动遗传元件中鉴定了分别含有sspB1和sspB1a基因的致病岛PAI-A和PAI-A1[19-21]。
SspB1和sspB1a基因以及因此圣彼得堡的致病岛PAI-A和PAI-A1的出现频率分别为9%和29%[21]。然而,对NCBI数据库的分析表明,世界上PAI-A岛的出现要少得多。俄罗斯的其他地区没有关于所研究的各种血清型GBS致病性岛屿流行情况的信息GBS菌株的基因组和毒力没有迹象表明这些致病岛的存在之间存在联系。
这方面本研究的目的是确定致病岛PAI-A和PAI-A1在GBS的临床和定植菌株中出现的频率。
材料与方法
细菌菌株和栽培条件
该研究包括以下菌株:
- 2014-2016年在库拉科夫国家妇产科和围产期医学研究中心(临床)分离出24菌株;
- 1987-1990年(定植)在谢切诺夫大学43菌株。
37°C的夜晚在Todd Hewitt肉汤(Pronadisa,西班牙)上生长了菌株。
聚合酶链反应
根据制造商的建议,使用“Express DNA Bio”(“Express DNA Bio”)(“Express DNA Bio”)分离来自GBS菌株的DNA。
根据制造商的建议和底漆扩增进行在设备C1000(Biorad,United States)中使用双重主混合梦想 - Taq Green (Thermo Fisher Science,立陶宛)表示1。
表1 用于定义sspB1和sspB1a基因的引物
引物名称 | 序列引物 | 产品尺寸,bp | 基因 |
sspB1971 | cgt gat att acg ttt ggc aag a | 1536 | 表面粘合剂 SspB1 |
sspB3485 | cca gtt cct gaa ccg ata aaa g | ||
sspB1aF | tgg taa tat tct ccc cct tgg | 220 | SspB1a |
sspB1aR | ttg cca gat gaa gca gct att |
在1%琼脂糖凝胶中评价聚合酶链反应(PCR)的结果,并使用×1缓冲液加入溴化乙锭。结果在VerseDoc旋晶铝器中可视化。
多重聚合酶链反应
为了鉴定多糖胶囊性质中GBS的类型,使用多重PCR[22]。
统计分析
使用精确的菲舍尔检验评估收集之间的差异的重要性。为此,在网站上使用在线程序https://molbiol.kirov.ru/utilites/multitool/。
结果与讨论
B组链球菌的研究菌株测定血清型
为了研究不同人群中GBS血清型的发生率,对菌株DNA胶囊蛋白基因进行了多路PCR检测,上述[22]。来自库拉科夫大学的一种菌株的血清型和谢切诺夫大学的18株无法通过这种方法确定。该组临床菌株还包括先前分析的GBS菌株,就在妇产科研究所和生殖病学研究所D.O. Ott(173株)标出和在西北I.I. Mechnikov国家医科大学(1株)[21,23]。数据如表2所示。
表2 B组链球菌研究菌株血清型出现频率(%)
血清型 | 殖民地 | 临床的 |
Ia | 23 | 22 |
Ib | 7 | 4 |
II | 19* | 8* |
III | 0* | 18* |
IV | 0* | 18* |
V | 2 | 12 |
VI | 0 | 0 |
VII | 2 | 1 |
VIII | 5* | 0* |
* 表明两组之间存在统计学显著差异(p<0.05)。
定植菌株中血清型Ia、II和Ib占主导地位,而在临床菌株中 - Ia、II、III、IV和V。这两个收藏品中都发现了俄罗斯罕见的血清型VII和VIII。
因此,血清型Ia在两个集合中占主导地位,血清型II和VIII在定植菌株中更常见,而血清型III和IV仅对从孕妇和新生儿分离的菌株具有特征。获得的结果与文献数据一致,根据文献数据,所有地理区域的主要血清型为Ia、Ib、II、III和V。当比较临床菌株集合中的菌株时,发现来自圣彼得堡的菌株的血清型IV更为典型,来自莫斯科的菌株的血清型III更为典型。
sspB1和sspB1a基因相关的B组链球菌致病性PAI-A和PAI-A1岛的出现频率
在GBS菌株的基因组中发现了两个致病性同源岛PAI-A和PAI-A1[21]。致病岛的结构如图所示。
图1 B组链球菌致病岛PAI-A和PAI-A1的结构。垂直线表示同源区域
为了确定这些移动遗传元件的发生频率, 对sspB1和sspB1a基因进行了PCR,它们是上述致病岛的标记基因。此前发现sspB1和sspB1a基因分别位于圣彼得堡9%和29%菌株的基因组中[21]。图2显示了sspB1a基因临床菌株DNA的PCR结果。
图2 SspB1a:基因临床菌株聚合酶链反应产物的电泳图谱:1 - 菌株2978、2 - 菌株3093、3 - 菌株2828、 4 - 菌株3481、5 - 菌株3482、6 - 菌株2698、7 - 菌株3085、 8 - 菌株3030、9 - 阳性对照
8%的临床菌株的基因组中发现sspB1基因。然而,莫斯科的菌株中没有sspB1基因的菌株 (表3)。因此,具有致病性PAI-A岛的GBS菌株主要在圣彼得堡传播。
表3 组链球菌B研究菌株中sspB1和sspB1a基因的出现频率(%)
基因 | 殖民地 | 临床的 |
sspB1 | 0 | 8 |
sspB1a | 9* | 30* |
* 表明两组之间存在统计学显著差异(p<0.05)。
PCR结果发现30%的临床菌株和9%的定植菌株的基因组中存在sspB1a基因。sspB1a基因更常见于临床菌株的基因组中。
因此,可以假设sspB家族的基因更具GBS定植孕妇和新生儿的特征。
结论
GBS临床株和定植株的主要血清型与世界各地的血清型流行数据一致。
基因组中带有PAI-A致病岛的GBS菌株主要在圣彼得堡传播。
同源致病岛PAI-A1的特点是发病率较高:与定植菌株相比,临床GBS菌株中该移动遗传元件的出现频率高3倍。
sspB家族基因在临床菌株基因组中的较高流行率非常重要,因为SspB1蛋白包含在GBS疫苗中。由于SspB1和SspB1a蛋白质的同源性为72%,因此疫苗可能作用于具有SspB1a基因的菌株。
附加信息
利益冲突。作者声明他们在编写本文时没有任何利益冲突。
资金来源。本研究得到了联邦州预算科学研究所“Institute of Experimental Medicine”(代码0557-20190002, 注册号R&D AAAA-A19-119022290066-6)预算资金的支持。
作者简介
Evgenia Kuleshevich
Institute of Experimental Medicine
Email: k-zh-v@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-3180-6491
Cand. Sci. (Biol.)
俄罗斯联邦, Saint PetersburgYury Ilyasov
Institute of Experimental Medicine
Email: kolpino@hotmail.com
SPIN 代码: 2204-1677
俄罗斯联邦, Saint Petersburg
Dmitry Linnik
Institute of Experimental Medicine
Email: linnikdm@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-8046-9743
俄罗斯联邦, Saint Petersburg
Anastasia Malchenkova
Institute of Experimental Medicine
Email: nastya.malchenkova@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-2201-0472
SPIN 代码: 8957-5056
俄罗斯联邦, Saint Petersburg
Olga Arzhanova
Research Institute of Obstetrics, Gynecology, and Reproductology named after D.O. Ott,Saint Petersburg State University
Email: arjanova_olga@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-3059-9811
MD, Dr. Sci. (Med.), Professor, Honored Doctor of the Russian Federation, Leading Researcher. The Department of Obstetrics and Perinatology; Professor. The Department of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Sciences, Medical Faculty
俄罗斯联邦, 3 Mendeleevskaya Line, Saint Petersburg, 199034; 7-9 Universitetskaya emb., St. Petersburg, 199034Nikolay Briko
I.M. Sechenov First Moscow State Medical University
Email: nbrico@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6446-2744
SPIN 代码: 2992-6915
MD, Dr. Sci. (Med.), Professor, Honored Scientist of the Russian Federation, Academician of the Russian Academy of Sciences
俄罗斯联邦, 8-2 Trubetskaya str., Moscow, 119991Ekaterina Glushkova
I.M. Sechenov First Moscow State Medical University
Email: ekaterina-1801@mail.ru
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MD, Cand. Sci. (Med.)
俄罗斯联邦, 8-2 Trubetskaya str., Moscow, 119991Tatyana Priputnevich
National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named after Academician V.I. Kulakov
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SPIN 代码: 8383-7023
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俄罗斯联邦, 4 Street Akademika Oparina, Moscow, 117997Alexander Suvorov
Institute of Experimental Medicine; Saint Petersburg State University
编辑信件的主要联系方式.
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SPIN 代码: 8062-5281
MD, Dr. Sci. (Med.), Professor, Corresponding Member of the Russian Academy of Sciences
俄罗斯联邦, Saint Petersburg; Saint Petersburg参考
- Totolyan AA, Suvorov AN, Dmitriev AV. Streptokokki gruppy V v patologii cheloveka. Saint Petersburg: Chelovek; 2009. (In Russ.)
- Edmond KM, Kortsalioudaki C, Scott S, et al. Group B streptococcal disease in infants aged younger than 3 months: systematic review and meta-analysis. Lancet. 2012;379(9815):547–556. doi: 10.1016/S0140-6736(11)61651-6
- Vasilyeva VA, Shipitsyna EV, Shalepo KV, et al. Molecular epidemiology of infections caused by group B streptococcus in pregnant women and newborns, and development of preventive vaccines. Journal of Obstetrics and Women’s Diseases. 2018;67(5):62–73. (In Russ.). doi: 10.17816/JOWD67562-73
- Shabayek S, Spellerberg B. Group B streptococcal colonization, molecular characteristics, and epidemiology. Front Microbiol. 2018;9:437. doi: 10.3389/fmicb.2018.00437
- Madrid L, Seale AC, Kohli-Lynch M, et al. Infant group B streptococcal disease incidence and serotypes worldwide: systematic review and meta-analyses. Clin Infect Dis. 2017;65(Suppl 2):S160–S172. doi: 10.1093/cid/cix656
- Song JY, Lim JH, Lim S, et al. Progress toward a group B streptococcal vaccine. Hum Vaccin Immunother. 2018;14(11):2669–2681. doi: 10.1080/21645515.2018.1493326
- Lindahl G, Stålhammar-Carlemalm M, Areschoug T. Surface proteins of Streptococcus agalactiae and related proteins in other bacterial pathogens. Clin Microbiol Rev. 2005;18(1):102–127. doi: 10.1128/CMR.18.1.102-127.2005
- Suvorov AN, Grabovskaya KB, Leontyeva GF, et al. Recombinant fragments of conservative proteins of group B Streptococci as a basis of specific vaccine. Zhurnal mikrobiologii, èpidemiologii i immunobiologiiZhurnal mikrobiologii, èpidemiologii i immunobiologii. 2010;2:44–50. (In Russ.)
- Chmouryguina I, Suvorov A, Ferrieri P, Cleary PP. Conservation of the C5a peptidase genes in group A and B streptococci. Infect Immun. 1996;64(7):2387–2390. doi: 10.1128/IAI.64.7.2387-2390.1996
- Cleary PP, Handley J, Suvorov AN, et al. Similarity between the group B and A streptococcal C5a peptidase genes. Infect Immun. 1992;60(10):4239–4244. doi: 10.1128/IAI.60.10.4239-4244.1992
- Rajagopal L. Understanding the regulation of Group B Streptococcal virulence factors. Future Microbiol. 2009;4(2):201–221. doi: 10.2217/17460913.4.2.201
- Suvorov A, Grabovskaja K, Savicheva A, et al. Determination of group B streptococcal genes encoding putative adherence factors in GBS clinical strains. Streptococci – New Insights Into an Old Enemy. 2006;1289:227–230. doi: 10.1016/j.ics.2005.11.026
- Oganyan KA, Suvorov AN, Zaciorskaya SL, et al. The course and outcomes of pregnancy in women with urogenital tract colonization witgroup B streptococcus inclusive genes of sspB family. Journal of Obstetrics and Women’s Diseases. 2006;55(2):47–52. (In Russ.)
- Kramskaya TA, Leontyeva GF, Grabovskaya KB, et al. The analysis of protective activity of polyvalent group В streptococcal recombinant vaccine based on conserved surface proteins. Medicinskij alfavit. 2015;1(6):30–33. (In Russ.)
- Gupalova T, Leontieva G, Kramskaya T, et al. Development of experimental GBS vaccine for mucosal immunization. PLoS One. 2018;13(6):e0198577. doi: 10.1371/journal.pone.0198577
- Filimonova VYu, Dukhovlinov IV, Kramskaya TA, et al. Chimeric proteins based on the immunogenic epitopes of streptococcus surface pathogenicity factors as vaccines for group B streptococcal infections. Medicinskij akademicheskij zhurnal. 2016;16(3):82–89. (In Russ.). doi: 10.17816/MAJ16382-89
- Glaser P, Rusniok C, Buchrieser C, et al. Genome sequence of Streptococcus agalactiae, a pathogen causing invasive neonatal disease. Molecular Microbiology. 2002;45(6):1499–513. doi: 10.1046/j.1365-2958.2002.03126.x
- Tettelin H, Masignani V, Cieslewicz MJ, et al. Complete genome sequence and comparative genomic analysis of an emerging human pathogen, serotype V Streptococcus agalactiae. Proc Natl Acad Sci USA. 2002;99(19):12391–12396. doi: 10.1073/pnas.182380799
- Brochet M, Couve E, Glaser P, et al. Integrative conjugative elements and related elements are major contributors to the genome diversity of Streptococcus agalactiae. J Bacteriol. 2008;190(20):6913–6917. doi: 10.1128/JB.00824-08
- Herbert MA, Beveridge CJE, McCormick D, et al. Genetic islands of Streptococcus agalactiae strains NEM316 and 2603VR and their presence in other Group B Streptococcal strains. BMC Microbiology. 2005;5(31):1–13. doi: 10.1186/1471-2180-5-31
- Kuleshevich E, Ferretti J, Santos Sanches I, et al. Clinical strains of Streptococcus agalactiae carry two different variants of pathogenicity island XII. Folia Microbiol (Praha). 2017;62(5):393–399. doi: 10.1007/s12223-017-0509-8
- Poyart C, Tazi A, Réglier-Poupet H, et al. Multiplex PCR assay for rapid and accurate capsular typing of group B streptococci. J Clin Microbiol. 2007;45(6):1985–1988. doi: 10.1128/JCM.00159-07
- Kuleshevich EV, Savicheva AM, Arzhanova ON, et al. Distribution and genetic organization of pathogenicity island XII among the clinical strains of GBS. Molecular genetics, microbiology and virology. 2013;28(1):15–19. doi: 10.3103/S0891416813010023
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