Патогенетические механизмы нарушения перистальтики при хроническом запоре

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Актуальность. Хронический запор является одной из наиболее актуальных проблем в современной колопроктологии и наблюдается у 14–16% населения развитых стран. Причины хронического запора широко варьируют от функциональных до органических. В основе патогенеза данного синдрома лежит расстройство перистальтики.

Цель. Анализ и систематизация актуальных литературных данных о патогенетических механизмах нарушения перистальтики при хроническом запоре.

Перистальтика контролируется посредством влияния симпатического и парасимпатического отдела вегетативной нервной системы на энтеральную. Последняя, в свою очередь, регулируется с помощью сложного взаимодействия нервных клеток (афферетные, двигательные, механочувствительные нейроны, интернейроны, глиальные клетки) со вспомогательными (энтерохромафинные, интерстициальные, тучные клетки, фибробласты, иммунные клетки, эндотелий). Межклеточные связи обуславливают гомеостаз ионов, гормонов и нейромедиаторов.

Заключение. Нарушение любого из многочисленных механизмов регуляции способно привести к развитию хронического запора, а понимание многосторонних путей патогенеза заболевания позволит обосновывать и применять наилучшие методы лечения.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Татьяна Ивановна Шевченко

Донецкий национальный медицинский университет имени М. Горького

Email: tatianashev4enko57@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-2073-9772

д.м.н., профессор

Россия, Донецк, Донецкая народная республика

Данил Сергеевич Швороб

Донецкий национальный медицинский университет имени М. Горького

Автор, ответственный за переписку.
Email: mcshady@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-6578-0050
Россия, Донецк, Донецкая народная республика

Арина Ашотовна Абрамян

Донецкий национальный медицинский университет имени М. Горького

Email: dr.arinaashotovna@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-6819-652X
Россия, Донецк, Донецкая народная республика

Илья Сергеевич Греков

Донецкий национальный медицинский университет имени М. Горького

Email: ilya.grekov.1998@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-6140-5760
Россия, Донецк, Донецкая народная республика

Список литературы

  1. Bayliss W.M., Starling E.H. The movements and innervation of the small intestine // J. Physiol. 1899. Vol. 24, No. 2. P. 99–143. doi: 10.1113/jphysiol.1899.sp000752
  2. Flemming G. Chronic Functional Constipation in Infants and Children // Handb. Exp. Pharmacol. 2020. Vol. 261. P. 377–396. doi: 10.1007/164_2019_223
  3. Bharucha A.E., Lacy B.E. Mechanisms, Evaluation, and Management of Chronic Constipation // Gastroenterology. 2020. Vol. 158, No. 5. P. 1232–1249.e3. doi: 10.1053/j.gastro.2019.12.034
  4. Camilleri M., Ford A.C., Mawe G.M., et al. Chronic constipation // Nat. Rev. Dis. Primers. 2017. Vol. 3. P. 17095. doi: 10.1038/nrdp.2017.95
  5. Avetisyan M., Schill E.M., Heuckeroth R.O. Building a second brain in the bowel // J. Clin. Invest. 2015. Vol. 125, No. 3. P. 899–907. doi: 10.1172/jci76307
  6. Grubišić V., Gulbransen B.D. Enteric glial activity regulates secretomotor function in the mouse colon but does not acutely affect gut permeability // J. Physiol. 2017. Vol. 595, No. 11. P. 3409–3424. doi: 10.1113/jp273492
  7. Reynaud Y., Fakhry J., Fothergill L., et al. The chemical coding of 5-hydroxytryptamine containing enteroendocrine cells in the mouse gastrointestinal tract // Cell Tissue Res. 2016. Vol 364, No. 3 P. 489–497. doi: 10.1007/s00441-015-2349-7
  8. Bellono N.W., Bayrer J.R., Leitch D.B., et al. Enterochromaffin Cells Are Gut Chemosensors that Couple to Sensory Neural Pathways // Cell. 2017. Vol. 170, No. 1. P. 185–198.e16. doi: 10.1016/j.cell.2017.05.034
  9. Wang F., Knutson K., Alcaino C., et al. Mechanosensitive ion channel Piezo2 is important for enterochromaffin cell response to mechanical forces // J. Physiol. 2017. Vol. 595, No. 1. P. 79–91. doi: 10.1113/jp272718
  10. Cohen M., Cazals–Hatem D., Duboc H., et al. Evaluation of interstitial cells of Cajal in patients with severe colonic inertia requiring surgery: a clinical-pathological study // Colorectal Dis. 2017. Vol. 19, No. 5. P. 462–467. doi: 10.1111/codi.13511
  11. Sanders K.M., Ward S.M., Koh S.D. Interstitial cells: regulators of smooth muscle function // Physiol. Rev. 2014. Vol. 94, No. 3. P. 859–907. doi: 10.1152/physrev.00037.2013
  12. McClain J., Grubišić V., Fried D., et al. Ca2+ responses in enteric glia are mediated by connexin-43 hemichannels and modulate colonic transit in mice // Gastroenterology. 2014. Vol. 146, No. 2. P. 497–507.e1. doi: 10.1053/j.gastro.2013.10.061
  13. Shimizu K., Ogura H., Matsumoto N., et al. Interstitial cells of Cajal are diminished in critically ill patients: Autopsy cases // Nutrition. 2020. Vol. 70. P. 110591. doi: 10.1016/j.nut.2019.110591
  14. Wang H., Zhang Y., Liu W., et al. Interstitial cells of Cajal reduce in number in recto-sigmoid Hirschsprung's disease and total colonic aganglionosis // Neurosci. Lett. 2009. Vol 451, No. 3. P. 208–211. doi: 10.1016/j.neulet.2009.01.015
  15. Yu C.S., Kim H.C., Hong H.K., et al. Evaluation of myenteric ganglion cells and interstitial cells of Cajal in patients with chronic idiopathic constipation // Int. J. Colorectal Dis. 2002. Vol. 17, No. 4. P. 253–258. doi: 10.1007/s00384-001-0380-5
  16. Zhou X., Qian H., Zhang D., et al. Inhibition of autophagy of Cajal mesenchymal cells by gavage of tong bian decoction based on the rat model of chronic transit constipation // Saudi J. Biol. Sci. 2020. Vol. 27, No. 2. P. 623–628. doi: 10.1016/j.sjbs.2019.11.040
  17. Foong D., Zhou J., Zarrouk A., et al. Understanding the Biology of Human Interstitial Cells of Cajal in Gastrointestinal Motility // Int. J. Mol. Sci. 2020. Vol. 21, No. 12. P. 4540. doi: 10.3390/ijms21124540
  18. Bassotti G., Chistolini F., Battaglia E., et al. Are colonic regular contractile frequency patterns in slow transit constipation a relevant pathophysiological phenomenon // Dig. Liver Dis. 2003. Vol. 35, No. 8. P. 552–556. doi: 10.1016/s1590-8658(03)00271-8
  19. Rao S.S., Sadeghi P., Beaty J., et al. Ambulatory 24-h colonic manometry in healthy humans // Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2001. Vol. 280, No. 4. P. G629–G639. doi: 10.1152/ajpgi.2001. 280.4.g629
  20. Dinning P.G., Wiklendt L., Maslen L., et al. Colonic motor abnormalities in slow transit constipation defined by high resolution, fibre-optic manometry // Neurogastroenterol. Motil. 2015. Vol. 27, No. 3. P. 379–388. doi: 10.1111/nmo.12502
  21. LePard K.J., Ren J., Galligan J.J. Presynaptic modulation of cholinergic and non-cholinergic fast synaptic transmission in the myenteric plexus of guinea pig ileum // Neurogastroenterol. Motil. 2004. Vol. 16, No. 3. P. 355–364. doi: 10.1111/j.1365-2982.2004.00505.x
  22. Bonaz B., Bazin T., Pellissier S. The Vagus Nerve at the Interface of the Microbiota-Gut-Brain Axis // Front. Neurosci. 2018. Vol. 12. P. 49. doi: 10.3389/fnins.2018.00049
  23. Smith–Edwards K.M., Najjar S.A., Edwards B.S., et al. Extrinsic Primary Afferent Neurons Link Visceral Pain to Colon Motility Through a Spinal Reflex in Mice // Gastroenterology. 2019. Vol. 157, No. 2. P. 522–536. doi: 10.1053/j.gastro.2019.04.034
  24. Schneider S., Wright C.M., Heuckeroth R.O. Unexpected Roles for the Second Brain: Enteric Nervous System as Master Regulator of Bowel Function // Annu. Rev. Physiol. 2019. Vol. 81. P. 235–259. doi: 10.1146/annurev-physiol-021317-121515
  25. Beck K., Voussen B., Reigl A., et al. Cell-specific effects of nitric oxide on the efficiency and frequency of long distance contractions in murine colon // Neurogastroenterol. Motil. 2019. Vol. 31, No. 6. P. e13589. doi: 10.1111/nmo.13589
  26. Martinez–Cutillas M., Gil V., Mañé N., et al. Potential role of the gaseous mediator hydrogen sulphide (H2S) in inhibition of human colonic contractility // Pharmacol. Res. 2015. Vol. 93. P. 52–63. doi: 10.1016/j.phrs.2015.01.002
  27. Ahmed M., Ahmed S. Functional, Diagnostic and Therapeutic Aspects of Gastrointestinal Hormones // Gastroenterology Res. 2019. Vol. 12, No. 5. P. 233–244. doi: 10.14740/gr1219
  28. Ceccotti C., Giaroni C., Bistoletti M., et al. Neurochemical characterization of myenteric neurons in the juvenile gilthead sea bream (Sparus aurata) intestine // PLoS One. 2018. Vol. 13, No. 8. P. e0201760. doi: 10.1371/journal.pone.0201760
  29. Dimidi E., Christodoulides S., Scott S.M., et al. Mechanisms of Action of Probiotics and the Gastrointestinal Microbiota on Gut Motility and Constipation // Adv. Nutr. 2017. Vol. 8, No. 3. P. 484–494. doi: 10.3945/an.116.014407
  30. Li Y.–Y., Li Y.–N., Ni J.–B., et al. Involvement of cannabinoid-1 and cannabinoid-2 receptors in septic ileus // Neurogastroenterol. Motil. 2010. Vol. 22, No. 3. P. 350–e388. doi: 10.1111/j.1365-2982. 2009.01419.x
  31. Barrett K.E. Endogenous and exogenous control of gastrointestinal epithelial function: building on the legacy of Bayliss and Starling // J. Physiol. 2017. Vol. 595, No. 2. P. 423–432. doi: 10.1113/jp272227
  32. Zhu S., Ran J., Yang B., et al. Aquaporins in Digestive System // Adv. Exp. Med. Biol. 2017. Vol. 969. P. 123–130. doi: 10.1007/978-94-024-1057-0_8

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Эко-Вектор, 2024


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС77-76803 от 24 сентября 2019 года. 


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах