Применение крови марала вакуумной сушки в лечении гнойных ран

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Введение. Гнойные раны мягких тканей остаются одной из главных проблем современной хирургии. Более 30% пациентов хирургических стационаров и свыше 60–70% первичных обращений за хирургической помощью составляют пациенты с инфекционными осложнениями ран. Перспективным для потенцирования репаративных процессов представляется применение различных биогенных факторов роста, имеющих невысокую стоимость, таких как препараты марала, в частности кровь марала вакуумной сушки (КМВС).

Цель. Изучить эффективность применения КМВС в лечении гнойных ран в эксперименте.

Материалы и методы. Крысы линии Wistar (n=90), стандартизированные по полу, весу и возрасту, были разделены на 3 группы: 1-я (контрольная) — без лечения, 2-я (контрольная) — ежедневные перевязки с использованием 0,01% раствора бензилдиметил-миристоиламино-пропиламмония (БМП), 3-я (опытная) — аналогичные перевязки были дополнены нанесением КМВС. Проведено моделирование гнойных ран у крыс с последующей оценкой гиперемии, отечности мягких тканей в зоне дефекта, характера и количества отделяемого, появление эпителизации и грануляций, очищение поверхности (фибринолиз, некролиз), площади раны, гистологического и гистохимического анализа дермы кожи.

Результаты. При применении КМВС в сочетании с 0,01% раствором БМП отмечалось снижение сроков купирования местных воспалительных реакций. В 1-й группе средняя площадь раны на 7 сут составила (34,4±4,8) мм2, во 2-й — (29,3±4,6) мм2, в 3-й — (20,7±4,7) мм2. Снижение микробной обсемененности зарегистрировано в 3-й группе на 3 сут исследования до 102–103 микробных тел на миллилитр экссудата против 105–108 в контрольных группах. Морфологическая картина репаративных процессов свидетельствовала о более полном восстановлении гистоархитектоники тканей при применении комплексного лечения в опытной группе, раннем потенцировании процессов ремоделирования и активации клеточных элементов.

Заключение. Применение КМВС в комплексном лечении гнойных ран мягких тканей позволило сократить сроки купирования местных воспалительных реакций, ускорить сокращение площади раны, снизить активность роста бактериальной микрофлоры в ране. Также продемонстрирована положительная динамика клеточных элементов и волокон соединительной ткани, что свидетельствует о более полноценном восстановлении дермы при использовании предложенного метода лечения.

Полный текст

ВВЕДЕНИЕ

Гнойные раны мягких тканей остаются одной из главных проблем современной хирургии [1–3]. Более 30% пациентов хирургических стационаров и свыше 60–70% первичных обращений за хирургической помощью составляют пациенты с инфекционными осложнениями ран. По прогнозам исследователей, данные осложнения будут причиной более 10 млн ежегодных смертей, в том числе за счет роста антибиотикорезистентных микроорганизмов [4]. Также лечение инфекционных осложнений характеризуется высокой частотой инвалидизации и летальности, высокой стоимостью [5, 6]. Для решения данной проблемы активно разрабатываются различные способы лечения гнойных ран, раневые покрытия, лекарственные средства и антибиотики [7–10], биологически активные препараты, например обогащенная тромбоцитами аутоплазма [11–13].

Перспективным для потенцирования репаративных процессов представляется применение различных биогенных факторов роста, имеющих невысокую стоимость [14]. Так, препараты марала, в частности кровь марала вакуумной сушки (КМВС), отмечены рядом авторов как эффективное лекарственное сырье с доказанной высокой эффективностью [15–17]. Содержание в них различных факторов роста, таких как IGF-I, IGF-II, TGF-β, EGF, витаминов групп В, РР, аминокислот, тестостерона, гормона роста делает эти лекарственные вещества потенциальным стимулятором репаративных процессов при травмах мягких тканей [18, 19]. Однако сложность и многофакторность состава не позволяет уверенно предсказать степень их эффективности при репаративных процессах в различных тканях.

Цель — изучить эффективность применения крови марала вакуумной сушки в лечении гнойных ран в эксперименте.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Экспериментальное исследование проведено с декабря 2022 года по октябрь 2023 года на базе Научно-исследовательского института экспериментальной биологии и медицины (г. Воронеж). Исследование проведено в строгом соответствии с требованиями Федерального закона Российской Федерации от 14.05.1993 № 4979-1 «О ветеринарии» (с изменениями от 02.07.2021), Директивы 2010/63/EU Европейского парламента и Совета Европейского Союза «О защите животных, используемых в научных целях», ГОСТа № 33216-2014 «Руководство по содержанию и уходу за лабораторными животными. Правила содержания и ухода за лабораторными грызунами и кроликами» и на основании одобрения исследования Локальным этическим комитетом Воронежского государственного медицинского университета имени Н.Н. Бурденко (Протокол № 7 от 13.12.2022).

Исследование выполнено на 90 крысах линии Wistar, стандартизированных по полу, весу и возрасту и разделенных случайным образом на 3 группы:

- в 1-й (контрольной) группе (n=30) лечение ран не проводилось;

- во 2-й (контрольной) группе (n=30) животным ежедневно проводили перевязки с использованием 0,01% раствора бензилдиметил-миристоиламино-пропиламмония (БМП);

- в 3-й (опытной) группе (n=30) ежедневные перевязки с использованием 0,01% раствора БМП были дополнены нанесением КМВС в дозе 0,7 г/см2 (размер частиц 100–150 мкм).

Моделирование гнойной раны проводили по следующей схеме: на первом этапе — под ингаляционным наркозом (изофлуран, доза при индукции — 3,0–5,0%, для поддержания — 1,5–3,0%) выбривали шерсть животного в области холки сначала триммером, затем одноразовым станком, подготовленное операционное поле дважды обрабатывали 0,01% раствором БМП. На втором этапе скальпелем по пластиковому шаблону круглой формы диаметром 1,3 см иссекали мягкие ткани и поверхностную фасцию. Для контаминации использовали культуру S. aureus (1 мл, 109 микробных тел), которую наносили на ватно-марлевый тампон и помещали в область раневого дефекта. Далее на края раны накладывали 3–4 узловых шва до полного закрытия дефекта. На 2 сут отмечались выраженные гиперемия и отечность в области раны, появление тканевого отделяемого. На 3 сут швы удаляли, определялась значительная гнойная экссудация, раневую поверхность промывали 0,01% раствором БМП, удаляли нежизнеспособные ткани и начинали лечение. После моделирования все животных находились в индивидуальных клетках с одинаковыми условиями питания и ухода.

Вывод животных из эксперимента и забор биологического материала для выполнения гистологического и гистохимического исследований осуществляли на 1, 3, 5, 7 и 14-е сут после моделирования.

Ежедневно проводили визуальную оценку гиперемии, отечности мягких тканей в зоне дефекта, характера и количества отделяемого, появление эпителизации и грануляций, очищение поверхности (фибринолиз, некролиз). При выполнении планиметрических исследований с расчетом площади раневых поверхностей использовали программное обеспечение для персонального компьютера WoundVision (ИИМЕДСКАН, Россия) и камеру RealSeance D415 (Intel, Китай). Морфологический анализ материала дермы кожи крыс проведен с использованием окрашивания растворами гематоксилина и эозина, по Гимзе, импрегнация серебром и толуидиновым синим. Также оценивали динамику тучных клеток, процессов образования коллагена, площади воспалительного инфильтрата.

Статистическая обработка полученных данных проводилась с использованием пакетов прикладных программ Statistica 10.0 (Stat Soft Inc., США) и Excel 2010 (Microsoft, США). Выполнялась проверка нормальности распределения, и использовались методы описательной статистики: расчет среднего значения (M) полученных результатов, среднеквадратичного отклонения (SD) в пределах исследуемых групп. Для определения достоверности различий использовали t-критерий Стьюдента для оценки показателей с нормальным распределением, Манна–Уитни — показателей, распределение которых не соответствовало нормальному, t-критерий Уилкоксона — для зависимых выборок при несоответствии нормальному распределению. Уровень значимости принят за 5,0% (p <0,05).

РЕЗУЛЬТАТЫ

Средние сроки купирования местных признаков воспаления при лечении гнойных ран представлены в таблице 1, динамика сокращения площади раневой поверхности — в таблице 2.

 

Table 1. Time (M±SD) of relief of local inflammation signs in the control and experimental study groups, days

Симптомы раневого процесса

Группа исследования

р

1

2

3

Некролиз

4,3±0,2

3,9±0,2

3,6±0,2

р1-2=0,075

р1-3=0,032

р2-3=0,041

Гиперемия кожи

4,7±0,3

4,5±0,2

3,8±0,2

р1-2=0,064

р1-3=0,021

р2-3=0,038

Отек

4,5±0,2

4,4±0,2

3,8±0,2

р1-2=0,072

р1-3=0,043

р2-3=0,037

Фибринолиз

5,5±0,2

5,2±0,2

4,2±0,3

р1-2=0,078

р1-3=0,029

р2-3=0,031

Появление грануляций

4,2±0,2

3,9±0,2

3,1±0,2

р1-2=0,066

р1-3=0,019

р2-3=0,032

Начало эпителизации

5,1±0,3

4,8±0,2

4,2±0,2

р1-2=0,061

р1-3=0,024

р2-3=0,039

Снижение отделяемого до скудного

6,8±0,2

5,7±0,3

4,5±0,3

р1-2=0,042

р1-3=0,014

р2-3=0,027

 

Таблица 2. Динамика сокращения площади (M±SD) раневого дефекта в контрольных и опытной группах исследования, мм2

Временнáя точка исследования

Площадь ран после моделирования

р

1

2

3

1 сутки

93,7±6,1

88,4±5,9

81,2±5,8

р1-2=0,057

р1-3=0,043

р2-3=0,052

3 сутки

54,2±6,3

53,5±5,4

45,7±5,6

р1-2=0,073

р1-3=0,037

р2-3=0,046

5 сутки

47,3±5,6

41,5±5,1

29,5±5,2

р1-2=0,053

р1-3=0,018

р2-3=0,024

7 сутки

34,4±4,8

27,3±4,6

20,7±4,7

р1-2=0,043

р1-3=0,014

р2-3=0,044

14 сутки

13,1±1,3

9,8±1,5

2,2±1,2

р1-2=0,035

р1-3=0,006

р2-3=0,012

 

После моделирования гнойной раны и снятия швов микробная обсемененность составляла в среднем 1010–1013 микробных тел на миллилитр экссудата (табл. 3). В 3-й группе отмечалось выраженное снижение данного показателя на 3 сут исследования до 102–103 микробных тел на миллилитр экссудата, что свидетельствует о подавлении бактериального роста в раневом канале при использовании комбинации КМВС и 0,01% раствора БМП.

 

Таблица 3. Динамика бактериальной обсемененности (M±SD) раневой поверхности в контрольных и основной группах исследования, микробных тел на миллилитр экссудата

Временнáя точка исследования

Группа исследования

р

1

2

3

1 сутки

109–1010

109–1010

108–1010

р1-2=0,087

р1-3=0,047

р2-3=0,059

3 сутки

105–108

105–106

102–103

р1-2=0,063

р1-3=0,025

р2-3=0,039

5 сутки

105–107

104–105

102–103

р1-2=0,038

р1-3=0,021

р2-3=0,033

7 сутки

104–105

103–104

101–102

р1-2=0,044

р1-3=0,013

р2-3=0,019

14 сутки

104–106

101–102

101–102

р1-2=0,021

р1-3=0,010

р2-3=0,086

 

При морфологическом анализе на 3 сут исследования в 1-й и 2-й группах определяется выраженная воспалительная реакция, скопление клеток нейтрофильно-лимфоцитарного звена, преимущественно сегментоядерных и палочкоядерных нейтрофилов, и образование микротромбов в пристеночных сосудах (табл. 4). В 3-й группе визуализируются небольшие очаги формирования грануляций, единичных фибробластов и макрофагов, что свидетельствует о начале процессов регенерации.

 

Таблица 4. Динамика количества (M±SD) клеток воспалительного инфильтрата и волокон соединительной ткани в зоне раневого дефекта в контрольных и опытной группах исследования

Временнáя точка исследования

Клеточные элементы

Группа исследования

р

1

2

3

3 сутки

Клетки воспалительного инфильтрата, ед./мм2

194,0±7,7

158,0±4,3

131,0±5,11

р1-2=0,036

р1-3=0,022

р2-3=0,027

Волокна соединительной ткани диаметром > 1 мкм, %

8,3±0,2

9,8±0,4

14,2±0,2

р1-2=0,024

р1-3=0,018

р2-3=0,015

Продолжение таблицы

5 сутки

Клетки воспалительного инфильтрата, ед./мм2

147,0±9,5

102,0±7,3

84,0±11,4

р1-2=0,023

р1-3=0,016

р2-3=0,028

Волокна соединительной ткани диаметром > 1 мкм, %

10,1±0,2

19,7±0,4

27,4±0,5

р1-2=0,022

р1-3=0,012

р2-3=0,021

7 сутки

Клетки воспалительного инфильтрата, ед./мм2

93,0±6,9

85,0±9,2

51,0±3,7

p1-2=0,041

p1-3=0,014

p2-3=0,019

Волокна соединительной ткани диаметром > 1 мкм, %

15,5±0,2

31,2±0,3

39,7±0,3

р1-2=0,020

р1-3=0,009

р2-3=0,037

14 сутки

Клетки воспалительного инфильтрата, ед./мм2

41,0±3,4

33,0±1,2

15,0±5,6

р1-2=0,032

р1-3=0,017

р2-3=0,013

Волокна соединительной ткани диаметром > 1 мкм, %

44,7±0,2

61,3±0,2

74,1±0,5

p1-2=0,016

p1-3=0,013

p2-3=0,025

 

На 5 сут исследования в 3-й группе было зарегистрировано формирование эпителия у краев раны. В 1-й группе воспалительные инфильтраты визуализировались не только в ткани, но и в стенках новообразованных сосудах, что может говорить о вторичной бактериальной контаминации вследствие несвоевременного отторжения струпа. Также одними из ключевых участников фибриллогенеза и ремоделирования ткани после повреждения являются тучные клетки, рост которых отмечался в 3-й группе исследования (табл. 5).

 

Таблица 5. Динамика количества (M±SD) тучных клеток и клеток фибробластического дифферона в зоне раневого дефекта и окружающих тканях в контрольных и основной группах, ед./мм2

Временнáя точка исследования

Клеточные элементы

Группа исследования

р

1

2

3

3 сутки

Тучные клетки

112,0±5,4

107,0±4,2

99,1±5,7

р1-2=0,067

р1-3=0,033

р2-3=0,056

Клетки фибробластического дифферона

11,0±2,3

15,0±5,4

21,0±5,3

р1-2=0,074

р1-3=0,042

р2-3=0,059

5 сутки

Тучные клетки

96,0±9,5

87,0±3,7

81,2±3,9

р1-2=0,081

р1-3=0,046

р2-3=0,055

Клетки фибробластического дифферона

17,0±4,3

25,0±3,3

36,0±1,8

р1-2=0,037

р1-3=0,023

р2-3=0,029

7 сутки

Тучные клетки

91,0±7,3

82,0±4,4

77,3±1,8

р1-2=0,063

р1-3=0,031

р2-3=0,057

Клетки фибробластического дифферона

27,0±3,2

34,0±5,7

29,0±4,1

р1-2=0,044

р1-3=0,082

р2-3=0,077

14 сутки

Тучные клетки

75,0±6,4

69,0±3,1

61,3±5,4

р1-2=0,085

р1-3=0,032

р2-3=0,039

Клетки фибробластического дифферона

26,0±4,2

23,0±3,2

17,0±3,6

р1-2=0,089

р1-3=0,026

р2-3=0,052

 

На 7 сут при использовании комбинированной методики окрашивания (толуидиновый синий и импрегнация серебром), позволяющей оценить процесс ремоделирования в структуре дермы в опытной группе при использовании КМВС, были визуализированы сформированные коллагеновые волокна, совпадающие с морфологической архитектоникой окружающей дермы вне раны. В контрольных группах обращала на себя внимание разная толщина волокон, их хаотичное расположение (см. табл. 4, 5). В микропрепаратах 1-й группы присутствуют единичные воспалительные инфильтраты, преимущественно состоящие из лимфоцитов и макрофагов (см. табл. 4).

На 14 сут в 3-й группе после отторжения струпа сформировался полноценный эпителиальный пласт, в дерме — большое количество волосяных фолликулов в фазе зрелого анагена и новообразованные сальные железы. В 1-й группе раневое ложе местами лишено эпителиального покрова, однако в дерме визуализируются единичные зачатки волосяных фолликулов, окружающая ткань умеренно инфильтрирована лимфоцитами. Во 2-й группе происходило заживление с преобладанием клеток фибробластического дифферона над другими, образованы единичные волосяные фолликулы (см. табл. 4).

ОБСУЖДЕНИЕ

КМВС, содержащая высокие концентрации различных факторов роста, гормонов, витаминов и микроэлементов, представляет значительный интерес для использования в лечении ран мягких тканей.

Проведенное исследование показало, что внесение 1 мл культуры S. аureus в концентрации 109 микробных тел по отработанной методике к 3 сут приводило к формированию гнойной раны со значительным гнойным отделяемым. Применение модели без проведения лечения (1-я группа) приводило к началу эпителизации ран в среднем на (5,1±0,3) сут, сокращению площади ран после моделирования до (34,4±4,8) мм2; микробная обсемененность экссудата на 7 сут составила 104–105 микробных тел на миллиметр.

Перевязки с использованием 0,01% раствора БМП (2-я группа) привели к сокращению начала эпителизации до (3,9±0,2) сут, уменьшению площади дефекта до (27,3±4,6) мм2, снижению микробной обсемененности экссудата на 7 сут до 103–104 микробных тел на миллиметр.

Проведение стандартного лечения в сочетании с применением КМВС и 0,01% раствора БМП (3-я группа) привело к сокращению всех изучаемых показателей при проведении сравнения как с 1-й, так и со 2-й группами. В частности, показатель начала эпителизации уменьшался до (4,2±0,2) сут, площадь дефекта после моделирования — до (20,7±4,7) мм2, микробная обсемененность экссудата на 7 сут — до 101–102 микробных тел на миллиметр экссудата. Полученная динамика свидетельствует об усилении процессов регенерации на фоне применения КМВС, что можно объяснить усилением проявлений местного иммунитета, что подтверждается данными гистологических исследований и является одним из свойств КМВС.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Применение крови марала вакуумной сушки в комплексном лечении гнойных ран мягких тканей позволило сократить сроки купирования местных воспалительных реакций, ускорить сокращение площади ран, снизить активность роста бактериальной микрофлоры в ране. Также продемонстрирована положительная динамика клеточных элементов и волокон соединительной ткани, что свидетельствует о более полноценном восстановлении дермы при использовании предложенного метода лечения.

ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ

Вклад авторов. Н.О. Михайлов — проведение экспериментального исследования, анализ и интерпретация данных, написание текста; А.А. Андреев, А.А. Глухов — концепция и дизайн исследования, редактирование; В.В. Шишкина — анализ морфологического материала, написание текста; О.В. Судаков, Д.В. Судаков — анализ и интерпретация данных, статистическая обработка. Все авторы одобрили рукопись (версию для публикации), а также согласились нести ответственность за все аспекты работы, гарантируя надлежащее рассмотрение и решение вопросов, связанных с точностью и добросовестностью любой ее части.

Этическая экспертиза. Проведение исследования одобрено Локальным этическим комитетом Воронежского государственного медицинского университета имени Н.Н. Бурденко (Протокол № 7 от 13.12.2022).

Согласие на публикацию. Все участники исследования и их представители добровольно подписали форму информированного согласия до включения в исследование.

Источники финансирования. Отсутствуют.

Раскрытие интересов. Авторы заявляют об отсутствии отношений, деятельности и интересов за последние 3 года, связанных с третьими лицами (коммерческими и некоммерческими), интересы которых могут быть затронуты содержанием статьи.

Оригинальность. При создании настоящей работы авторы не использовали ранее опубликованные сведения (текст, иллюстрации, данные).

Доступ к данным. Редакционная политика в отношении совместного использования данных к настоящей работе не применима, новые данные не собирали и не создавали.

Генеративный искусственный интеллект. При создании настоящей статьи технологии генеративного искусственного интеллекта не использовали.

Рассмотрение и рецензирование. Настоящая работа подана в журнал в инициативном порядке и рассмотрена по обычной процедуре. В рецензировании участвовали два внешних рецензента, член редакционной коллегии и научный редактор издания.

×

Об авторах

Николай Олегович Михайлов

Воронежский государственный медицинский университет имени Н.Н. Бурденко

Автор, ответственный за переписку.
Email: n.o.mikhailov@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-1710-205X
SPIN-код: 6113-7105
Россия, Воронеж

Александр Алексеевич Андреев

Воронежский государственный медицинский университет имени Н.Н. Бурденко

Email: sugery@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-8215-7519
SPIN-код: 1394-5147

д-р мед. наук, профессор

Россия, Воронеж

Александр Анатольевич Глухов

Воронежский государственный медицинский университет имени Н.Н. Бурденко

Email: glukhov-vrn@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-9675-7611
SPIN-код: 3821-2175

д-р мед. наук, профессор

Россия, Воронеж

Виктория Викторовна Шишкина

Воронежский государственный медицинский университет имени Н.Н. Бурденко

Email: v.v.4128069@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-9185-4578
SPIN-код: 9339-7794

канд. мед. наук, доцент

Россия, Воронеж

Олег Валериевич Судаков

Воронежский государственный медицинский университет имени Н.Н. Бурденко

Email: sudakov_ol@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-2677-2300
SPIN-код: 2640-7362

д-р мед. наук, доцент 

Россия, Воронеж

Дмитрий Валериевич Судаков

Воронежский государственный медицинский университет имени Н.Н. Бурденко

Email: sdvvrn@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-4911-1265
SPIN-код: 1759-9075

канд. мед. наук

Россия, Воронеж

Список литературы

  1. Abdullazhanov BR, Babadzhanov AKh, Yusupov ZhK. Analysis of the dynamics of the results of planimetric studies in treatment of longly non-healing purulent wounds of soft tissue. Re-Health Journal. 2021;(1):196–203. Available from: https://re-health.uzsci.uz/ru/article/view?id=16825. Accessed: 2025 February 08. doi: 10.24411/2181-0443/2021-10034 EDN: DUTIAU
  2. GBD 2015 Disease and Injury Incidence and Prevalence Collaborators. Global, regional, and national incidence, prevalence, and years lived with disability for 310 diseases and injuries: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2015. Lancet. 2016;388(10053):1545–1602. doi: 10.1016/s0140-6736(16)31678-6 EDN: XUNDHX Erratum in: Lancet. 2017;389(10064):e1. doi: 10.1016/S0140-6736(16)32606-X
  3. Järbrink K, Ni G, Sönnergren H, et al. Prevalence and incidence of chronic wounds and related complications: a protocol for a systematic review. Syst Rev. 2016;5(1):152. doi: 10.1186/s13643-016-0329-y EDN: SXRWVU
  4. GBD 2021 Antimicrobial Resistance Collaborators. Global burden of bacterial antimicrobial resistance 1990–2021: a systematic analysis with forecasts to 2050. Lancet. 2024;404(10459):1199–1226. doi: 10.1016/s0140-6736(24)01867-1 EDN: HLWJPJ
  5. Andreev AA, Glukhov AA, Ostroushko AP, et al. Simulation of mechanical and thermal wounds of soft tissues. Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 2022;173(3):272–278. doi: 10.47056/0365-9615-2022-173-3-272-278 EDN: BOEDFI
  6. Manna B, Nahirniak P, Morrison CA. Wound Debridement. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2025. Available at: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29939659/. Accessed: 2025 February 08.
  7. Ostroushko AP, Andreev AA, Laptiyova AY, et al. Collagen and Use Its in the Treatment of Wounds. Journal of Experimental and Clinical Surgery. 2021; 14(1):85–90. doi: 10.18499/2070-478X-2021-14-1-85-90 EDN: NXUKRQ
  8. Sergeev VA, Glukhov AA, Ostroushko AP, et al. Effect of Programmed Sanitation on the Dynamics of Cytological Picture in the Surgical Treatment of Soft Tissue Phlegmon. Journal of Experimental and Clinical Surgery. 2024;17(1):9–16. doi: 10.18499/2070-478X-2024-17-1-9-16 EDN: UYOYRK
  9. Ushmarov DI, Gumenyuk SE, Gumenyuk AS, et al. Comparative evaluation of chitosan-based multifunctional wound dressings: a multistage randomised controlled experimental trial. Kuban Scientific Medical Bulletin. 2021;28(3):78–96. doi: 10.25207/1608-6228-2021-28-3-78-96 EDN: ZJMQXE
  10. Tabaldyev A. Efficiency of Prontosan in Complex Treatment of Purulent Wounds. Bulletin of Science and Practice. 2023;9(3):211–217. doi: 10.33619/2414-2948/88/23 EDN: XEIPUO
  11. Popkov A, Popkov D, Kobyzev A, et al. Positive experience of full-layer filling of articular cartilage defect using a degradable implant with a bioactive surface in combination with platelet-rich blood plasma (experimental study). Genij Ortopedii. 2020;26(3):392–397. doi: 10.18019/1028-4427-2020-26-3-392-397 EDN: XYBBBI
  12. Aralova MV, Antakova LN, Alimkina YuN, et al. Application of platelet-rich plasma in experiment. Proceedings of Voronezh State University. Series: Chemistry. Biology. Pharmacy. 2019;(2):72–79. EDN: XQZTYI
  13. Corotkich NN, Aralova MV, Ostroushko AP, et al. Immuno-biological Rationale for the Use of Platelet-rich Donor Plasma for the Regional Treatment of Wounds. Journal of Experimental and Clinical Surgery. 2017;10(2):111–115. doi: 10.18499/2070-478X-2017-10-2-111-115 EDN: WRUQYX
  14. Rakhmetova KK, Bobyntsev II, Zhilyayeva LV, et al. Effects of GHK Peptide and Its Structural Analogues on Dynamics of Healing and Bacterial Contamination of Infected Wound. I.P. Pavlov Russian Medical Biological Herald. 2024;32(4):539–548. doi: 10.17816/PAVLOVJ471212 EDN: JEEVKG
  15. Mikhaylov NO, Andreyev AA, Ostroushko AP, et al. Panty marala: istoriya ikh primeneniya, sostav, preparaty, polucheniye, pokazaniya k primeneniyu. Mnogoprofil'nyy Statsionar. 2019;6(1):85–87. (In Russ.) EDN: WPOICH
  16. Sun H, Xiao D, Liu W, et al. Well-known polypeptides of deer antler velvet with key actives: modern pharmacological advances. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol. 2024;397(1):15–31. doi: 10.1007/s00210-023-02642-y EDN: VPJJSJ
  17. Guan M, Pan D, Zhang M, et al. Deer antler extract potentially facilitates xiphoid cartilage growth and regeneration and prevents inflammatory susceptibility by regulating multiple functional genes. J Orthop Surg Res. 2021;16(1):208. doi: 10.1186/s13018-021-02350-4 EDN: ZJOYDU
  18. Grishaeva IN, Nepriyatel AA, Krotova MG, et al. Amino acid composition of maral velvet antler biosubstances. Vestnik of Omsk State Agrarian University. 2023;(4):122–127. EDN: OVMGUL
  19. Arkhipov DV, Andreev AA, Atyakshin DA, et al. Inkjet Oxygen-Sorption Treatment in Local Treatment Purulent Soft Tissue Wounds. Journal of Experimental and Clinical Surgery. 2020;13(1):41–45. doi: 10.18499/2070-478X-2020-13-1-41-45 EDN: QDPILG

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Эко-Вектор, 2025



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС77-76803 от 24 сентября 2019 года